JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Болезнь Паркинсона представляет собой нейродегенеративное расстройство, которое возникает в результате дегенерации допаминергических нейронов в центральной нервной системе, в результате чего передвижения, дефекты. Модели Ротенон болезнь Паркинсона у дрозофилы. В настоящем документе излагаются два анализов, которые характеризуют как спонтанные и поразить индуцированные недостатки передвижения, вызванные ротенона.

Аннотация

Болезнь Паркинсона представляет собой нейродегенеративное расстройство, которое возникает в результате дегенерации допаминергических нейронов в центральной нервной системе, прежде всего, в черной субстанции. Болезнь вызывает двигательные недостатки, которые представляют как жесткость, тремор и деменции у людей. Ротенон является инсектицид, который вызывает окислительное повреждение путем ингибирования функции электрон-транспортной цепи в митохондриях. Он также используется для моделирования болезни Паркинсона в дрозофилы. Мухи имеют неотъемлемое негативное geotactic ответ, который заставляет их подняться вверх на время вздрогнул. Было установлено, что ротенон вызывает ранней смертности и передвижения, дефекты, которые нарушают способность мух, чтобы подняться после того как они были постучал вниз. Тем не менее, влияние ротеноном на спонтанное движение не очень хорошо документированы. Это исследование описывает два чувствительные, воспроизводимые, и высокой пропускной анализов охарактеризовать недостатки Ротенон индуцированных вкраткосрочный испуга, вызванного передвижения и долгосрочный спонтанное передвижение у дрозофилы. Эти анализы могут быть легко адаптированы для характеристики других моделей Drosophila передвижения дефектов и эффективности терапевтических агентов.

Введение

Недостатки локомоции являются основным симптомом болезни Паркинсона и в значительной степени вызвано ухудшением дофаминергических нейронов черной субстанции 1. Ротенон является кетоновая инсектицид, который хорошо изучена для моделирования дефицита моторных Паркинсона в Drosophila 2-6. Ротенон вызывает окислительное повреждение, блокируя окислительного фосфорилирования путь, который в конечном итоге приводит к гибели клеток 7. Дофаминергических нейронов, более склонны к ротенона токсичности, что делает последствия химической первую очередь двигатель на основе 2,7. По индукции симптомы болезни Паркинсона у мух, мы можем лучше понять болезнь и устранить ее симптомы 6,8-11. Drosophila представляет собой хорошую модель для изучения этого эффекта, потому что они генетически сговорчивым, просты в обслуживании, и есть быстрый жизненный цикл.

Несколько исследований показали, что ротенон вызывает кратковременное испуга, вызванногопередвижение дефекты Drosophila -Когда мух ведутся на ротенона-дополняется пищи, они показывают медленнее негативное geotactic ответ после испуга 2-6. Их неспособность подняться вверх в флаконе аппарата так быстро, как испытаний контрольных свидетельствует о испуга, вызванного локомоции дефектов.

Эффект ротенона на долгосрочной перспективе, спонтанное движение не очень хорошо описано. Мониторы Drosophila деятельности (плотин) успешно используются для контроля движения в Drosophila циркадный ритм изучает 12,13. Мухи помещаются в отдельные пробирки, которые загружаются в РСВ. Этот аппарат оснащен инфракрасным сенсором, который подсчитывает количество раз муха пробитием инфракрасный луч. Эти отсчеты могут быть использованы в качестве меры невозмущенного движения и активности 12,13. Размещая мух в плотине, эффект ротенона на их долгосрочной передвижения можно охарактеризовать. Это исследование описывает методы в МПСЮр краткосрочный испуга, вызванного передвижения и долгосрочный спонтанное передвижение для того, чтобы лучше понять последствия Ротенон опосредованной недостатков двигателя. Характеристика опорно-двигательного недостатков, имитирующих болезнь Паркинсона важны, поскольку они позволяют для изучения других соединений, которые могут повернуть вспять эти передвижения, дефекты.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

протокол

1 Drosophila испуга, вызванного Передвижение Анализ

  1. Лечение наркотиками
    1. Sedate для иммобилизации желаемого количества (примерно 8-12) из 1-3 день-летний мужчина летит с помощью CO 2 и перевезти их в пробирки, содержащие пищу наркотиков дополняется. Примечание: Еще один анестетик, например, простой эфир или льда может быть использован, чтобы успокоить мух, чтобы позволить подсчета и обработки.
    2. Разрешить мухи для восстановления после седации в течение 20 мин (или до восстановления) с флакона в горизонтальном положении (чтобы предотвратить застревание мух на продукты питания), а затем поместить флакон в вертикальном положении в течение 12 ч темноты, свет 12 ч инкубаторе при 25 ° C на оставшуюся часть эксперимента.
  2. Экспериментальная установка
    1. Разделите эту двойную флакон установки на три равные разделах 6,33 см, пометив круги вокруг флаконов с постоянным маркером.
    2. После 3 дней воздействия лекарственного средства, передача летит без анестезии в нижнюю флакона и быстро разместить верхнюю флаконнад отверстием. Лента двух флаконов вместе с ясной лентой.
    3. Разрешить мухи, чтобы акклиматизироваться к новым условиям в течение 15 мин.
    4. Место флаконов на белом фоне и настроить цифровую камеру на соответствующем расстоянии от двойной флакона аппарата с таймером в поле зрения. Убедитесь, весь аппарат видна в одном фоторамку и что все мухи находятся в фокусе. Для поддержания согласованных кадры между испытаний, отметьте расположение камеры и флакона.
  3. Мобильность Анализ
    1. Очевидно отображения тройственное число, медикаментозное лечение, и таймер в поле зрения камеры.
    2. Плотно нажмите на двойную флакон аппарат по отношению к столешнице 3 раза, и обеспечить, чтобы все мухи падают на дно флакона. Одновременно запустить таймер.
    3. Каждый 5 сек в течение 1 мин, сфотографировать аппарата. Примечание: В качестве альтернативы, видео могут быть захвачены и остановился через соответствующие промежутки времени для измерений.
    4. Разрешить мухи восстановить в покое на 1 мин.
    5. Повторите еще 2 раза с 1 мин время восстановления между каждым испытанием. Примечание: Каждый аппарат должен принять 5 мин, чтобы завершить сбор данных. Поддерживать подобный силу нажатия между испытаниями. Несколько (по крайней мере, 3) устройство может быть легко обрабатываются одновременно.
  4. Анализ данных
    1. Просмотрите фотографии и записывать количество мух в каждой секции с течением времени. Вычислить процент мух в каждой секции с течением времени. Примечания: Повторите всю процедуру с теми же мух в 2 или 3 временных точек интереса, например, день 3, 5, и 7 Если слишком много мух умирают в течение всего эксперимента, то можно масштабировать до оригинального тройственное число, чтобы компенсировать для смертности. Используйте соответствующий статистический анализ, чтобы сравнить данные.

Анализ 2 Drosophila Спонтанное Передвижение

  1. Приготовление пищи
    1. Восстановить 3 г быстрорастворимого Drosophila среды с 15 мл деионизированной воды и желаемой ротенона(Или другой препарат интерес) дозировка.
    2. Как только еда смесь стала фирма (около 5 мин), тщательно загрузить, что еда была примерно 1 см в высоту в производителя поставляются прозрачные трубки (5 мм X 65 мм). Добавить препарат настоянный еду в пробирки, тщательно помещая пробирки вертикально в пищу и, поворачивая их, пока они не могут быть удалены с едой внутри трубки. Примечание: Это полезно поместить палец на открытии трубки для создания вакуума. Пища не должна содержать пузырьки воздуха или имеют неровную поверхность, как мухи может застрять.
  2. Экспериментальная установка
    1. Поместите пластиковую крышку на конце трубки ближайшего еде. Нажмите пластиковый колпачок на тюбике как можно меньше, так как это может создать воздушный пузырь во флаконе, если толкнул насильно.
    2. Sedate 1 день-летний мужчина летит с помощью CO 2 и осторожно вставьте 1 мужчина летать в каждую пробирку с кисти. Повторите в зависимости от количества требуемых испытаний.
    3. ПодключитеКонец трубки дальней от пищи с небольшим ватным тампоном, которые могут быть стороны проката из большего хранилища купил ватные шарики.
    4. Разрешить мухи, чтобы восстановить с трубками в горизонтальном положении в течение 15 мин и обеспечить, чтобы все мухи живы и активны. Вставьте трубки в РСВ и убедитесь, что все трубки находятся в том же положении по отношению к плотине. Примечание: Можно поместить их в области мониторинга в середине флакона, или нажать все флаконы в сторону, так, чтобы конец трубки находится под контролем. Примечание: Смотрите обсуждение для вариации этого метода.
  3. Сбор данных
    1. Поместите DAM в 12 час темноте, 12 ч света инкубатор установлен на 25 ° C. Подключите DAM к системе сбора данных. Откройте программу DAM и под предпочтений Выберите длину бен 10 мин. Начните сбор данных и запустить программу для сбора данных в течение 7 дней. Примечание: длина Bin можно регулировать при необходимости.
    2. Анализ данных
      Примечание: Процессданные для получения импульсов в мин в качестве меры для долгосрочного спонтанного передвижения.
      1. Открыть файл DAM сканирования программ и монитор для доступа к данным, нажав выберите входные данные.
      2. Выберите соответствующий диапазон монитора и выберите длину бен к 10-минутные интервалы.
      3. В выходной типа файла выбрать файлы каналов. Оставьте все другие варианты, как по умолчанию.
      4. Нажмите данные сканирования и сохранения в указанную папку.
      5. Импорт данных в циркадных программного обеспечения для анализа данных для получения импульсов в мин. Примечание: Для анализа данных Clocklab программное обеспечение обычно используется. Другие опции также доступны.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Результаты

Drosophila испуга, вызванного Передвижение Анализ

Дикого типа, Canton-S, мухи показал надежную негативное geotactic ответ с только приблизительно 88% и 5% от мух в верхней и нижней секций соответственно, аппарата двойной флакон через 30 сек (Рисунок 1). Мухи по?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

В этом исследовании, мы опишем две процедуры измерения как долгосрочный спонтанное передвижение и краткосрочный испуга, вызванного передвижения в ротенона вызванной Drosophila модели болезни Паркинсона. Наконец, можно оценить эти передвижения, характеристики в мух, подверженных дру?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего раскрывать.

Благодарности

Авторы хотели бы поблагодарить Qiuli Wang, язык Resource Center, Колби колледж, для оказания технической помощи с обработкой видео и Эрик Томас, отдела музыки, колледжа Колби, для обеспечения фоновой музыки. Этот проект был поддержан грантами Национального центра исследовательских ресурсов, INBRE (P20RR016463-12), Национального института по общим медицинских наук (P20 GM103423-12), Граждане институты здравоохранения и науки дивизии Грант, колледжа Колби (STA). JL и LWM были поддержаны грантами от Летнего Scholar фонда, колледжа Колби.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Standard narrow vialsGenesee Scientific32-120
RotenoneSigmaR8875Store in freezer, make fresh for each experiment
Dimethyl Sulfoxide (DMSO)SigmaD8418Solvent for rotenone
Instant Drosophila mediumCarolina Biological Formula 4-24
Drosophila activity monitor (DAM)TrikineticsDAM2trikinetics.com
DAM tubesTrikineticsTubes 5 X 65 mm
Recipe for Rotenone + food (125 mM dose)Make 62.5 mM rotenone stock solution in DMSO by dissolving 25 mg rotenone in 1 ml DMSO; For 125 mM dose, add 10 mM rotenone stock in DMSO to 5 ml water.

Ссылки

  1. Olanow, C. W., Tatton, W. G. Etiology and pathogenesis of Parkinson's disease. Annual review of neuroscience. 22, 123-144 (1999).
  2. Coulom, H., Birman, S. Chronic exposure to rotenone models sporadic Parkinson's disease in Drosophila melanogaster. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 24, 10993-10998 (2004).
  3. Hosamani, R., Ramesh, S. R., Muralidhara, Attenuation of rotenone-induced mitochondrial oxidative damage and neurotoxicty in Drosophila melanogaster supplemented with creatine. Neurochemical research. 35, 1402-1412 (2010).
  4. Islam, R., et al. A neuroprotective role of the human uncoupling protein 2 (hUCP2) in a Drosophila Parkinson's disease model. Neurobiology of disease. 46, 137-146 (2012).
  5. Lawal, H. O., et al. The Drosophila vesicular monoamine transporter reduces pesticide-induced loss of dopaminergic neurons. Neurobiology of. 40, 102-112 (2010).
  6. St Laurent,, O'Brien, R., M, L., Ahmad, S. T. Sodium butyrate improves locomotor impairment and early mortality in a rotenone-induced Drosophila model of Parkinson's disease. Neuroscience. 246, 382-390 (2013).
  7. Sherer, T. B., et al. Mechanism of toxicity in rotenone models of Parkinson's disease. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 23, 10756-10764 (2003).
  8. Munoz-Soriano, V., Paricio, N. Drosophila models of Parkinson's disease: discovering relevant pathways and novel therapeutic strategies. Parkinson's disease. , 520640(2011).
  9. Steffan, J. S., et al. Histone deacetylase inhibitors arrest polyglutamine-dependent neurodegeneration in Drosophila. Nature. 413, 739-743 (2001).
  10. Auluck, P. K., Bonini, N. M. Pharmacological prevention of Parkinson disease in Drosophila. Nature medicine. 8, 1185-1186 (2002).
  11. Whitworth, A. J., et al. Increased glutathione S-transferase activity rescues dopaminergic neuron loss in a Drosophila model of Parkinson's disease. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, 8024-809 (2005).
  12. Ahmad, S. T., Steinmetz, S. B., Bussey, H. M., Possidente, B., Seggio, J. A. Larval ethanol exposure alters free-running circadian rhythm and per Locus transcription in adult D. melanogaster period mutants. Behavioural brain research. 241, 50-55 (2013).
  13. Seggio, J. A., Possidente, B., Ahmad, S. T. Larval ethanol exposure alters adult circadian free-running locomotor activity rhythm in Drosophila melanogaster. Chronobiology international. 29, 75-81 (2012).
  14. Chaudhuri, A., et al. Interaction of genetic and environmental factors in a Drosophila parkinsonism model. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 27, 2457-2467 (2007).
  15. Feany, M. B., Bender, W. W. A Drosophila model of Parkinson's disease. Nature. 404, 394-398 (2000).
  16. Ali, Y. O., Escala, W., Ruan, K., Zhai, R. G. Assaying locomotor, learning, and memory deficits in Drosophila models of neurodegeneration. Journal of Visualized Experiments : JoVE. , (2011).
  17. Gargano, J. W., Martin, I., Bhandari, P., Grotewiel, M. S. Rapid iterative negative geotaxis (RING): a new method for assessing age-related locomotor decline in Drosophila. Experimental gerontology. 40, 386-395 (2005).
  18. Nichols, C. D., Becnel, J., Pandey, U. B. Methods to assay Drosophila behavior. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).
  19. Slawson, J. B., Kim, E. Z., Griffith, L. C. High-resolution video tracking of locomotion in adult Drosophila melanogaster. Journal of Visualized Experiments : JoVE. , (2009).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

Neuroscience90Drosophila

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены