JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Настоящий протокол описывает метод применения прижигания у мышей, преимущества которого заключаются в снижении пугливости мышей, обеспечении их благополучия и повышении эффективности для исследователей.

Аннотация

Область исследований прижигания расширяется, с быстрым ростом публикаций в последние годы. Прижигание – это терапия, которая воспламеняет моксу на коже человека, с повышением периферической температуры кожи и локальным покраснением. Во время этого лечения реципиент должен оставаться неподвижным, чтобы предотвратить ожоги и обнажить места вмешательства для легкой манипуляции; Тем не менее, поддержание фиксированной осанки во время прижигания является большой проблемой для животных. Таким образом, манипулирование прижиганием у мелких животных, таких как мыши, может привести к ряду трудностей для исследователей. Кроме того, неудобная для животных поза может привести к страху и устойчивости к прижиганию, повышенному риску травм, ухудшению благополучия животных и снижению достоверности данных исследований. Эффективный, удобный метод прижигания необходим для защиты благополучия животных и минимизации негативного воздействия на результаты экспериментов. Тем не менее, методы прижигания очень вариабельны и часто имеют ограниченную эффективность. Что еще более важно, неудобная поза прижигания может вызвать реакцию на стресс, подобную той, которая наблюдается при тревоге, страхе и гневе, что может повлиять на данные исследования. Поэтому необходимы стратегии прижигания животных, которые наносят наименьший вред во время вмешательства. Этот протокол вводит метод привязки мыши для вмешательства прижигания, сводя к минимуму дискомфорт мыши и повышая эффективность исследования. Выделены основные стратегии привязывания мышей и применения прижигания, а также описана структура инструмента для привязи.

Введение

Прижигание – это наружное лечение, используемое в традиционной китайской медицине1. На протяжении веков он широко применялся как средство поддержания физической формы и профилактики и лечения болезней 2,3. Тем не менее, механизм прижигания еще предстоит выяснить; Таким образом, эта область исследований расширилась в последние годы, поскольку исследователи изучают ее эффекты и биологические механизмы.

Во время прижигания реципиент должен оставаться неподвижным для достижения наилучших результатов4. Процедура прижигания обычно длится 15-30 мин 5,6. Из-за этого манипуляции с прижиганием для животных, особенно мелких животных, таких как мыши и крысы (что благоприятно для использования в экспериментах на животных), стали большой проблемой для исследователей. Большинство устройств для прижигания подходят для клинического использования и не могут использоваться для животных, особенно для мелких животных, таких как мыши 7,8,9. Кроме того, в отличие от человека, животные едва ли могут выполнять приказы и оставаться устойчивыми в течение некоторого времени. Фиксированная и неудобная поза для животных может привести к пассивным эмоциям, включая тревогу, страх, гнев, нервозность и сопротивление лечению, увеличивая риск травм, снижая благополучие животных и приводя к снижению достоверности исследовательскихданных. Чтобы решить эту проблему, в предыдущих исследованиях анестетики применялись в течение длительного времени во время экспериментов на животных с использованием внешних методов традиционной китайской медицины, включая исследования иглоукалывания, прижигания и массажа. Однако, учитывая, что физические условия меняются под действием анестезии, и в большинстве клинических случаев прижигание вводится людям в сознании, анестезия может повлиять на достоверность данных исследования. Поэтому метод привязи животных осознанно и комфортно становится сложной задачей. Для решения этих технических проблем были внедрены специализированные устройства для прижигания мыши. Этот протокол обеспечивает метод привязки, который поможет исследователям в проведении лечения прижиганием животных, позволяя животным оставаться устойчивыми, сознательными и комфортными.

протокол

Все эксперименты проводились в соответствии с Руководством Национального института здравоохранения по уходу и использованию лабораторных животных и были одобрены Комитетом по уходу за животными и их использованию Университета Чэнду. Уход и содержание животных в лаборатории осуществлялись в соответствии со ссылками14,15. Для исследования использовали взрослых самцов мышей C57BL/6J массой 20-25 г. Все мыши содержались в 12-часовом цикле свет/темнота при температуре 24 °C и влажности 40%-50%, со свободным доступом к пище и воде. В следующем протоколе описаны процедуры прижигания в типичных лабораторных условиях.

1. Подготовка оборудования

  1. Модем мыши
    1. Подготовьте устройство для привязки мыши, состоящее из вертикальной пластины, вертикального основания пластины и кронштейнов из дерева.
      1. Соберите неподвижное тело с помощью прямой деревянной шины (длина: 30 см x ширина: 3 см x высота: 3 см) и прикрепите неподвижный ремень на липучке (который состоит из двух сторон: стороны крючка (4 см x 3 см) и стороны петли (10 см x 3 см)), чтобы обеспечить привязку корпуса мыши, сохраняя при этом гибкость (см. Таблицу материалов).
      2. С помощью клеевого пистолета прикрепите сторону крючка с правой стороны деревянной шины и прикрепите 1/4 длины петлевой стороны с левой стороны.
    2. Поместите мышь на неподвижную кровать и используйте фиксированный ремень на липучке, чтобы привязать туловище мыши.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что ремень не настолько тугой, чтобы оказывать давление на сердце, что может привести к смерти мыши. Привяжите мышь свободно, но прочно.
    3. С помощью ленты прикрепите нижние/верхние конечности к обеим сторонам деревянной шины и прикрепите хвост к поверхности деревянной шины.
  2. Подготовка стойки для лежанки для мыши
    ПРИМЕЧАНИЕ: Стойка состоит из вертикальной деревянной пластины, деревянной опорной плиты и деревянных кронштейнов. Кронштейн состоит из L-образного куска нержавеющей стали, который обеспечивает поддержку для каждой мышиной кровати.
    1. Прикрепите вертикальную пластину к опорной плите и создайте квадратные канавки в опорной плите, чтобы вставить деревянные палочки, используемые в качестве перегородок (Рисунок 1).
    2. Подготовьте прозрачный пластиковый чехол для головы, если мышам вводят прижигание над головой.
      1. Используйте шприц объемом 1000 мл и извлеките иглу и стержень. С помощью режущего инструмента или ножа разрежьте рубашку шприца пополам.
      2. Выберите любую сторону оболочки шприца, отрежьте голову и хвост и отложите среднюю часть (длина: 4 см) в качестве чехла для мыши.
      3. Просверлите отверстие (1 см) в центре рубашки шприца с помощью дрели-станка и поместите в отверстие палочку моксы. Наденьте на голову мыши головной убор, чтобы ограничить движение ее головы и защитить ее от воспламененной моксы.
    3. Прикрепите две параллельные деревянные полосы (длина: 7 см x ширина: 1 см) и горизонтальную крестовину (длина: 7,5 см x ширина: 1 см) к головному концу мышиной кровати, если мышам прижигают передние конечности (Рисунок 2).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Расстояние между каждой параллельной деревянной полосой и лежанкой для мыши должно составлять 1 см. Количество кронштейнов и высота вертикальных пластин могут быть определены на основе экспериментальных требований. Эти действия следует выполнять осторожно, чтобы не напугать мышей. Обязательно дайте мышам адаптивную тренировку за 1 неделю до эксперимента.
  3. Подготовка держателя палочки для прижигания
    1. Подготовьте держатель палочки для прижигания, состоящий из магнитного металлического прямоугольника (длина: 30 см), основания кронштейна (длина: 5 см x ширина: 5 см x высота: 2 см) и деревянных кубиков (длина: 3 см x ширина: 1,5 см x высота: 1 см), каждый с отверстием (диаметр: 0,55 см) в центре, в которое можно поместить палочку моксы (см. Таблицу материалов).
    2. Прикрепите плоский тонкий магнит (длина: 3 см × ширина: 1,5 см, толщина: 0,2 см) к одной стороне каждого кубика. Магнитное притяжение между кубиками с палочками моксы и держателем позволяет регулировать высоту палочек моксы.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что магнитные полюса кубических магнитов находятся напротив полюса магнита-держателя.
  4. Чтобы записать начало и окончание процедуры прижигания, поместите устройство синхронизации (см. Таблицу материалов) рядом с устройством привязки мыши, чтобы его можно было легко прочитать.
  5. Используйте голую руку или руку в тонких перчатках, когда держите мышей и привязывайте их. Рука в тонкой перчатке также эффективна во время процедуры прижигания.

2. Процедура прижигания

  1. Наденьте лабораторные перчатки. Перед процедурой прижигания сбрейте шерсть с помощью бритвы мыши в месте прижигания, чтобы обнажить акупунктурную точку.
  2. Вставьте палочки моксы (0,5 см в диаметре и 10 см в длину) в держатель палочки для прижигания (который состоит из магнитного металлического прямоугольника, основания кронштейна и деревянных кубиков с отверстиями в центрах для вставки палочки моксы, а на одном держателе палочки может поместиться только одна палочка мокса, шаг 1.3).
  3. Чтобы определить температуру прижигания, прикрепите цифровой термодетектор к акупунктурной точке для отслеживания изменения температуры.
  4. Запустите таймер и подожгите палочку моксы; Фиксируйте или контролируйте расстояние между кожей акупунктурной точки и освещенным концом палочки MOXA в зависимости от изменения температуры, необходимого для эксперимента.

3. Одновременное прижигание мыши

ПРИМЕЧАНИЕ: Мышей можно обрабатывать прижиганием как группу. Стойка для мышей используется для размещения мышиных лежаков таким образом, чтобы можно было одновременно лечить группу мышей.

  1. Поместите каждую лежанку для мыши на стойку и вставьте деревянную палочку в опорную пластину, чтобы защитить мышей от падения (Рисунок 3).
  2. Вставьте палочки моксы (0,5 см в диаметре и 12 см в длину) в держатель палочки для прижигания на уровнях, совпадающих с каждой кроватью для мыши. Отрегулируйте расстояние между стойкой для мыши и держателем для стиков, а затем подожгите палочки моксы.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это позволяет лечить мышей с помощью прижигания в расслабленном, комфортном состоянии. Во время прижигания следите за тем, чтобы расстояние между штативом для мыши и держателем для стика оставалось одинаковым для всех мышей.
  3. Перед моделированием проведите тест на реакцию мыши на порог теплового поглощения (TWL), чтобы определить, будет ли прижигание эффективным при анальгезии.

Результаты

В таблице 1 обобщены различные факторы, влияющие на реакцию на прижигание. На положительные результаты прижигания мышей указывают многочисленные показатели благополучия мышей и положительные эффекты.

Далее приводятся конкретные примеры рез?...

Обсуждение

Техника прижигания эффективна при многих расстройствах, таких как усталость, бессонница, диарея и болевой синдром 20,21,22,23,24,25,26. Обладая преим...

Раскрытие информации

Авторы заявляют, что им нечего раскрывать.

Благодарности

Эта работа была поддержана грантами Национального фонда естественных наук Китая (81704187, 8210152562), Сычуаньской научно-технической программы (2019YJ0587, 2018JY0482, 2019YJ0329), Сычуаньской академии медицинских наук и Исследовательского фонда Сычуаньской народной больницы (2018ZX05), Исследовательского фонда ученых Синлинь Университета традиционной китайской медицины Чэнду (QNXZ2019034).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Complete Freund's Adjuvant (CFA)Sigma-AldrichSF588102
Glue gunDeli Group Co., Ltd.DL5041
Laboratory gloveBoci  Co., Ltd53625130323
Magnetic metal rectangle (thickness: 0.2 cm)Sitoo Stationery Co., Ltd1007908729
Moxa stickHanyi Airong factory5613
Steel sheetRizhan metal materials Co., Ltd1108
Syringe (1000 mL )Xinmin Fuda Co., Ltd796341
TimerBevoza Co., LtdKT003
Velcro beltMinnesota Mining and Manufacturing Co., Ltd3MSJ3550
Wooden cubeChuang Hing Wood Chip Co., Ltd2581457A
Wooden splintChuang Hing Wood Chip Co., Ltd3410968M
Wooden stickChuang Hing Wood Chip Co., Ltd2785476M
Wooden stripChuang Hing Wood Chip Co., Ltd2374652S

Ссылки

  1. Ebrary, I. Guide for the care and use of laboratory animals. NIH Publication. 327 (3), 963-965 (2011).
  2. Wang, M., et al. Mechanism of traditional chinese medicine in treating knee osteoarthritis. Journal of Pain Research. 13, 1421-1429 (2020).
  3. Wang, T., Xu, C., Pan, K., Xiong, H. Acupuncture and moxibustion for chronic fatigue syndrome in traditional Chinese medicine: A systematic review and meta-analysis. BMC Complementary and Alternative Medicine. 17 (1), 163 (2017).
  4. Zimmermann, M. Ethical guidelines for investigations of experimental pain in conscious animals. Pain. 16 (2), 109-110 (1983).
  5. Zhou, W., et al. Effect of moxibustion and acupuncture on gastric mucosal cell apoptosis and expression of NF-κB, Bcl-2 in chronic atrophic gastritis rats. Acupuncture Research. 46 (4), 284-288 (2021).
  6. Wang, Y., et al. βEffect of moxibustion on -EP and Dyn levels of pain-related indicators in patients with rheumatoid arthritis. Evidence-based Complementary and Alternative Medicine: eCAM. 2021, 6637554 (2021).
  7. Huang, P., et al. Design of moxibustion device for experimental rabbits. Chinese Acupuncture & Moxibustion. 39 (09), 1024-1026 (2019).
  8. Li, M., Sun, Z. An automatic moxibustion box with temperature control. Chinese Acupuncture & Moxibustion. 39 (06), 649-650 (2019).
  9. Luo, Z., Zhang, C., Zhou, M., Chen, C. Manufacture and clinical application of a medical warm moxibustion instrument. Shanghai J Acu-mox. 37 (05), 596-598 (2018).
  10. Liang, Y. L., Sun, Y. H., Sun, Y. H., Sun, L. H., Jiang, H. T. Design and use of rat box for moxibustion experiment. Acupuncture Research. 36 (03), 224 (2011).
  11. Meng, J., Fu, W., Zhu, G., Song, L. Effect of acupuncture on coronary collateral circulation function in dogs with experimental myocardial infarction. Acupuncture Research. 3 (1), 196-197 (1986).
  12. Tan, D. Experimental study on the effect of moxibustion at Neiguan point on the content of serum free fatty acid (FFA) in rabbits with acute myocardial ischemia. Liaoning Journal of Traditional Chinese Medicine. 6, 44-45 (1991).
  13. Seo, B., et al. Skeletal muscle regeneration with robotic actuation-mediated clearance of neutrophils. Science Translational Medicine. 13 (614), (2021).
  14. Bielitzki, J. T., Barbee, R. W., Garber, J. Guide for the care and use of laboratory animals. NIH Publication No 85-23(rev). 327 (3), 963-965 (2011).
  15. National Research Council (US), Institute for Laboratory Animal Research. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. National Research Council (US), Institute for Laboratory Animal Research. , (1996).
  16. Zuo, C., et al. Ipsi- and contralateral moxibustion generate similar analgesic effect on inflammatory pain. Evidence-based complementary and Alternative Medicine: eCAM. 2019, 1807287 (2019).
  17. Poulaki, S., Rassouli, O., Liapakis, G., Gravanis, A., Venihaki, M. Analgesic and anti-inflammatory effects of the synthetic neurosteroid analogue BNN27 during CFA-induced hyperalgesia. Biomedicines. 9 (9), 1185 (2021).
  18. Duan, L., et al. Metabolomics analysis on mice with depression ameliorated by acupoint catgut embedding. Frontiers in Psychiatry. 12, 703516 (2021).
  19. Wang, J., et al. Protection against doxorubicin-induced cardiotoxicity through modulating iNOS/ARG 2 balance by electroacupuncture at PC6. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2021, 6628957 (2021).
  20. Chen, Y., Gao, X., Sun, C. Pricking and penetrating moxibustion therapy in patients with refractory insomnia: A randomized and controlled clinical trial. Journal of Traditional Chinese Medicine. 38 (5), 754-762 (2018).
  21. Liu, C., et al. Effectiveness and safety of fire-needle moxibustion on insomnia: Protocol for a systematic review and meta-analysis. Medicine. 98 (7), 14509 (2019).
  22. Han, K., et al. Moxibustion for treating cancer-related fatigue: A multicenter, assessor-blinded, randomized controlled clinical trial. Cancer Medicine. 10 (14), 4721-4733 (2021).
  23. Bao, C., et al. Effect of mild moxibustion on intestinal microbiota and NLRP6 inflammasome signaling in rats with post-inflammatory irritable bowel syndrome. World Journal of Gastroenterology. 25 (32), 4696-4714 (2019).
  24. Chen, F., et al. Efficacy and safety of moxibustion for chronic low back pain: A systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Complementary Therapies in Clinical Practice. 39, 101130 (2020).
  25. Zhang, C., et al. The role of STIM1/ORAI1 channel in the analgesic effect of grain-sized moxibustion on inflammatory pain mice model. Life Sciences. 280, 119699 (2021).
  26. Zhao, L., et al. Effectiveness of moxibustion treatment as adjunctive therapy in osteoarthritis of the knee: A randomized, double-blinded, placebo-controlled clinical trial. Arthritis Research & Therapy. 16 (3), 133 (2014).
  27. Goldman, N., et al. Adenosine A1 receptors mediate local anti-nociceptive effects of acupuncture. Nature Neuroscience. 13 (7), 883-888 (2010).
  28. Torres-Rosas, R., et al. Dopamine mediates vagal modulation of the immune system by electroacupuncture. Nature Medicine. 20 (3), 291-295 (2014).
  29. Solovchuk, M., Deng, H., Sheu, T. Experimental and numerical study on the temperature elevation in tissue during moxibustion therapy. Evidence-based Complementary and Alternative Medicine:eCAM. 2020, 7514302 (2020).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены