A ventilação mecânica é amplamente utilizada na insuficiência respiratória, substituindo parcial ou completamente a ventilação espontânea. Sua gestão requer conhecimento e expertise prévios. No entanto, alguns estudos mostram que os profissionais sentem-se inseguros em seu manejo.
Qualquer reclamação, falta de treinamento ou conhecimento prévio. Os modelos experimentais vêm para facilitar os conceitos de ventilação mecânica e visualização da mecânica pulmonar com feedback visual. Inicialmente obteve-se o peso do animal para ajuste das medicações e sedação necessárias ao procedimento.
Administrar cetamina cinco miligramas por quilograma, e ponto de midazolam 25 miligramas por quilograma por via intramuscular. Em seguida, puncionar a veia marginal da orelha com cateter venoso 20G e administrar propofol por via venosa, cinco miligramas por quilograma para indução anestésica. Administrar três mililitros de heparina por via intravenosa a oito bloqueios cardiopulmonares, extração e perfusão.
Após a anestesia, realizar intubação orotraqueal com cânula de 6,5 milímetros. A cânula traqueal deve ser fixada de forma segura para evitar deslocamento durante o procedimento. Após o preparo, conectar a NMO via cânula à ventilação mecânica e manter a anestesia NMO com isofluorina a 1,5% em 50% da fração inspirada de oxigênio.
E fentanil, 10 microgramas por quilograma em bolus, mais 10 microgramas por quilograma por hora de infusão contínua. A avaliação da profundidade da sedação é realizada com base na monitorização dos parâmetros hemodinâmicos e no uso de analisador de gases. Ajuste o ventilador mecânico para o modelo de volume controlado com volume corrente de oito mililitros por quilograma.
O modo de ventilação e outras configurações são selecionadas na tela do ventilador mecânico. A frequência respiratória deve ser ajustada para manter o Co2 expirado final de 35 a 45 milímetros de mercúrio. Fazer uma incisão esternal grande o suficiente para acessar a cavidade torácica, dois centímetros acima do manúbrio a dois centímetros abaixo do processo xifoide do esterno, e posicionar os afastadores de costelas, ampliando o campo de visão durante o procedimento.
Faça uma incisão traqueal horizontalmente usando o bisturi. A incisão deve ser grande o suficiente para introduzir uma nova cânula traqueal, retirando o tubo traqueal oral. Inflar o manguito da cânula traqueal recém-introduzida.
Fixar a nova cânula traqueal diretamente na traqueia. A cânula traqueal não é suturada, apenas amarrada, para evitar vazamentos e movimentação durante a colocação dos pulmões na caixa de ventilação. Com o bisturi dissecar os tecidos para remover o bloqueio cardiopulmonar do tórax.
Ao final, aumente a concentração de isoflourano para 5% e administre 10 mililitros de cloreto de potássio. Após a dissecção tecidual, pinçar a cânula orotraqueal com pinça de Cali apropriada durante o final da inspiração, mantendo o pulmão insuflado. Desconecte o ventilador mecânico.
Seccionar a artéria aórtica e posicionar o aspirador dentro da cavidade torácica para remover o sangue extravasado e manter a visualização da cavidade. O ligamento pulmonar inferior deve ser cuidadosamente liberado para evitar laceração pulmonar. Retire o bloqueio cardiopulmonar da caixa torácica com a cânula orotraqueal pinçada e coloque-o em uma bandeja.
Cânular a artéria pulmonar com um cateter de lúmen único de grande calibre e conectá-la ao conjunto de infusão para administrar continuamente 2000 mililitros de solução salina codificada a 9% até que o líquido claro flua da aorta. A solução salina deve ser administrada a uma taxa normal. Evitar espremer a bolsa intravenosa.
Após a desobstrução do fluxo, sutura da artéria aorta e administração de mais cem mililitros de soro fisiológico. A solução salina permanece no interior dos pulmões até o final do experimento. Após o preparo dos pulmões, posicione-os verticalmente dentro da caixa de acrílico e conecte a cânula traqueal ao ventilador mecânico.
Certifique-se de que a cânula traqueal está firmemente presa na traqueia. Ajuste o ventilador mecânico para o modo de volume controlado com os seguintes parâmetros. Tau volume, seis mililitros por quilo.
PEEP, cinco centímetros de água. Fração inspirada de oxigênio, 21%Frequência respiratória, 15. Um tempo de pausa inspiratória, 10% Configurações são selecionadas na tela do ventilador mecânico.
Para iniciar o recrutamento aumente a PEEP de cinco para seis centímetros de água, e depois aumente-a em incrementos passo a passo de dois centímetros de água, até atingir 14 centímetros de água. A PEEP é aumentada usando o botão na tela do ventilador mecânico. Cada valor de PEEP é mantido por 10 minutos durante o registro da mecânica pulmonar.
Depois de atingir 14 centímetros de água, reduza a PEEP passo a passo em decrementos de dois centímetros de água até atingir seis centímetros de água, e depois reduza-a para cinco centímetros de água. Durante essa diminuição, o valor da PEEP é mantido por cinco minutos, enquanto se registra a mecânica pulmonar. Ao final da fase de recrutamento, pinçar suavemente a cânula traqueal com a pinça durante a inspiração, mantendo os pulmões inflados.
Abra a caixa de acrílico. Retire os pulmões da caixa de acrílico e coloque-os cuidadosamente em um recipiente de vidro. Depois de colocar os pulmões no recipiente de vidro, certifique-se de que a braçadeira está bem fechada e despeje 500 mililitros de solução salina a 9%.
Guarde os pulmões na geladeira em um recipiente de vidro plástico embrulhado a uma temperatura de dois a oito graus Celsius por 24 horas. Repetir o processo para ventilação mecânica e a manobra de recrutamento ovular por cinco dias consecutivos. Após cada vez que o processo for concluído, coloque os pulmões no recipiente de vidro e guarde-o na geladeira.
Analisamos os pulmões por cinco dias consecutivos, repetindo todo o processo conforme descrito no fluxograma. Pudemos mostrar como as variáveis pulmonares se comportaram antes e após o recrutamento e estabelecer a durabilidade do modelo pulmonar ex vivo no período do estudo. Observamos diferenças significativas entre todas as variáveis antes e após as manobras de recrutamento.
A pressão de pico, a pressão de platô e a pressão motriz diminuíram após a manobra, enquanto a complacência dinâmica aumentou, demonstrando abertura dos alvéolos colapsados e ganho de área pulmonar. A resistência das vias aéreas também aumentou após o recrutamento. Mostramos que o modelo é eficaz em demonstrar alterações visuais na mecânica pulmonar através da manobra de recrutamento alveolar, e sua efetividade para o estudo e ensino da mecânica pulmonar.
Além disso, mostramos que o modelo pode ser usado por pelo menos cinco dias consecutivos. No estudo piloto, começamos com uma PEEP de cinco centímetros de água, e a aumentamos em cinco centímetros de incrementos de água até 25 centímetros. Entretanto, as pressões de pico e platô atingem valores superiores a 40 e 30 centímetros de água, respectivamente, com formação de fístula.
Assim, optamos por realizar um aumento gradual em incrementos de dois centímetros para fornecer uma melhor análise do comportamento das pressões ao longo do tempo, e entender os limites de PEEP em seu modelo de registro ex-vivo. Não há diferença entre a insuflação sustentada ou incremental em relação à mortalidade, mas além de ser a insuflação incremental mais utilizada pode facilitar a análise passo a passo da mecânica pulmonar. Há estudos utilizando modelos XV sobre C com pressão positiva e negativa com diferentes iniciativas, como o desenvolvimento de um modelo semelhante de para estudos pré-clínicos, a verificação da distribuição de aerossóis e o estabelecimento de simulações pediátricas.
Apesar dos diferentes objetivos, tais estudos abrem possibilidades para nossas novas pesquisas, auxiliam aplicações para nosso modelo de aprendizagem. Embora estudos tenham demonstrado que o uso da ventilação com pressão positiva no modelo de volume XV pode levar a um recrutamento abrupto, com maior deformação local do que a ventilação com pressão negativa. É necessário criar modelos de pressão positiva, pois nossos pacientes geralmente são submetidos à pressão positiva durante a ventilação mecânica, como limitação de termos primeiramente, conhecimento de qualquer anatomia animal para que as pernas possam ser adequadamente removidas.
Em segundo lugar, o modelo não foi avaliado além de cinco dias. Terceiro, esse modelo, ele se encaixa bem apenas para o ensino de ventilação. E, finalmente, para traduzir seus resultados para todos os seres humanos, é importante considerar as limitações do modelo animal.
O modelo pulmonar X vivo é viável e reprodutível, podendo ser submetido a manobras de recrutamento com visualização das variáveis mecânicas pulmonares. O modelo proporciona uma nova visão do pulmão sob ventilação mecânica, facilitando o ensino desses conceitos por meio de feedback visual.
