АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Здесь представлен протокол определения абсорбции, транслокации и распределения имидаклоприда в пшенице в гидропонных условиях с использованием жидкостной хроматографии-тандемной масс-спектрометрии (ЖХ-МС-МС). Результаты показали, что имидаклоприд может поглощаться пшеницей, и имидаклоприд был обнаружен как в корнях, так и в листьях пшеницы.

Аннотация

Неоникотиноиды, класс инсектицидов, широко используются из-за их новых способов действия, высокой инсектицидной активности и сильного поглощения корней. Имидаклоприд, наиболее широко используемый инсектицид во всем мире, является репрезентативным неоникотиноидом первого поколения и используется для борьбы с вредителями сельскохозяйственных культур, овощей и фруктовых деревьев. При таком широком применении имидаклоприда его остатки в сельскохозяйственных культурах привлекают все большее внимание. В настоящем исследовании 15 проростков пшеницы помещали в питательную среду, содержащую 0,5 мг/л или 5 мг/л имидаклоприда для гидрокультуры. Содержание имидаклоприда в корнях и листьях пшеницы определяли через 1 день, 2 дня и 3 дня гидрокультуры для изучения миграции и распределения имидаклоприда в пшенице. Результаты показали, что имидаклоприд был обнаружен как в корнях, так и в листьях растения пшеницы, причем содержание имидаклоприда в корнях было выше, чем в листьях. Кроме того, концентрация имидаклоприда в пшенице увеличивалась с увеличением времени воздействия. После 3 дней воздействия корни и листья пшеницы в группе лечения 0,5 мг/л содержали 4,55 мг/кг ± 1,45 мг/кг и 1,30 мг/кг ± 0,08 мг/кг имидаклоприда, соответственно, в то время как корни и листья группы лечения 5 мг/л содержали 42,5 мг/кг ± 0,62 мг/кг и 8,71 мг/кг ± 0,14 мг/кг имидаклоприда, соответственно. Результаты настоящего исследования позволяют лучше понять остатки пестицидов в сельскохозяйственных культурах и служат справочными данными для оценки экологического риска, связанного с пестицидами.

Введение

В современной агрономии использование пестицидов имеет важное значение для повышения урожайности сельскохозяйственных культур. Неоникотиноидные инсектициды изменяют баланс мембранных потенциалов, контролируя никотиновые ацетилхолиновые рецепторы в нервной системе насекомых, тем самым ингибируя нормальную проводимость центральной нервной системы насекомого, что приводит к параличу и гибели насекомых1. По сравнению с традиционными инсектицидами неоникотиноиды обладают такими преимуществами, как новые способы действия, высокая инсектицидная активность и сильное поглощение корней, что делает их очень успешными на рынке пестицидов 2,3. Сообщается, что объем продаж неоникотиноидов составил 27% мирового рынка пестицидов в 2014 году. Среднегодовой темп роста неоникотиноидов составил 11,4% с 2005 по 2010 год, из которых около 7% было зарегистрировано в Китае 4,5,6%. С конца 2016 года по первое полугодие 2017 года продажи пестицидов в Китае начали восстанавливаться после падения, а цены на пестициды продолжали расти, среди которых значительный рост цен показали неоникотиноидные инсектициды7. К настоящему времени было разработано три поколения неоникотиноидных инсектицидов, каждое из которых содержит пиридинхлоридные, тиазолиловые и тетрагидрофурановые группы никотина, соответственно8.

Имидаклоприд представляет собой первое поколение неоникотиноидных инсектицидов, молекулярная формула которых C9H10ClN5O2 и представляет собой бесцветный кристалл. Имидаклоприд используется в основном для борьбы с вредителями, такими как тля, кузнечики, мучные черви и трипсы9 , и может применяться к таким культурам, как рис, пшеница, кукуруза, хлопок и овощи, такие как картофель, а также фруктовые деревья. Из-за долгосрочного, существенного и постоянного применения пестицидов количество как полезных насекомых, так и естественных врагов вредителей быстро сократилось, а некоторые сельскохозяйственные вредители стали устойчивыми к пестицидам, что привело к порочному кругу применения постоянных и растущих количеств пестицидов10. Кроме того, широкое применение пестицидов привело к ухудшению качества почвы, стойким остаткам пестицидов в сельскохозяйственной продукции и другим экологическим проблемам, которые не только наносят значительный ущерб сельскохозяйственной экологической среде11, но и представляют серьезную угрозу здоровью человека12. Распыление пестицидов серьезно влияет на рост и качество почвенных микробов и почвенных животных13. Необоснованное или чрезмерное использование пестицидов создало значительные риски для безопасности почвы и водной среды, животных и растений и даже жизни человека14. В последние годы проблема избыточных остатков пестицидов в сельскохозяйственных культурах стала более острой в связи с широким применением пестицидов. Когда имидаклоприд использовался для повышения урожайности овощей, скорость абсорбции имидаклоприда в овощах увеличивалась с увеличением количества и остатка имидаклоприда15. Поскольку пшеница является основной продовольственной культурой, ее производство и безопасность имеют решающее значение. Поэтому необходимо уточнить остатки и политику распределения пестицидов, используемых для пшеницы.

В последние годы было разработано множество методов извлечения остатков имидаклоприда из воды, почвы и растений. Метод QuEChERS (быстрый, простой, дешевый, эффективный, прочный и безопасный) представляет собой новый метод, который сочетает в себе технологию твердофазной микроэкстракции и технологию дисперсной твердофазной экстракции и включает использование ацетонитрила в качестве экстракционного растворителя и удаление смешанных примесей и воды в образце с использованием NaCl и безводного MgSO4 соответственно16. Метод QuEChERS требует минимального количества стеклянной посуды и имеет простые экспериментальные этапы, что делает его одним из самых популярных методов экстракции пестицидов17. Для обнаружения имидаклоприда предел обнаружения составляет всего 1 × 10−9 г18 был достигнут с помощью жидкостной хроматографии (ЖК), а 1 × 10−11 г 19 был достигнут с помощью газовой хроматографии (ГХ). Благодаря высокой разрешающей способности и чувствительности ЖК-МС и ГХ-МС показали еще более низкие пределы обнаружения имидаклоприда от 1 × 10-13 до 1 × 10-14 г 20,21; Таким образом, эти методы хорошо подходят для анализа следовых остатков имидаклоприда.

В настоящем исследовании имидаклоприд был выбран в качестве целевого загрязнителя, а пшеница была выбрана в качестве тестовой культуры для изучения распределения остатков имидаклоприда в пшенице. В этом протоколе подробно описывается метод всестороннего анализа обогащения и переноса пестицида имидаклоприда в пшенице путем изучения поглощения и хранения имидаклоприда в различных частях растений пшеницы, выращенных в условиях гидропоники. Настоящее исследование направлено на то, чтобы обеспечить теоретическую основу для оценки риска остатков пестицидов в пшенице, руководство по рациональному применению пестицидов в сельскохозяйственной производственной деятельности для сокращения остатков пестицидов и повышения безопасности растениеводства.

протокол

1. Проращивание семян пшеницы

  1. Выберите 1 000 семян пшеницы (Jimai 20) с полными гранулами, неповрежденными эмбрионами и однородным размером (длина: 6 мм ± 0,5 мм).
  2. 333,3 мл 30% раствора H 2 O 2 в мерную колбу объемом 1 л и разбавить деионизированной водой до приготовления 1 л 10% раствора H 2 O2. Погрузите семена пшеницы в 10% раствор H 2 O2на 15 минут для обеззараживания поверхности семян (рис. 1).
  3. Промойте семена пшеницы 5 раз проточной стерильной водой в течение 10 с каждый раз.
  4. Равномерно распределите семена пшеницы зародышами вверх в стеклянной чашке Петри, содержащей влажную стерильную фильтровальную бумагу (рис. 2). Поместите чашку Петри в инкубатор с искусственным климатом при температуре 30 °C и относительной влажности 80%. Культивируйте семена пшеницы в темноте в течение 3 дней, пока они не прорастут и не укоренятся.

figure-protocol-1124
Рисунок 1: Обеззараживание семян пшеницы. Семена пшеницы замачивали в 10% растворе H 2O2 (в стакане) на 15 мин для обеззараживания поверхности семян. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-protocol-1672
Рисунок 2: Проращивание семян пшеницы. Семена пшеницы равномерно распределяли в стеклянной чашке Петри, содержащей влажную стерильную фильтровальную бумагу. Чашка Петри была помещена в инкубатор с искусственным климатом для проращивания семян пшеницы. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

2. Выращивание проростков пшеницы

  1. Растворите 551 мг смеси базальных солей Хогланда в 1 л деионизированной воды для приготовления 1/2 питательного раствора Hoagland (содержащего 0,75 ммоль/л K2SO 4, 0,1 ммоль/л KCl, 0,6 ммоль/л MgSO 4,4,0 × 10−2 ммоль/л FeEDTA, 1,0 × 10−3 ммоль/л H3 BO3, 1,0 × 10−3ммоль/лMnSO4, 1,0 × 10−3 ммоль/л ZnSO4, 1,0 × 10−4 ммоль/лCuSO4 и 5,0 × 10−6 ммоль/л Na2 MoO4).
  2. После того, как семена пшеницы (шаг 1.4) прорастут, поместите 15 проростков пшеницы в гидропонное оборудование (см. Таблицу материалов), содержащее 100 мл 1/2 питательного раствора Hoagland для гидропоники (рис. 3). Поместите весь гидропонный аппарат в инкубатор с искусственным климатом (см. Таблицу материалов) и инкубируйте в течение 7 дней при температуре 25 ° C и относительной влажности 80% с 16-часовым светлым / 8-часовым темным фотопериодом.

figure-protocol-3457
Рисунок 3: Гидропонное выращивание проростков пшеницы. Проростки пшеницы выращивали на гидропонике в течение 0 дней, 3 дней и 7 дней в 100 мл 1/2 питательного раствора Hoagland. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

3. Поэкспериментируйте, подвергая растения пшеницы воздействию раствора имидаклоприда

  1. После 7-дневного гидропонного периода пересадите растения пшеницы в 1/2 питательного раствора Hoagland, содержащего 0,5 мг / л или 5 мг / л имидаклоприда, для проведения экспериментов по воздействию имидаклоприда. Выращивайте 15 растений пшеницы в каждом гидропонном устройстве. Установите 15 гидропонных устройств для каждой группы концентрации имидаклоприда, чтобы обеспечить отбор адекватных проб во время отбора проб.
  2. Поместите все гидропонное оборудование в инкубатор с искусственным климатом на 3 дня при температуре 25 ° C и относительной влажности 80% с 16-часовым светлым / 8-часовым темным фотопериодом.
  3. В течение всего периода воздействия ежедневно собирайте корни пшеницы (0,2 г на растение пшеницы) и листья (0,5 г на растение пшеницы). Интегрируйте образцы пшеницы из каждого пятого гидропонного устройства в параллельную группу и определите содержание имидаклоприда в образцах.

4. Порядок извлечения имидаклоприда из пшеницы

  1. Извлечение имидаклоприда из корней пшеницы
    1. Чтобы избежать экспериментальных ошибок, промывайте корни пшеницы 4 раза проточной стерильной водой в течение 10 с каждый раз, чтобы удалить имидаклоприд, адсорбированный на поверхности корня.
    2. Измельчите корни пшеницы ножницами примерно на кусочки размером примерно 1 см (рис. 4). Взвесьте 10,00 г измельченных корней пшеницы и поместите в центрифужную пробирку объемом 50 мл.
    3. Добавьте 10 мл ацетонитрила в центрифужную пробирку и встряхните пробирку на вихре в течение 1 мин. Затем добавьте 4 г безводного MgSO4 и 1,5 г NaCl в центрифужную пробирку и сразу же встряхните пробирку в течение 30 с. Центрифугируйте пробирку в течение 5 мин при 6 000 x g.
    4. Аспирируйте надосадочную жидкость одноразовым шприцем и пропустите ее через шприцевой фильтр (размер пор 0,22 мкм) для получения образца.
  2. Извлечение имидаклоприда из листьев пшеницы (рис. 5)
    1. Измельчите свежие листья пшеницы ножницами примерно на кусочки размером примерно 1 см (рис. 4). Взвесьте 10,00 г измельченных листьев пшеницы и поместите в центрифужную пробирку объемом 50 мл.
    2. Добавьте 10 мл ацетонитрила в центрифужную пробирку и встряхните пробирку на вихре в течение 1 мин.
    3. Добавьте 4 г безводного MgSO4 и 1,5 г NaCl в центрифужную пробирку и немедленно встряхните пробирку в течение 30 с.
    4. Центрифугируйте пробирку в течение 5 мин при 6 000 x g.
    5. После центрифугирования добавьте 2 мл надосадочной жидкости в центрифужную пробирку объемом 5 мл, содержащую 50 мг графитированного технического углерода (GCB) и 150 мг безводного MgSO4 (для удаления пигмента и влаги из образца), и встряхните центрифужную пробирку в течение 30 с (рис. 6). Центрифугируйте пробирку в течение 5 мин при 6 000 x g.
    6. Аспирируйте надосадочную жидкость одноразовым шприцем и пропустите ее через шприцевой фильтр (размер пор 0,22 мкм) для получения образца.

figure-protocol-7331
Рисунок 4: Измельченные корни и листья пшеницы. Свежие корни и листья пшеницы измельчали ножницами примерно на кусочки размером примерно 1 см. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-protocol-7850
Рисунок 5: Экстракция имидаклоприда в листьях пшеницы. Имидаклоприд в образцах был выделен с помощью метода QuEChERS (этапы 4.2.1-4.2.4 протокола). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-protocol-8374
Рисунок 6: Очистка имидаклоприда в листьях пшеницы. Обеззараживающее вещество составляло 50 мг GCB + 150 мг MgSO4. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

5. Количественная оценка имидаклоприда

  1. Количественно определите имидаклоприд в образце с помощью жидкостной хроматографии-тандемной масс-спектрометрии (ЖХ-МС-МС) на основе стандартной кривой (y = 696,61x + 56,411, R = 1), полученной из концентраций имидаклоприда 0,2-250 мкг/л. (Рисунок 7). Масс-спектрометр был оснащен колонкой C18 (100 мм x 2,1 мм, 3 мкм) и источником ионизации электрораспылением (ESI+). Программа элюирования и параметры источника ионов приведены в таблице 1.

figure-protocol-9505
Рисунок 7: Хроматограмма и масс-спектрограмма имидаклоприда в листьях пшеницы. На верхней панели показана хроматограмма имидаклоприда (время удержания = 0,93 мин). На нижней панели показана масс-спектрограмма имидаклоприда через 0,93 мин, показывающая интенсивность отклика продукции (m/z = 208,8) имидаклоприда. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Температура колонны40 °С
Растворитель А99,9% воды/0,1% муравьиной кислоты (об./об.)
Растворитель Бацетонитрил
Программа элюции0–0,5 мин, А = 20%
0,5–2 мин, А = 20–50%
2–3 мин, А = 50%
3–3,1 мин, А = 50–20%
3,1–5 мин, А=20%
Расход (мл/мин)0.3
Объем впрыска (мкл)5
Температура капилляров (°C)330
Температура испарителя (°C)350
Расход газа в оболочке (Arb)40
Расход вспомогательного газа (Arb)20
Напряжение распыления (В)3900
Давление ударного газа (мТорр)1.5
Ион-предшественник256.1
Ион продукта/энергия столкновения (эВ)208.8/16

Таблица 1: Программа элюирования и параметры источника ионов методом жидкостной хромато-масс-спектрометрии.

Результаты

Инструментальный предел обнаружения (LOD) имидаклоприда составлял 5,76 × 10−14 г, а LOD имидаклоприда в корне или листе пшеницы составлял 0,01 мкг/кг; Матричного эффекта не наблюдалось. Восстановительные урожаи имидаклоприда в пшенице приведены в таблице 2. Выход имидаклоприда и?...

Обсуждение

В последние годы часто сообщалось о методах предварительной обработки и обнаружения остатков пестицида имидаклоприда. Badawy et al.23 использовали высокоэффективную жидкостную хроматографию для определения содержания имидаклоприда в плодах томатов, выращенных в тепличных ус...

Раскрытие информации

Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов. Все авторы прочитали и одобрили рукопись. Эта работа не была опубликована ранее и не рассматривается каким-либо другим рецензируемым журналом.

Благодарности

Работа выполнена при поддержке Национального фонда естественных наук Китая (No 42277039).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
AcetonitrileSigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co. Ltd.01-06-1995Suitable for HPLC, gradient grade, >99.9%
Analytical balanceSartorius Lab Instruments Co.Ltd.GL124-1SCN
Artificial climate incubator  Shanghai Badian Instrument Equipment Co. Ltd.HK320
CentrifugeEppendorf China Co. Ltd.Centrifuge5804
Disposable syringeSigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co. Ltd.Z116866Capacity 5 mL, graduated 0.2 mL, non-sterile
Formic acidSigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co. Ltd.Y0001970European pharmacopoeia reference standard
Graphitized carbon black (GCB)Sigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co. Ltd.V90005845 μm
H2O2Sigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co.Ltd.3164230% (w/w)
Hoagland’s Basal Salt MixtureShanghai Yu Bo Biotech Co. Ltd.NS1011Anhydrous, reagent grade
Hydroponic equipmentJiangsu Rongcheng Agricultural Science and Technology Development Co.Ltd.SDZ04BD
Hypersil BDS C18 columnThermo Fisher Scientific (China) Co. Ltd.28103-102130
ImidaclopridSigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co. Ltd.Y0002028European pharmacopoeia reference standard
MgSO4Sigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co. Ltd.208094Anhydrous, reagent grade, >97%
NaClSigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co.Ltd.S9888Reagent grade, 99%
pH meterShanghai Thunder Magnetic Instrument FactoryPHSJ-3F
Phytotron boxHarbin Donglian Electronic Technology Co. Ltd.HPG-280B
PipettesEppendorf China Co. Ltd.Research plus
Syringe filterSigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co.Ltd.SLGV033NNylon, 0.22 µm pore size, 33 mm, non-sterile
Ultra performance liquid chromatography tandem triple quadrupole mass spectrometryThermo Fisher Scientific (China) Co. Ltd.UltiMate 3000
TSQ Quantum Access MAX
Vortex mixerShanghai Yetuo Technology Co. Ltd.Vortex-2
Wheat seedLuKe seed industryJimai 20

Ссылки

  1. Lin, P. C., Lin, H. J., Liao, Y. Y., Guo, H. R., Chen, K. T. Acute poisoning with neonicotinoid insecticides: A case report and literature review. Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology. 112 (4), 282-286 (2013).
  2. North, J. H., et al. Value of neonicotinoid insecticide seed treatments in Mid-South corn (Zea mays) production systems. Journal of Economic Entomology. 111 (1), 187-192 (2018).
  3. Simon-Delso, N., et al. Systemic insecticides (neonicotinoids and fipronil): Trends, uses, mode of action and metabolites. Environmental Science and Pollution Research. 22 (1), 5-34 (2015).
  4. Bass, C., Denholm, I., Williamson, M. S., Nauen, R. The global status of insect resistance to neonicotinoid insecticides. Pesticide Biochemistry and Physiology. 121, 78-87 (2015).
  5. Craddock, H. A., Huang, D., Turner, P. C., Quiros-Alcala, L., Payne-Sturges, D. C. Trends in neonicotinoid pesticide residues in food and water in the United States, 1999-2015. Environmental Health. 18 (1), 7 (2019).
  6. Shao, X. S., Liu, Z. W., Xu, X. Y., Li, Z., Qian, X. H. Overall status of neonicotinoid insecticides in China: Production, application and innovation. Journal of Pesticide Science. 38 (1-2), 1-9 (2013).
  7. Zhao, Y., et al. Urinary neonicotinoid insecticides in children from South China: Concentrations, profiles and influencing factors. Chemosphere. 291, 132937 (2022).
  8. Kurwadkar, S., Evans, A. Neonicotinoids: Systemic insecticides and systematic failure. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 97 (6), 745-748 (2016).
  9. Sadaria, A. M., et al. Passage of fiproles and imidacloprid from urban pest control uses through wastewater treatment plants in northern California, USA. Environmental Toxicology and Chemistry. 36 (6), 1473-1482 (2017).
  10. Damalas, C. A., Eleftherohorinos, I. G. Pesticide exposure, safety issues, and risk assessment indicators. International Journal of Environmental Research and Public Health. 8 (5), 1402-1419 (2011).
  11. Hayes, T. B., et al. Demasculinization and feminization of male gonads by atrazine: Consistent effects across vertebrate classes. Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. 127 (1-2), 64-73 (2011).
  12. Rani, L., et al. An extensive review on the consequences of chemical pesticides on human health and environment. Journal of Cleaner Production. 283, 124657 (2021).
  13. Xu, Y. Q., et al. Ecotoxicity evaluation of azoxystrobin on Eisenia fetida in different soils. Environmental Research. 194, 110705 (2021).
  14. Yavari, S., Malakahmad, A., Sapari, N. B. Biochar efficiency in pesticides sorption as a function of production variables-A review. Environmental Science and Pollution Research. 22 (18), 13824-13841 (2015).
  15. Delcour, I., Spanoghe, P., Uyttendaele, M. Literature review: Impact of climate change on pesticide use. Food Research International. 68, 7-15 (2015).
  16. Zhang, C. Y., et al. The application of the QuEChERS methodology in the determination of antibiotics in food: A review. TrAC-Trends in Analytical Chemistry. 118, 517-537 (2019).
  17. Wiilkowska, A., Biziuk, M. Determination of pesticide residues in food matrices using the QuEChERS methodology. Food Chemistry. 125 (3), 803-812 (2011).
  18. Ishii, Y., et al. HPLC determination of the new insecticide imidacloprid and its behavior in rice and cucumber. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 42 (12), 2917-2921 (1994).
  19. Ko, A. Y., et al. Development of a simple extraction and oxidation procedure for the residue analysis of imidacloprid and its metabolites in lettuce using gas chromatography. Food Chemistry. 148, 402-409 (2014).
  20. Yuan, W. L., et al. Application of imidacloprid controlled-release granules to enhance the utilization rate and control wheat aphid on winter wheat. Journal of Integrative Agriculture. 19 (12), 3045-3053 (2020).
  21. Phugare, S. S., Kalyani, D. C., Gaikwad, Y. B., Jadhav, J. P. Microbial degradation of imidacloprid and toxicological analysis of its biodegradation metabolites in silkworm (Bombyx mori). Chemical Engineering Journal. 230, 27-35 (2013).
  22. Li, Y., et al. Uptake, translocation and accumulation of imidacloprid in six leafy vegetables at three growth stages. Ecotoxicology and Environmental Safety. 164, 690-695 (2018).
  23. Badawy, M. E. I., Ismail, A. M. E., Ibrahim, A. I. H. Quantitative analysis of acetamiprid and imidacloprid residues in tomato fruits under greenhouse conditions. Journal of Environmental Science and Health Part B-Pesticides Food Contaminants and Agricultural Wastes. 54 (11), 898-905 (2019).
  24. Zhai, R. Q., et al. Residue, dissipation pattern, and dietary risk assessment of imidacloprid in Chinese chives. Frontiers in Nutrition. 9, 846333 (2022).
  25. Aria, M. M., et al. Uptake and translocation monitoring of imidacloprid to chili and tomato plants by molecularly imprinting extraction - ion mobility spectrometry. Microchemical Journal. 144, 195-202 (2019).
  26. Chen, Y., et al. Translocation and metabolism of imidacloprid in cabbage: Application of C-14-labelling and LC-QTOF-MS. Chemosphere. 263, 127928 (2021).
  27. Wild, S., Jones, K. Organic chemicals entering agricultural soils in sewage sludges: Screening for their potential to transfer to crop plants and livestock. Science of the Total Environment. 119, 85-119 (1992).
  28. Gong, W. W., et al. Uptake and dissipation of metalaxyl-M, fludioxonil, cyantraniliprole and thiamethoxam in greenhouse chrysanthemum. Environmental Pollution. 257, 113499 (2020).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

194QuEChERSLC MS MS

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены