Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

تقدم هذه المقالة طريقة بسيطة للإنتاج السريع لحويصلات أحادية الصفيحة العملاقة مع البروتينات الهيكلية الخلوية المغلفة. تثبت هذه الطريقة أنها مفيدة لإعادة تشكيل الهياكل الخلوية الهيكلية من أسفل إلى أعلى في الحبس والتفاعلات بين الهيكل الخلوي والغشاء.

Abstract

كثيرا ما تستخدم الحويصلات أحادية الصفيحة العملاقة (GUVs) كنماذج للأغشية البيولوجية ، وبالتالي فهي أداة رائعة لدراسة العمليات الخلوية المتعلقة بالأغشية في المختبر. في السنوات الأخيرة ، أثبت التغليف داخل GUVs أنه نهج مفيد لتجارب إعادة التشكيل في بيولوجيا الخلية والمجالات ذات الصلة. إنه يحاكي بشكل أفضل ظروف الحبس داخل الخلايا الحية ، بدلا من إعادة التكوين الكيميائي الحيوي التقليدي. غالبا ما لا يكون من السهل تنفيذ طرق التغليف داخل GUVs ، ويمكن أن تختلف معدلات النجاح اختلافا كبيرا من مختبر إلى آخر. إحدى التقنيات التي أثبتت نجاحها في تغليف أنظمة البروتين الأكثر تعقيدا تسمى تغليف واجهة القطيرات المستمرة (cDICE). هنا ، يتم تقديم طريقة قائمة على cDICE لتغليف البروتينات الهيكلية الخلوية بسرعة في GUVs مع كفاءة تغليف عالية. في هذه الطريقة ، أولا ، يتم إنشاء قطرات أحادية الطبقة من الدهون عن طريق استحلاب محلول بروتيني ذي أهمية في خليط من الدهون / الزيت. بعد إضافتها إلى غرفة دوارة مطبوعة 3D ، تمر هذه القطرات أحادية الطبقات الدهنية عبر طبقة أحادية دهنية ثانية في واجهة مائية / زيتية داخل الغرفة لتشكيل GUVs التي تحتوي على نظام البروتين. تبسط هذه الطريقة الإجراء العام للتغليف داخل GUVs وتسرع العملية ، وبالتالي تسمح لنا بحصر ومراقبة التطور الديناميكي لتجميع الشبكة داخل الحويصلات ثنائية الطبقة الدهنية. هذه المنصة مفيدة لدراسة ميكانيكا تفاعلات غشاء الهيكل الخلوي في الحبس.

Introduction

تستخدم مقصورات الدهون ثنائية الطبقة كخلايا اصطناعية نموذجية لدراسة التفاعلات العضوية المغلقة والعمليات القائمة على الأغشية أو كوحدات حاملة في تطبيقات توصيل الأدوية 1,2. تتطلب البيولوجيا من أسفل إلى أعلى مع المكونات النقية الحد الأدنى من الأنظمة التجريبية لاستكشاف الخصائص والتفاعلات بين الجزيئات الحيوية ، مثل البروتينات والدهون 3,4. ومع ذلك ، مع تقدم هذا المجال ، هناك حاجة متزايدة لأنظمة تجريبية أكثر تعقيدا تقلد بشكل أفضل الظروف في الخلايا البيولوجية. التغليف في GUVs هو نهج عملي يمكن أن يوفر بعض هذه الخصائص الشبيهة بالخلايا من خلال توفير طبقة ثنائية من

Protocol

1. إعداد خليط الزيت والدهون

ملاحظة: يجب تنفيذ الخطوة في غطاء الدخان باتباع جميع إرشادات السلامة للتعامل مع الكلوروفورم.

  1. خذ 0.5 مل من الكلوروفورم في قارورة زجاجية سعة 15 مل. أضف 88 ميكرولتر من 25 ملغم / مل من ثنائي oleoyl-phosphocholine (DOPC) ، و 9.3 ميكرولتر من 50 ملغ / مل من الكوليسترول ، و 5 ميكرولتر من 1 ملغ / مل من ديولويل - فوسفويثانولامين - ليسامين رودامين B (رودامين PE) (انظر جدول المواد) إلى القارورة الزجاجية سعة 15 مل.
    ملاحظة: أجزاء الخلد النهائية من DOPC والكوليسترول في زيت السيليكون / الزيت المعدني هي 69.9٪ و 30٪ على التوالي. ثبت أن 20-30 مول ٪ من الكوليسترول هو تركيز محسن لسيولة ال

النتائج

لإثبات النجاح في توليد GUVs الهيكلية الخلوية باستخدام البروتوكول الحالي ، أعيد تشكيل هياكل حزم fascin-actin في GUVs. Fascin هو رابط متقاطع قصير من خيوط الأكتين التي تشكل حزم أكتين متوازية صلبة ويتم تنقيتها من E. coli كبروتين اندماج Glutathione-S-Transferase (GST)26. تم إعادة تشكيل 5 ميكرومتر من الأكتين ...

Discussion

تم استكشاف طرق مختلفة لتوليد GUVs لإنشاء خلايا اصطناعية ومع ذلك ، فإن تعقيد الإجراءات ، والوقت الممتد لتحقيق التغليف ، وتقييد أنواع الدهون والتركيب الجزيئي للغلاف ، والحاجة إلى مواد كيميائية غير فسيولوجية لتسهيل التغليف ، وانخفاض إنتاجية GUV ، وعدم الاتساق في كفاءة التغليف لا تزال تشكل تحدي...

Disclosures

ويعلن صاحبا البلاغ عدم وجود تضارب في المصالح.

Acknowledgements

تعترف APL بالدعم المقدم من زمالة Humboldt Research للباحثين ذوي الخبرة ومن المؤسسة الوطنية للعلوم (1939310 و 1817909) والمعاهد الوطنية للصحة (R01 EB030031).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
18:1 Liss Rhod PE lipid in chloroformAvanti Polar Lipids810150C
96 Well Optical Btm Pit PolymerBaseThermoFisher Scientific165305
Actin from rabbit skeletal muscleCytoskeletonAKL99-A
ATTO 488-actin from rabbit skeletal muscleHypermol8153-01
Axygen microtubes (200 µL)Fisher Scientific14-222-262for handling ABPs
Black resinFormlabsRS-F2-GPBK-04
Cholesterol (powder)Avanti Polar Lipids700100P
CholoroformSigma Aldrich67-66-3
Clear resinFormlabsRS-F2-GPCL-04
CSU-X1 Confocal Scanner UnitYOKOGAWACSU-X1
Density gradient medium (Optiprep)Sigma-AldrichD1556
DOPC lipid in chloroformAvanti Polar Lipids850375C
FascinhomemadeN/A
F-bufferhomemadeN/A
Fisherbrand microtubes (1.5 mL)Fisher Scientific05-408-129
FS02 SonicatorFischer ScientificFS20
G-bufferhomemadeN/A
GlucoseSigma-Aldrich158968
iXon X3 cameraAndorDU-897E-CS0
Mineral oilAcros Organics8042-47-5
Olympus IX81 Inverted MicroscopeOlympusIX21
Olympus PlanApo N 60x Oil Microscope ObjectiveOlumpus1-U2B933
Silicone oilSigma-Aldrich317667

References

  1. Groaz, A., et al. Engineering spatiotemporal organization and dynamics in synthetic cells. Wiley Interdisciplinary Reviews: Nanomedicine and Nanobiotechnology. 13 (3), 1685 (2021).
  2. Diltemiz, S. E., et al. Use of artificial cells as drug car

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

177 cDICE GUVs actin fascin

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved