Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Этот протокол описывает имплантацию сетки в ревтовагинальную перегородку овчины с использованием единой вагинальной методики разреза, с и без троакаровской вставки якорных рычагов.

Аннотация

Этот протокол описывает вставку сетки в ректовагинальную перегородку у овец с использованием одной вагинальной методики разреза, с и без троакара вставки якорных рычагов. Парусные овцы подвергались рассечению ректовагинальной перегородки, после чего вводили имплантат с четырьмя крепежными плечами или без них, оба предназначенные для соответствия анатомии овец. Крепежные рычаги были установлены на место с использованием троакара и техники «снаружи». Руки черепа прошли через обтуратор, грацилис и притягивали мышцы мышц. Каудальные руки были закреплены рядом с сугробной связкой через мышцы копчика. Этот метод позволяет имитировать хирургические процедуры, выполняемые у женщин, страдающих пролапсом тазовых органов. Анатомические пространства и элементы легко идентифицируются. Наиболее важной частью процедуры является введение черепного троакара, который может легко проникать в брюшную полость или окружающие органы таза. ThiS можно избежать путем более обширной забрюшинной диссекции и путем направления троакара более латерально. Этот подход предназначен только для экспериментальных испытаний новых имплантатов на крупных животных моделях, так как в настоящее время троическая вставка не используется клинически.

Введение

Пролапс органов таза клинически диагностирован у половины женщин, у которых была хотя бы одна вагинальная родоразрешение, но субъективно она беспокоит половину женщин в целом 1 . Основой терапии является хирургическая реконструкция с использованием либо нативной ткани, либо материалов имплантатов, но каждый из этих методов имеет свои ограничения, включая рецидив или локальные осложнения 2 , 3 , 4 . Идеальный имплантат еще не идентифицирован; Следовательно, существует постоянный спрос на инновации продукта и на разработку надлежащего трубопровода для доклинических экспериментов до внедрения на рынок новых продуктов и технологий. Одним из этапов этого трека является экспериментальная оценка подходящих моделей животных 5 , 6 . В идеале они должны имитировать анатомическую, биомеханическую и биологическую среду. Когда дело доходит доE экспериментальной оценки новых имплантатов, они, как правило, сначала тестируются в небольших моделях, либо для биосовместимости, либо для восстановления дефектов брюшной стенки. Этот тип экспериментов был подвергнут критике, потому что имплантаты не вставляются в область интереса (то есть, влагалище) 7. Модели вагинальной хирургии более скудны, конечно, когда целью эксперимента является документирование биомеханических характеристик эксплантов. По этой причине произошел переход от кроликов к овцам 8 . Взрослые овцы - это модели с большим животным с достаточно широким и доступным влагалищем. Они могут использоваться для среднесрочной оценки новых имплантатов, и можно воспроизводить вагинальные экспозиции с помощью определенных материалов 9 , 10 , 11 , 12 , 13 . Не только размеры и анатомияОвальной влагалища и тазового дна сопоставимы с таковыми у людей, но также и спонтанное возникновение пролапса, которое возникает у 15% овец. Факторы риска пролапса накладываются друг на друга ( т. Е. Многополярность, предыдущая история СОЗ, повышенное внутрибрюшное давление, вызванное более высоким весом тела или при выпасе на холмах и сопоставимые эффекты (фито) эстрогенов) 6 , 14 . В Европе овец являются единственной разумной альтернативой, так как исследования о приматах, не являющихся людьми, почти полностью запрещены. Здесь модель была сделана еще на один шаг, имитируя трансвагинальную вставку имплантатов с использованием троакаров и направляющих для без растяжения сеток в ректо-вагинальную перегородку. За этим последовало закрепление имплантата с помощью фиксации с помощью рук через связки мышц, что можно считать эквивалентным клинической практике 15 , 16 . До сих пор эта техникаХотя многие считают, что могут возникнуть определенные осложнения из-за использования этих более длинных полос и / или прокалывания анатомических структур.

В более раннем детальном анатомическом исследовании тазовой пол тазобедренного сустава сравнивали с тазом женского пола 17 . Когда речь идет о закреплении имплантата, у овец нет священной связки, но у них есть очень хорошо развитая и широкая сугробная связка. Пудендальный нерв протекает по ней, что делает его небезопасным, чтобы использовать этот ориентир в качестве точки подвески. Напротив, мышца копчика и ее фасция, а также мембрана обтуратора доступны через ректовагинальное пространство. Здесь предлагается доступ и расположение анатомических структур для фиксации якорных рычагов. Обсуждаются инструменты, которые могут использоваться для размещения сетки. Наконец, связь оружия или троакаров с соседними анатомическими структурами, такими как сосуды и нервы,А также потенциальные интраоперационные осложнения.

протокол

Этическое одобрение для этого эксперимента было получено в Комитете по этике по экспериментам на животных KU Leuven (P065 / 2013). Животных обрабатывали в соответствии с действующими национальными рекомендациями по охране здоровья животных.

1. Материал и экспериментальное животное

  1. Хирургическая подготовка
    1. В хирургическом театре накрывают стол стерильной драпировкой и готовят один стерильный изогнутый троакар ( рис. 1 , панель А), стерильные хирургические инструменты, швы и стерильную марлю. Выполните всю хирургическую процедуру в стерильных условиях, если эксперимент включает последующее наблюдение. Поместите все инструменты на стол, чтобы они были готовы к использованию во время операции.
    2. Удалите стерильный прямоугольный имплантат и / или имплантат с закрепляющими рычагами из стерильной упаковки и положите их на стол, покрытый стерильной драпировкой ( рис. 1B , C и D ).

figure-protocol-1121
Рисунок 1: Трокарь и имплантаты. ( A ) Схематический рисунок троакара. ( B ) Имплантат H-образного поливинилиденфторида (PVDF) с деталью центральной части (панель C ). Его форма была вдохновлена ​​четырьмя рукавами, которые в настоящее время доступны для трансвагинального лечения пролапса. Прямоугольное тело (30 x 40 мм 2 ) выдвигается сбоку четырьмя вытянутыми руками (150 x 10 мм 2 ). Размеры оружия рассчитаны на достаточно длительный срок, чтобы пробить соответствующие конструкции подвески, основанные на более ранних анатомических исследованиях 17 . ( D ) Прямоугольный имплантат (30 x 40 мм 2 ). Оба имплантата были изготовлены из поливинилиденфторида; Текстильные характеристики и свойства приведены в таблице 1 .

  1. Экспериментальное животное (EwД, 45-60 кг)
    1. Администрирование премедикации 1 мл 15 мг / мл атропина сульфата и 1 мл / 50 кг ксилазина HCl внутримышечно (им) за 30 минут до хирургической процедуры.
    2. Через 30 минут убедитесь, что премедикация сделала овец летаргической и сонной.
    3. Вставьте внутривенный катетер в яремную вену и введите 0,075 мл / кг кетамина 100 мг / мл HCl. Подтвердите глубокую анестезию, наблюдая отсутствие реакции на болезненные раздражители.
    4. Переместите животное на хирургический стол и закрепите его дыхательные пути интубацией. Поддерживайте анестезию с помощью 2,5% изофлурана в кислороде 5 л / мин.
    5. Держите внутривенную линию, вставленную в яремную вену, и поставьте 500 мл солевого раствора при скорости потока 150 мл / ч.
    6. Администрировать профилактические антибиотики im (амоксициллин клавуланат, 7 мг / кг) и послеоперационные анальгетики (бупренорфин и хлоркрезол, 1 мл) или эквивалент в соответствии с местными протоколами.
    7. Поместите животное в светлоеПоложение на столе в конце хирургического стола и закрепите его конечностями, с бедрами в гипергибкостях, используя веревки ( рис. 2 , панель A).
    8. Ручной пуст мочевого пузыря и прямой кишки, нажав на них трансвагинально.
    9. Бритья промежности, медиальной части бедра, а хвост складки и продезинфицировать поливидон натрия 7,5% ( рис. 2 , панель B и C).

figure-protocol-3668
Рисунок 2: Хирургия животных. ( A ) Овечка помещается в положение лежа на спине, при этом бедра сгибаются, закрепляя нижние конечности. ( B ) Внешние входные точки для вставки троакара находятся на вентральной стороне (пустая стрелка) и дорсально на боковых хвостовых складках (полная стрелка). ( C ) положение точек вентральной вставки; Пунктирная линия в середине представляетМидагитальная плоскость животного. ( D ) Рассеянная ректовагинальная перегородка. ( E ) Вставка брюшного троакара через мышцы на медиальной стороне бедра, отверстие обтуратора и паравагинальное пространство. Траектория пирсингового троакара контролируется пальцем. ( F и G ). Когда троакар находится на месте, проводная стропа (стрелка открывания) продвигается и нагружается плечом вагинальной сетки. ( H ) Конечное положение вентральных (полных стрел) и дорсальных (пустых стрел) рук. ( I ) Центральная часть размещена без натяжения между стенкой влагалища и ректальной адвентицией.

  1. Подготовьте персонал для операции в стерильных условиях. Наденьте хирургическую крышку и маску для рта, вымойте руки для операции, наденьте хирургическое платье и стерильные перчатки.
  2. Накройте животное стерильной драпировкой и сделайте отверстие над генитальнымрасщелина.

2. Хирургическая процедура

  1. Подготовка ректовагинальной перегородки
    1. Возьмите дорзальную стенку влагалища 3 см черепно-мозгового кольца с использованием щипцов Allis.
    2. Возьмите шприц, загруженный 10 мл физиологического раствора и снабженный иглой 22 G. Вставьте его через вагинальный эпителий (приблизительно 3 - 4 мм в глубину) и в среднюю линию ректовагинальной перегородки, 1,5 см черепного к гименальному кольцу.
    3. Выполните «аква-рассечение» путем инъекции солевого раствора в ректовагинальную перегородку 11 .
    4. Сделайте разрез средней линии длиной 3 см на вагинальном эпителии, начиная с хвостовика с помощью щипцов Allis (шаг 2.1.1) и заканчивая на гименальном кольце с помощью скальпеля. Войдите через ректально-вагинальное пространство через этот разрез.
    5. Поместите самозатягивающийся ретрактор (см. Таблицу материалов ) поверх промежности и поставьте четыре острых крючка для отдыха в вагинальном разрезе, чтобы он не открывался.
    6. С пальцем тупо рассечь ректо-вагинальную фасцию от стенки влагалища сбоку к тазовым боковым стенкам и черепно до каудального аспекта тупика. Создайте подходящее место для центральной части 30 x 40 мм 2 сетки ( рис. 2 , панель D).
    7. Выполняйте гемостаз с помощью гемостатических щипцов или крестообразной гемостатической лигатуры, когда это необходимо.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Маленькие кровотечения могут быть зажаты с помощью кровоостанавливающих щипцов. Это разрушает сосуд и инициирует естественный каскад коагуляции. Для более сильного кровопускания возьмитесь за кровоточащий сосуд с помощью щипцов и поместите крест-накрестную лигатуру, обеспечив ее квадратным узлом. На этом этапе можно либо вставить прямоугольный имплантат (шаг 2.2), либо продолжить вскрытие, чтобы вставить имплантат с помощью анкерных рычагов (шаг 2.3).
  2. Вставка плоской сетки
    1. Вставьте вагинальный ретрактор в вагинальный разрез, чтобы обеспечить лучший обзорКраниальная часть рассеченной области.
    2. Наложите левый и правый краниальный угол имплантата с помощью простого прерванного полипропиленового шва 3/0 с левой и правой сторон самого краниального аспекта расчлененного ректовагинального пространства. Вырежьте остаточный шовный материал. Держите шов от вагинального просвета ( т. Е. Не проникайте в стенку влагалища).
      ПРИМЕЧАНИЕ. Имплантат всегда прикрепляется к соединительной ткани, содержащей ректо-вагинальную перегородку. Влагалищная стенка не проникает, если шовный материал не может быть виден во влагалище.
    3. Добавьте еще один простой прерывистый шов на полпути по краниальному аспекту имплантата.
    4. Швы на боковые края имплантата посередине на окружающую соединительную ткань с помощью простого прерванного полипропилена 3/0. Держите имплантат как можно более плоским и без натяжения.
    5. Швы на левый и правый хвостовые углы с помощью простых прерванных швов полипропилена 3/0 слева и справаСтороны самого каудального аспекта ректовагинального пространства.
    6. Добавьте еще один простой прерывистый шов на полпути вдоль каудального аспекта имплантата.
    7. Закройте влагалищные надрезы с помощью полиглактинового шва 3/0.
  3. Вставка и закрепление имплантата с помощью рук (техника с троакаром).
    1. Продолжите рассечение ректо-вагинального пространства, созданного на этапе 2.1, кранио-вентрально, чтобы достичь медиального аспекта отверстия обтуратора, которое можно легко пальпировать.
    2. Рассекайте пространство каудо-латерально, чтобы достичь каудального аспекта крестообразной связки и каудально расположенной мышцы копчика.
    3. С №. 24, сделайте четыре разреза шириной 1 см на стороне вульвы, прорезайте кожу и поверхностную мышечную фасцию ( рис. 2 , панель B и C).
    4. Сделайте два «вентральных» разреза на медиальном аспекте бедра, около 4 см черепных с каудальной границы oF - седалищная арка ( т. Е. Нижняя граница симфиза) и 3 см в поперечном направлении от средней линии ( рис. 2 , панель C).
    5. Сделайте два «дорзальных» разреза на уровне вставки хвостовых складок, на 2 см медиально до клубня ischiadicum, которые можно легко пальпировать ( рис. 2 , панель B).
    6. Поместите изогнутый троакар через один из вентральных разрезов ( рис. 2 , панель E).
    7. Пройдите троакар через мышцу аддуктора magnus, внешний обтуратор и медиальный аспект отверстия обтуратора.
    8. Контролируйте прогрессирование троакара пальцем, вставленным через вагинальный разрез. Направляйте его кончик к сухожильной дуге мышцы levator ani ( рис. 2 , панель E).
    9. Выставить направляющий провод в разрез вагинальной стенки и загрузить его соответствующим ипсилатеральным черепным рычагом ( рис. 2 , панель F).
    10. Потяните троакарь, загруженный с помощью мEsh через вышеуказанные структуры. Держите руку без натяжения.
    11. Повторите этот процесс со второй черепной мышцей через вентральный разрез на другой стороне животного.
    12. Через один из дорзальных разрезов пройдите троакар через мышцу копчика, только дистальнее к сугрозно-связной связки ( рис. 2 , панель G).
    13. Выставить направляющий провод через вагинальный разрез, схватить дорзальный рычаг сетки и вытащить его. Держите руку без натяжения и повторяйте ее с другой стороны.
    14. Отрегулируйте положение сетки, сплющив ее и надавив на плечи, но держите сетку без натяжения ( рис. 2, панель I, рисунок 3 ).
    15. Закрепите тело сетки простым прерванным полипропиленовым швом 3/0 в середине его каудальной границы, обеспечив его в окружающую соединительную ткань.
    16. Вырежьте руки на уровне кожи и закройте все разрезы кожи простым прерывистым 3/0 polyglECAPRON SUS ( рисунок 2 , панель H).
    17. Закройте вагинальный разрез с помощью шприца с полигликатроном 3/0.

figure-protocol-11471
Рисунок 3: Схематическое изображение овечьего таза с краниальным оружием, проходящим через обтураторное отверстие и каудальное оружие, проходящее через хвостовые складки. Широкая сугробная связка синева. Небольшая панель иллюстрирует положение плеч животного в лежачем положении, непосредственно перед укорочением чрезмерного количества материала. Основная панель показывает то же самое, но с удаленной кожей и мышцами.

Результаты

Управление в более длительной установке наблюдения

После хирургической процедуры вагинальная упаковка (солевая соль-раствор-пропитанная марлевая упаковка, вставленная во влагалище сразу после операции) может быть вставле?...

Обсуждение

Здесь мы описываем экспериментальную процедуру у овец, нацеленную на имитацию вагинальной диссекции и трансвагинальную сетчатую вставку имплантата с или без закрепляющих рычагов. Последующие шаги и инструменты были вдохновлены хирургическими процедурами, сделанными для POP и стресс?...

Раскрытие информации

Эта исследовательская программа по модели овец была поддержана безусловным грантом от Medri и Blasingame, Burch, Garrard и Ashley (Atlanta GA, США). Соглашения обрабатываются через бюро переводов Leuven Research and Development. Спонсоры не мешали планированию, исполнению или представлению отчета об этом эксперименте, а также не имели результатов. NS и LH являются получателями гранта от ЕС в рамках FP7 (проект Bip-Upy, NMP3-LA-2012-310389). AF поддержали грант от ЕС в отраслевой программе академического партнерства (251356).

Благодарности

Мы благодарим Ивана Лаермана, Розиту Кинарт, Энн Лиссенс (Центр хирургических технологий, КУ Лёвен, Лёвен, Бельгия). Jo Verbinnen и Kristof Reyniers (Институт анатомии Vesalius, медицинский факультет, KU Leuven, Leuven, Бельгия) оказали техническую поддержку в ходе эксперимента. Мы благодарим Leen Mortier за помощь в управлении данными и рукописью. Мы благодарим FEG Textiltechniken за изготовление прототипных сеток, их стерилизацию и безоговорочную передачу их на исследования.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Animals: 
parous female sheep (45 - 65 kg)Zoötechnical Institute of the KU LeuvenNAexperimetnal animal
Sterile clothing: 
sterile drape 45 x 75 cmLohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany33002other material
sterile OR drape 150 x 180 cmLohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany33009other material
sterile glowes 2xLohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany16652other material
sterile surgical gown 2xLohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany19342other material
surgical head cap 2xLohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany17427other material
surgical face mask 2xLohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany11983other material
Other surgical material
implantFEG Textiltechnik GmbH, Aachen, GermanyNApurposely designed implant
3/0 polypropylene sutureProlene, Ethicon, Diegem, Belgium8762Hsuture material
3/0 polygecaprone sutureVicryl, EthiconJ311Hsuture material
gauze swabs 10 x 10 cm 10x, 12-plyLohmann & Rauscher, Regensdorf, Germany11574other material
syringe 20 mLBecton Dickinsosn S.A., Madrid, Spain300613aqua-dissection
needle 16 gaugeTerumo, Leuven, BelgiumNN-2238Raqua-dissection
Surgical equipment:
blade no.22Fine science isntruments, Heidelberg, Germany10022-00surgical instruments
Allis tissue forceps 1xFine science isntruments, Heidelberg, Germany11091-15surgical instruments
Standart pattern forceps 1x2 theeth 1xFine science isntruments, Heidelberg, Germany11023-14surgical instruments
Standart pattern forceps straight serrated 1xFine science isntruments, Heidelberg, Germany11000-14surgical instruments
Scalpel handle 1xFine science isntruments, Heidelberg, Germany10004-13surgical instruments
Halstead-Mosquito forceps 2xFine science isntruments, Heidelberg, Germany13008-12surgical instruments
Standart pattern scissors 1xFine science isntruments, Heidelberg, Germany14001-14surgical instruments
Metzenbaum scissors 1xFine science isntruments, Heidelberg, Germany14016-18surgical instruments
Crile Wood needle holder 1xFine science isntruments, Heidelberg, Germany12003-15surgical instruments
Kell forceps 1xFine science isntruments, Heidelberg, Germany13018-14surgical instruments
Long Starr Self-Retaining Retractor with eight 5mm sharp stay hooksCooper Surgical, Tumbull, USA3704surgical instruments
Heaney Simon Vaginal RetractorMedical supplies & equipments co., Katy, Texas, USA403-129FSIsurgical instruments
Trocar (Insnare)Bard, West Sussex, United KingdomNAany trocar on market for transvaginal mesh implantation
Medication:
amoxilicilline clavulanate 1000mg / 300 mL (Ampiciline)GSK, Wavre, BelgiumNAantibiotics
buprenorfin 0.3 mg/mL + chlorocresol 1.35 mg/mL (Vetregesic)Ecuphar, Oostkamp, BelgiumNAanalgesia
ketamin HCL 100mg/mL (Ketamine 1000)Ceva Sante Animale, Brussels, BelgiumNAanesthesia
isoflurane (IsoFlo)Abbott Laboratories Ltd, Maidenhead, Berkshire, UKNAanesthesia
polyvidone iodium 7.5% (Braunol)B. Braun Medical, Machelen, BelgiumNAlocal desinfection
saline solution 500mlB. Braun Medical, Machelen, BelgiumNAaqua-dissection
Xxylazine HCl , 1 mL/50 kg Vexylan, Ceva Sante Animale, BelgiumNApremedication
atropine Sulfate 15 mg/ml (),Viatris, BelgiumNApremedication

Ссылки

  1. Glazener, C., et al. Childbirth and prolapse: Long-term associations with the symptoms and objective measurement of pelvic organ prolapse. BJOG An Int. J. Obstet. Gynaecol. 120 (2), 161-168 (2013).
  2. Jia, X., et al. Efficacy and safety of using mesh or grafts in surgery for anterior and/or posterior vaginal wall prolapse: systematic review and meta-analysis. BJOG. 115 (11), 1350-1361 (2008).
  3. Maher, C., et al. Transvaginal mesh or grafts compared with native tissue repair for vaginal prolapse. Review. 2 (2), 10-13 (2016).
  4. Nieminen, K., et al. Outcomes after anterior vaginal wall repair with mesh: a randomized, controlled trial with a 3 year follow-up. Am. J. Obstet. Gynecol. 203 (3), e1-e8 (2010).
  5. Abramowitch, S. D., Feola, A., Jallah, Z., Moalli, P. A. Tissue mechanics, animal models, and pelvic organ prolapse: a review. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 144, S146-S158 (2009).
  6. Couri, B., Lenis, A., Borazjani, A., Paraiso, M. F. R., Damaser, M. S. Animal models of female pelvic organ prolapse: lessons learned. Expert Rev. Obs. Gynecol. 7 (3), 249-260 (2012).
  7. Deprest, J., et al. The biology behind fascial defects and the use of implants in pelvic organ prolapse repair. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 17, S16-S25 (2006).
  8. Ozog, Y., Mazza, E., De Ridder, D., Deprest, J. Biomechanical effects of polyglecaprone fibers in a polypropylene mesh after abdominal and rectovaginal implantation in a rabbit. Int. Urogynecol. J. 23 (10), 1397-1402 (2012).
  9. Manodoro, S., et al. Graft-related complications and biaxial tensiometry following experimental vaginal implantation of flat mesh of variable dimensions. BJOG. 120 (2), 244-250 (2013).
  10. Endo, M., et al. Cross-linked xenogenic collagen implantation in the sheep model for vaginal surgery. Gynecol. Surg. , 113-122 (2015).
  11. Feola, A., et al. Host reaction to vaginally inserted collagen containing polypropylene implants in sheep. Am. J. Obstet. Gynecol. 212 (4), e1-e474 (2015).
  12. Barnhart, K. T., et al. Baseline dimensions of the human vagina. Hum. Reprod. 21 (6), 1618-1622 (2006).
  13. Tayrac, R., Alves, A., Thérin, M. Collagen-coated vs noncoated low-weight polypropylene meshes in a sheep model for vaginal surgery. A pilot study. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (5), 513-520 (2007).
  14. Sobiraj, A., Busse, G., I, H. B. O. S. E. D. Ivastigation into the blood plasma profiles progesterone in sheep sufferingform vaignal inversion and prolapse. Br. Vet. J. 142 (142), 218-223 (1986).
  15. Reisenauer, C., Kirschniak, A., Drews, U., Wallwiener, D. Anatomical conditions for pelvic floor reconstruction with polypropylene implant and its application for the treatment of vaginal prolapse. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 131, 214-225 (2007).
  16. Carey, M., Slack, M., Higgs, P., Wynn-Williams, M., Cornish, A. Vaginal surgery for pelvic organ prolapse using mesh and a vaginal support device. BJOG An Int. J. Obstet. Gynaecol. 115 (3), 391-397 (2008).
  17. Urbankova, I., et al. Comparative anatomy of the ovine and female pelvis. Gynecol. Obstet. Invest. , (2016).
  18. Maurer, M. M., Röhrnbauer, B., Feola, a., Deprest, J., Mazza, E. Mechanical biocompatibility of prosthetic meshes: A comprehensive protocol for mechanical characterization. J. Mech. Behav. Biomed. Mater. 40, 42-58 (2014).
  19. Leval, J. Novel Surgical Technique for the Treatment of Female Stress Urinary Incontinence. Transobturator Vaginal Tape Inside-Out. Eur. Urol. 44 (6), 724-730 (2003).
  20. Reisenauer, C., Kirschniak, A., Drews, U., Wallwiener, D. Transobturator vaginal tape inside-out. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 127 (1), 123-129 (2006).
  21. Bafghi, A., et al. Bowel perforation as late complication of tension-free vaginal tape. J Gynecol Obs. Biol Reprod. 34 (6), 606-607 (2005).
  22. Hinoul, P., Vanormelingen, L., Roovers, J. P., de Jonge, E., Smajda, S. Anatomical variability in the trajectory of the inside-out transobturator vaginal tape technique (TVT-O). Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (10), 1201-1206 (2007).
  23. Schaller, O., et al. . Illustrated Veterinary Anatomical Nomenclature. , (2007).
  24. . Serious Complications Associated with Transvaginal Placement of Surgical Mesh for Pelvic Organ Prolapse. FDA Safety Communication. , (2016).
  25. Reinier, M., Groep, G. Final Opinion on the use of meshes in urogynecological surgery. SCENIHR- European Commission. , (2016).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

125

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены