JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Enfeksiyon bölgelerinde aktif endotele nötrofil bağlılık konağın inflamatuvar yanıt ayrılmaz bir bileşenidir. Için izin veren bir nötrofil bağlayıcı bir testtir Bu raporda açıklanan In vitro kantitasyonu.

Özet

Vasküler endotel inflamatuvar yanıt olarak ayrılmaz bir rol oynar. Inflamasyon akut aşamasında, endotel hücreleri (EC) ana bilgisayar arabulucular veya doğrudan korunmuş mikrobiyal bileşenler veya ana-türetilmiş tehlike moleküller tarafından aktive edilir. Aktif EC ifade sitokinler, harekete kemokin ve adezyon molekülleri, enfeksiyon veya yaralanma yerinde lökosit etkinleştirmek ve korumak. Nötrofiller gelmesi ilk lökosit vardır ve her ikisi de hücrelerin yüzeyleri üzerinde mevcut yapışma molekülleri çeşitli yoluyla endotele bağlı. Nötrofil ana fonksiyonları doğrudan, mikrobiyal tehditleri ortadan kaldırmak ek faktörler serbest bırakılması yoluyla diğer lökositlerin teşvik ve yara tamir başlatmak için vardır. Bu nedenle, endotel onların işe alma ve eki inflamatuar yanıtın başlamasında önemli bir adımdır. Bu yazıda kullanarak in vitro nötrofil yapışma deneyi tarifCalcein statik şartlar altında mikrovasküler endotelyal hücre aktivasyonu ölçüde miktarını belirlemek için, birincil insan nötrofil AM-etiketli. Bu yöntem, floresan spektrofotometre ile ölçülmüştür aynı numuneleri, aynı zamanda doğrudan nötrofil bağlanmasının daha niteliksel değerlendirmesi için floresan mikroskobu kullanılarak görüntülendi edilebilir ek bir avantaja sahiptir.

Giriş

Vasküler endotel dolaşan kan ile doğrudan temas halinde olduğu için, bu benzersiz enfeksiyon veya yaralanma sırasında hızlı bir inflamatuvar yanıt başlatmak için yer almaktadır. Endotel hücreleri (EC) korunmuş bakteriyel bileşenleri ve tehlike moleküllerin çeşitli tanımak ifade örüntü tanıma reseptörleri ve bu TNF gibi ev sahibi yangı için reseptörleri. Bu reseptörlerin aktivasyonu EC sitokinler (örn., IL-6, IL-8, CXCL1 ve CCL2) salgılamaya ve hücrenin yüzeyinde 1 yapışma molekülleri (örneğin, E / P-selektin, VCAM-1 ve ICAM-1) upregüle indükler , 2. Bu moleküller tüm bulaşıcı ajanların ev sahibi açık ve doku onarımı 3,4 başlatmak için enfeksiyon ve yaralanma sitelere lökositlerin lokalizasyonu kolaylaştırmak. Enfeksiyona nötrofil yanıtı vasküler endotel ve yanıt arasında iyi koordine etkileşim içerir nötrofil. EM aktivasyonu üzerine, IL-8 salgılanan ve enfeksiyon veya yaralanma 5,6 siteye ev için nötrofil sağlar endotel üzerindeki bir damar içi degrade oluşturur. E / P-selektinler aracılık nötrofil yakalama ve nötrofil hücre yüzeyinde glycomolecules ile nispeten zayıf dernekleri aracılığıyla haddeleme. Bu etkileşimler, bununla aynı soydan gelen reseptörlere IL-8, bağlayıcı ile birlikte, sağlam, integrin-aracılı bağlanma ve endotel hücre yüzeyi 7-10 nötrofil nihai durması kolaylaştırır. Tutuklanmasından sonra, nötrofil doğrudan, patojenlerin ortadan kaldırmak patojenlerin yayılmasını önlemek için nötrofil hücre dışı tuzaklar oluşturmak, yaraların iyileşmesini sağlar ve bu monositler, makrofajlar ve dendritik gibi diğer lökosit işe ek faktörler serbest bırakmak için enfeksiyon belirli sitelere damar dışına geçirebilirsiniz hücreleri 11-17.

Microv için nötrofil bağlılık ölçmek için bir in vitro bir yöntemdir Bu raporda açıklananascular TNF ev sahibi inflamatuar arabulucu tarafından aktif hale ECS. Bu deney, EC aktivasyonu, ve nötrofil değerlendirmek için tasarlanmıştır. Birincil insan nötrofil ilk yoğunluk gradiyenti ayırma kullanılarak izole, ve sonra Calcein asetoksimetil (AM) ile etiketlenir. Canlı hücreler hidrolize Calcein içinde esteraz 492-495 nm ve 513-516 nm 18 emisyon bir uyarma ile yüksek floresan Calcein molekülüne var. Floresan etiketli nötrofil sonra EM mono tabakaları ile inkübe edilir ve yapışkan olmayan nötrofil sonradan kaldırılır. Geriye kalan, bağlı nötrofil floresan sonra bir floresan spektrofotometre kullanılarak ölçülmüştür ve oyuk başına toplam nötrofil floresan girişi bir yüzdesi olarak hesaplanır. Bu yöntem spektrofotometre kullanılan bağlı Calcein-etiketli nötrofil doğrudan AB ac okumak daha nitel vermek için floresan mikroskobu kullanılarak görüntülendi olabilir ek bir avantaja sahiptirtivasyon. Bu testte statik şartlar altında gerçekleştirilir, çünkü nötrofil yapışma kaskad ortaya yalnızca çok ilk olayların değerlendirilecektir. Bu TNF ile tedavi edilen insan akciğer mikrovasküler EC (HMVEC-Akciğer) bu nötrofil bağlılık E-selektin ile etkileşim bozulur zaman mono tabakaları büyük ölçüde azalır göstermek için E-selektin engelleme antikorlar kullanarak bu raporda teyit edilir.

TNF ek olarak, başarıyla Toll-benzeri reseptör 1/2 agonistleri peptidoglikan ile ilişkili lipoprotein (PAL), murein lipoprotein (MLP) ve Pam3Cys ve insan umbilikal ven EC (HUVEC) aktivasyon boyutunu belirlemek için bu testte kullanmış Pam3Cys 19,20 ile HMVEC-Akciğer aktivasyonu. Buna ek olarak, başarılı bir şekilde bu metodoloji bir çeşitliliği ile uyumlu olduğunu düşündürmektedir, kinaz inhibitörleri ile ve HMVEC-Akciğer yüzeyi ve sitoplazmik proteinlerin RNAi aracılı demonte sonra bu testte kullanılabilir ve biyokimyasal screening deneyleri 20. Özetle, bu testte in vitro yangı tarafından EC aktivasyon ölçüde erişmek için, tekrarlanabilir, daha işlevsel şekilde kullanmak için kolay sağlar.

Protokol

1. Kaplama ve Mikrovasküler Endotel Hücreleri Bakımı

  1. Çözülme ve üreticilerine göre mikrovasküler endotel hücreleri büyümek talimatları verilir. Bu protokol, hücreler EGM-2 PD ortamı (Lonza) açığa çıkaran yetiştirildi ve tüm deneyler pasaj sayısı nedeniyle herhangi bir varyasyonu en aza indirmek için çözülme iki hafta içinde yapılması tavsiye edilir. HMVEC-Akciğer ile deneyler 4 ile 9 pasajlar arasında yapılmaktadır.
  2. 1. Gün: hücreleri% 80-90 confluency ulaştığınızda, trypsinize ve ml başına 120.000 hücre tekrar süspansiyon. 48-çukurlu, polistiren doku kültürü plakası (ler) içine Plaka oyuk başına 36,000 hücre (0.3 ml) eklenmiştir. Bir eşiğe okuma elde etmek amacıyla, nötrofiller ile inkübe olmayacak HMVEC kuyu içerir. Özellikle floresan testleri, alternatif satır veya sütun için tasarlanmış 48-iyi plakaları kullanarak sürece komşu kuyulardan herhangi bir ışık kirliliği en aza indirecektir. NOT: Wells poli-LYSI önceden kaplanmış olabilirKD, kolajen ya da fibronektin.
  3. 2. Gün: taze medya ekleyin.
  4. 3. Gün: faz kontrast mikroskobu olarak, hücreler (yani "arnavut" görünüm ve küçük hücre artıkları) sağlıklı onaylayın, ve% 100 konfluent (Şekil 1). Hücrelerin% 100 konfluent değilseniz onlar hazır olana kadar, her gün medya değiştirin.
  5. HMVEC mono tabakaları tedavisi için hazır olduğunda, Hank dengeli tuz solüsyonu (HBSS) ile bir kere hücreleri yıkama ve uygun kuyulara inflamatuar agonist içeren taze bir EGM-2 PD ortam ya da ortamın 0.3 ml ilave edilir. Bu protokolde HMVEC-Akciğer TNFa ile muamele edildi, 3 saat boyunca [100 ng / ml] (Peprotech, New Jersey), bu EC 21 arasında iyi tanımlanmış bir aktivatör olduğu. NOT: Bu aktive HMVEC hücreleri (Adım 4.1) ve Calcein etiketli nötrofil (Adım 3.5) AM böylece zaman denemenizi aynı anda kullanıma hazır önerilir. Bu neutroph izole ve etiketlemek için bize yaklaşık 2.5 saat sürerils.

2. Polymorphprep kullanarak Nötrofil İzolasyon

  1. Daha önce 22 açıklandığı gibi nötrofil izole, ya da tam kandan polimorfonükleer granülositler izole etmek için hazır bir yoğunluk gradiyenti çözüm. Nuzzi ve arkadaşları tarafından protokolü takip Polymorphprep kullanılması. Tüm kan 23 ml'si başına yaklaşık 2-3 x 10 6 nötrofil verimi 2007 sonuçlanır. Not: kırmızı kan hücreleri çıkarmak için aşırı eritrosit lizis, bir dekstran sedimantasyonu önlemek için, yoğunluk gradyanlı santrifüjlemeye 24 önce gerçekleştirilebilir.
  2. Oda sıcaklığına kadar Polymorphprep yoğunluk gradyanı çözüm getirmiştir.
  3. Varlığında sağlıklı gönüllü insan tüm kan 30 ml arasında bir heparin, sitrat veya EDTA gibi anti-koagülan. Kan, 2 saat içinde kullanıldı, ve 18-22 ° C arasında tutulmalıdır
  4. 15 ml konik bir tüp içinde yoğunluk gradyanı çözeltisi (5 ml 'den fazla bir tam kan Katman 5 mi Şekil 2A). Bu sonraki santrifüj koşulları değişebilir olarak kan hacmi ve yoğunluğu degrade çözüm değiştirmekten kaçının.
  5. 18-22, 30 dakika boyunca 450 x g'de santrifüjleyin ° C Yavaş yavaş hızlandırmak ve aşağı santrifüj (yani santrifüj fren kapatın) ve nötrofil aktivasyonu azaltmak ve katmanları karıştırma önlemek için titreşimleri önlemek için de tüpler dengelemek için emin olun. Daha uzun santrifüj kez veya daha fazla santrifüj kuvveti pelet kırmızı kan hücrelerine karşı daha aşağı geçirmek için, nötrofil lökosit içeren alt tabaka ile sonuçlanacaktır.
  6. Nötrofiller (Şekil 2B) içeren katman kirlenmesini önlemek için PBMC içeren plazma ve üst bant lökosit aspire.
  7. Nötrofil içeren alt lökosit katmanı kaldırmak için bir 1-2 ml serolojik pipet kullanın. PBS, 30 ml içine nötrofil tabakalar birleştirildi, 50 ml (Ca kalmadan 2 + ve Mg2 +)konik tüp.
  8. PBS ile 50 ml (Ca 2 olmadan + ve Mg 2 +) 18-22 10 dakika 450 xg ve santrifüj ° C için ses getirmek

Not: Adım 2.9 ve 2.10 isteğe bağlıdır ama tavsiye.

  1. Süpernatant aspire. Kırmızı kan hücreleri lyse 30 saniye boyunca steril su 8 ml nötrofil süspanse edin, hemen 5x 2 ml PBS (Ca 2 olmadan + ve Mg 2 +) ve hafifçe elle karıştırın. Hücreleri inkübe ETMEYİN için hücre süspansiyonu ekleyin daha uzun 30 saniye için su önemli nötrofil ölüm meydana gelebilir çünkü.
  2. 18-22 5 dakika boyunca 250 x g santrifüj ° C
  3. 10 ml PBS (Ca2 + olmadan ve Mg2 +) ve 18-22 az 5 dakika boyunca 250 x g'de tekrar santrifüj ° C ile bir kez yıkama hücreleri
  4. RPMI-1640, 10 ml nötrofil süspanse (fenol kırmızısı olmadan) ve tripan blu kullanılarak canlı hücre sayımıE boyasıyla çıkarma metoduna. Bu da nötrofillerin aktivasyonunun neden olabileceği için, ml başına 5 x 10 6 daha büyük hücre yoğunlukları, uzun süreler kaçının.

3. Calcein AM ile nötrofil Etiketleme

  1. 6 x 10 5 nötrofiller, 48-kuyulu plakanın oyuk başına kullanılır.
  2. Hesapladıktan sonra, 50 ml konik bir tüp süspanse hücreleri aktarmak ve 2-4 fenol kırmızısı içermeyen RPMI-1640 ile, ml başına 6 x 10 hücreler, nötrofiller seyreltin.
  3. Calcein 3 mcM (Calcein AM stok yani 2.98 ul (1 mg / ml) ml başına medya) için stok solüsyonu AM ekleyin ve yavaşça tüp hafifçe vurarak iyice karıştırın. 5'inden fazlasını mcM Calcein nötrofil sızıntı neden olacaktır AM Not:. Olmayan floresan Calcein AM son derece floresan molekül Calcein (yani ölü hücreleri floresan olmaz) üretmek için endojen esterazlarla hücre içinde parçalanır.
  4. Alüminyum folyo ile tüp kapağı ve f inkübeveya 37 ° C'de 30 dakika karanlıkta Not C:. uzun inkübasyon süreleri yapışma deneyi boyunca nötrofillerden serbest bırakılır daha kalsein ile sonuçlanabilir.
  5. 18-22 ° C'de 5 dakika boyunca 450 x g'de santrifüj ve RPMI-1640 içinde 10 ml (fenol kırmızısı olmaksızın, 37 önceden ısıtılmış ° C) 2x nötrofil yıkayın. 40 uM steril filtre 18-22 de kümeleri kaldırmak ve daha sonra 5 dakika boyunca 450 x g'de santrifüj ile bir kez daha da ikinci yıkama için yeniden süspansiyona sonra ilk olarak nötrofiller geçmek ° C
  6. , Ml başına 2 x 10 6 nötrofil de.; (37 ° C'ye kadar önceden ısıtılmış fenol kırmızısı olmadan) RPMI 1640 içerisinde yeniden süspanse nötrofil

4. Nötrofil Bağlama Deneyi

  1. Filtre ile sterilize edilmiş (0.22 um) RPMI 1640 içinde 0.5 ml (fenol kırmızısı olmadan) oyuk başına% 3 BSA içeren 3x HMVEC mono tabakalar yıkayın.
  2. Medya aspire ve 6 x 10 5 Calcein-etiketli nötrofil (hücre suspensio 0.3 ml. 48-kaynak plaka Not uygun kuyulara nötrofil olmaksızın RPMI 1640 K) ya da 0.3 ml (fenol kırmızısı olmadan): Bu cm2 başına 8 x 10 5 nötrofillerin eşdeğerdir.
  3. 37 ° C 20 dakika,% 5 CO 2 inkübatör inkübe edin.
  4. Toplam Nötrofil Floresan (PRE yıkama): 485 nm dalgaboyu ve FLUOstar veya eşdeğer, spektrofotometrede 520 nm (floresein filtre seti) bir emisyon dalga boyu her kuyunun floresan ölçün. . Hemen önce inkübasyon son noktaya Bu adım yapın: Bu protokol, kalsein uyarılma ve yayılan ışık algılama ortaya kuyu üst yapıldı, ancak her ikisi de iki kuyu altından gerçekleştirilebilir.
  5. PBS içinde çukur başına 0.5 ml 'si ile 5x HMVEC mono tabakaları ve nötrofiller içeren kuyu yıkayın (w / Ca2 + ve Mg2 +). Medya ve yıkar çıkarınters plaka ile ve kağıt havlu üzerine hafifçe okşamaya kalan sıvı kaldırmak için.
  6. Geri de başına RPMI 1640 0.3 ml (fenol kırmızısı olmadan) ekleyin.
  7. Yapışık Nötrofil Floresans (POST yıkama): Aşama 4.4 'de hem de her bir floresan yoğunluğu ölçün.
  8. Yüzde bağlılık ve iyi başına göreceli bağlılık belirleyin:

Not: Bu aşamada, kalsein etiketli nötrofil görüntüler standart fluorescein filtre ile donatılmış bir floresan sahip mikroskobu kullanılarak elde edilebilir. Şekil 4'teki görüntü Pro7 yazılımı (Imaging S) Q-Yakalama kullanarak Retiga 2000R kamera (S Görüntüleme) ile donatılmış bir Olympus IX51 ters mikroskop ile elde edildi.

Sonuçlar

, Nötrofil bağlanma tahlili kullanılarak güvenilir, tekrar üretilebilir sonuçlar elde etmek amacıyla, Şekil 1 'de HMVEC-Akciğer ile gösterildiği gibi sağlık ve mikrovasküler endotel hücreleri konfluent, deney gününde uygun olması esastır. Buna ek olarak, düşük geçit sayısı mikrovasküler EC (az 9 geçitler gibi) kullanılmaktadır zorunludur, ve buna göre, biz çözülme iki hafta içinde tüm deneyler tavsiye ederiz. Nötrofil sağlık hücreleri bir biçimde olu?...

Tartışmalar

Başarılı bir nötrofil / mikrovasküler endotelyal hücre yapışma deneyi için en kritik adımlar şunlardır: 1) düşük geçiş sayısı (<9), sağlıklı endotel hücreleri kullanarak, bir düşük yoğunluklu (yani <5 x 10 6 hücre izole edilmiş nötrofiller bakımı 2) / ml) ve izolasyon iki saat içinde bunları kullanarak, sırasıyla, ve 3) titiz Kalsein-etiketli nötrofillerin yıkama ve nötrofillerden kalsein EC kirlenme ve kaybını en aza indirmek için bir zamanında Kalsei...

Açıklamalar

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Teşekkürler

Bu çalışma Anestezi ve Perioperatif Bakım ucsf Bakanlığı tarafından desteklenmiştir.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
HMVEC-LungLonzaCC-2527
EGM-2 MVLonzaCC-3202
HBSSLife Technologies14175-095Can be substituted with any vendor
48-well Tissue Culture PlatesBD Falcon353078
PBS (without phenol red)UCSF Cell Culture FacilityCCFAL001Can be substituted with any vendor
D-PBS (without Ca2+ and Mg2+ and phenol red)UCSF Cell Culture FacilityCCFAL003Can be substituted with any vendor
RPMI-1640 (without phenol red)Life Technologies11835-030
PolymorphprepAxis-Shield1114683
calcein AMLife TechnologiesC3099(0.995 mM) stock soln
Trypan Blue SolutionSigma-AldrichT8154
40 μM filtersVWR21008-949Can be substituted with any vendor
FLUOstar OPTIMA SpectrophotometerBMG LABTECH-

Referanslar

  1. Ley, K., Laudanna, C., Cybulsky, M. I., Nourshargh, S. Getting to the site of inflammation: the leukocyte adhesion cascade updated. Nat. Rev. Immunol. 7, 678-689 (2007).
  2. Collins, T., et al. Transcriptional regulation of endothelial cell adhesion molecules: NF-kappa B and cytokine-inducible enhancers. FASEB Journal : Official Publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. 9, 899-909 (1995).
  3. Medzhitov, R. Origin and physiological roles of inflammation. Nature. 454, 428-435 (2008).
  4. Chen, G. Y., Nunez, G. Sterile inflammation: sensing and reacting to damage. Nat. Rev. Immunol. 10, 826-837 (2010).
  5. Middleton, J., et al. Transcytosis and surface presentation of IL-8 by venular endothelial cells. Cell. 91, 385-395 (1997).
  6. Rot, A. Endothelial cell binding of NAP-1/IL-8: role in neutrophil emigration. Immunol. Today. 13, 291-294 (1992).
  7. Detmers, P. A., et al. Neutrophil-activating protein 1/interleukin 8 stimulates the binding activity of the leukocyte adhesion receptor CD11b/CD18 on human neutrophils. J. Exp. Med. 171, 1155-1162 (1990).
  8. Laudanna, C., Kim, J. Y., Constantin, G., Butcher, E. Rapid leukocyte integrin activation by chemokines. Immunol. Rev. 186, 37-46 (2002).
  9. Simon, S. I., Hu, Y., Vestweber, D., Smith, C. W. Neutrophil tethering on E-selectin activates beta 2 integrin binding to ICAM-1 through a mitogen-activated protein kinase signal transduction pathway. J. Immunol. 164, 4348-4358 (2000).
  10. Zarbock, A., Ley, K. Mechanisms and consequences of neutrophil interaction with the endothelium. The American Journal of Pathology. 172, 1-7 (2008).
  11. Muller, W. A. Mechanisms of leukocyte transendothelial migration. Annu. Rev. Pathol. 6, 323-344 (2011).
  12. Brinkmann, V., et al. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science. 303, 1532-1535 (2004).
  13. Kumar, V., Sharma, A. Neutrophils: Cinderella of innate immune system. International Immunopharmacology. 10, 1325-1334 (2010).
  14. McDonald, B., et al. Intravascular danger signals guide neutrophils to sites of sterile inflammation. Science. 330, 362-366 (2010).
  15. Nathan, C. Neutrophils and immunity: challenges and opportunities. Nat. Rev. Immunol. 6, 173-182 (2006).
  16. Soehnlein, O., Lindbom, L., Weber, C. Mechanisms underlying neutrophil-mediated monocyte recruitment. Blood. 114, 4613-4623 (2009).
  17. Wilhelmsen, K., Mesa, K. R., Prakash, A., Xu, F., Hellman, J. Activation of endothelial TLR2 by bacterial lipoprotein upregulates proteins specific for the neutrophil response. Innate Immun. 18, 602-616 (2012).
  18. Haugland, R. P., Johnson, I. D., Basey, A. . The Handbook: A Guide to Fluorescent Probes and Labelling Technologies. , (2005).
  19. Shin, H. S., et al. Bacterial lipoprotein TLR2 agonists broadly modulate endothelial function and coagulation pathways in vitro and in vivo. J. Immunol. 186, 1119-1130 (2011).
  20. Wilhelmsen, K., Mesa, K. R., Lucero, J., Xu, F., Hellman, J. ERK5 protein promotes, whereas MEK1 protein differentially regulates, the Toll-like receptor 2 protein-dependent activation of human endothelial cells and monocytes. J. Biol. Chem. 287, 26478-26494 (2012).
  21. Pober, J. S., Sessa, W. C. Evolving functions of endothelial cells in inflammation. Nat. Rev. Immunol. 7, 803-815 (2007).
  22. Oh, H., Siano, B., Diamond, S. Neutrophil isolation protocol. J. Vis. Exp. (17), e745 (2008).
  23. Nuzzi, P. A., Lokuta, M. A., Huttenlocher, A. Analysis of neutrophil chemotaxis. Methods Mol. Biol. 370, 23-36 (2007).
  24. Garcia-Garcia, E., Uribe-Querol, E., Rosales, C. A simple and efficient method to detect nuclear factor activation in human neutrophils by flow cytometry. J. Vis. Exp. (74), e50410 (2013).
  25. Kuma, Y., et al. BIRB796 inhibits all p38 MAPK isoforms in vitro and in vivo. J. Biol. Chem. 280, 19472-19479 (2005).
  26. Westra, J., Kuldo, J. M., van Rijswijk, M. H., Molema, G., Limburg, P. C. Chemokine production and E-selectin expression in activated endothelial cells are inhibited by p38 MAPK (mitogen activated protein kinase) inhibitor RWJ 67657. International Immunopharmacology. 5, 1259-1269 (2005).
  27. Leeuwenberg, J. F., Jeunhomme, G. M., Buurman, W. A. Adhesion of polymorphonuclear cells to human endothelial cells. Adhesion-molecule-dependent, and Fc receptor-mediated adhesion-molecule-independent mechanisms. Clinical and Experimental Immunology. 81, 496-500 (1990).
  28. Akeson, A. L., Woods, C. W. A fluorometric assay for the quantitation of cell adherence to endothelial cells. Journal of Immunological Methods. 163, 181-185 (1993).
  29. Vaporciyan, A. A., Jones, M. L., Ward, P. A. Rapid analysis of leukocyte-endothelial adhesion. Journal of Immunological Methods. 159, 93-100 (1993).
  30. De Clerck, L. S., Bridts, C. H., Mertens, A. M., Moens, M. M., Stevens, W. J. Use of fluorescent dyes in the determination of adherence of human leucocytes to endothelial cells and the effect of fluorochromes on cellular function. Journal of Immunological Methods. 172, 115-124 (1994).
  31. Bevilacqua, M. P., Pober, J. S., Wheeler, M. E., Cotran, R. S., Gimbrone, M. A. Interleukin 1 acts on cultured human vascular endothelium to increase the adhesion of polymorphonuclear leukocytes, monocytes, and related leukocyte cell lines. The Journal of Clinical Investigation. 76, (1985).
  32. Schleimer, R. P., Rutledge, B. K. Cultured human vascular endothelial cells acquire adhesiveness for neutrophils after stimulation with interleukin 1, endotoxin, and tumor-promoting phorbol diesters. J. Immunol. 136, 649-654 (1986).
  33. Gamble, J. R., Harlan, J. M., Klebanoff, S. J., Vadas, M. A. Stimulation of the adherence of neutrophils to umbilical vein endothelium by human recombinant tumor necrosis factor. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82, 8667-8671 (1985).
  34. Braut-Boucher, F., et al. A non-isotopic, highly sensitive, fluorimetric, cell-cell adhesion microplate assay using calcein AM-labeled lymphocytes. Journal of Immunological Methods. 178, 41-51 (1995).
  35. Ait-Oufella, H., Maury, E., Lehoux, S., Guidet, B., Offenstadt, G. The endothelium: physiological functions and role in microcirculatory failure during severe sepsis. Intensive Care Medicine. 36, 1286-1298 (2010).
  36. Andonegui, G., et al. Endothelium-derived Toll-like receptor-4 is the key molecule in LPS-induced neutrophil sequestration into lungs. The Journal of Clinical Investigation. 111, 1011-1020 (2003).
  37. Sharma, J., et al. Lung endothelial cell platelet-activating factor production and inflammatory cell adherence are increased in response to cigarette smoke component exposure. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 302, L47-L55 (2012).
  38. Deban, L., Correale, C., Vetrano, S., Malesci, A., Danese, S. Multiple pathogenic roles of microvasculature in inflammatory bowel disease: a Jack of all trades. The American Journal of Pathology. 172, 1457-1466 (2008).
  39. Gross, W. L., Trabandt, A., Csernok, E. Pathogenesis of Wegener's granulomatosis. Annales de Medecine Interne. 149, 280-286 (1998).
  40. Chen, Y., et al. Evidence of inflammatory cell involvement in brain arteriovenous malformations. Neurosurgery. 62, 1340-1349 (2008).
  41. Martens, C. L., et al. Peptides which bind to E-selectin and block neutrophil adhesion. J. Biol. Chem. 270, 21129-21136 (1995).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

mm nolojiSay 78H cresel BiyolojiEnfeksiyonMolek ler BiyolojiT pBiyomedikal M hendisli iBiyofizikEndotelVask lerN trofillerEnflamasyonnflamasyon Arac larN trofilL kosit Adezyonendotel h creleritahlil

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır