Method Article
Örneğin çinko parmak nükleazlara (ZFNs) ve transkripsiyon aktivatörü gibi efektör nükleazlara (TALENS) olarak tasarımcı nükleazlar homolog olmayan uç birleştirme (NHEJ) ile homolog yeniden birleştirmeye (HR) yolaklar tetikleyerek fare preimplantasyon embriyoların genomunu değiştirmek için kullanılabilir. Bu gelişmeler kesin genetik değişiklikler farelerde hızlı üretimini sağlar.
Site özel genom değişiklikler (nakavt, knock-in) taşıyan transgenik fareler karmaşık biyolojik sistemleri diseksiyon yanı sıra insan hastalıklarının modelleme ve tedavi stratejileri test etmek için hayati önem taşımaktadır. Böyle çinko parmak nükleazlardır (ZFNs), transkripsiyon aktivatörü gibi efektör nükleazlardır (Talens) ve kümelenmiş düzenli interspaced kısa yineleyen tekrarlar (CRISPR) / için CRISPR-ilişkili (Cas) 9 sistemi yerinde gibi tasarımcı nükleazların kullanımı son gelişmeler Belirli bir genom mühendislik embriyonik kök (ES) hücre teknolojisi güvenmek gerek kalmadan hemen hemen herhangi bir laboratuvar türlerde hızlı hedef genom modifikasyonu gerçekleştirmek için olasılığını açığa çıkarır. Bir genom düzenleme deney tipik olarak tanımlı bir araştırmacı genomik nükleaz aktivitesi yönlendirmek için özel DNA bağlayıcı etki yapımında ardından ilgi konusu bir gen içinde bir tasarımcı nükleaz hedef siteye belirlenmesi ile başlar. Tasarımcı nükleaz plazmidler in vitro olarak '/ Em> döllenmiş fare oosit mikroenjeksiyon için mRNA oluşturmak için transkripsiyonu. Burada, döllenmiş fare oositlerine TALEN mRNA'nın direkt enjeksiyonu ile hedef genom modifikasyonu elde edilmesi için bir protokol sağlar.
Fareler transgenik hayvan modelleri oluşturmak için ana kadar en popüler platform tarafından bulunmaktadır. Fare embriyo 1-3 genetik mühendisliği için çok yönlü bir araç son zamanlarda, örneğin çinko parmak nükleazlara (ZFN) gibi tasarımcı nükleazlara göre genom düzenleme yaklaşımlarla 4-6, transkripsiyon aktivatör gibi efektör nükleazlar (TALEN) 7,8 uzatıldı ve kümelenmiş düzenli interspaced kısa palindromık tekrarlar (CRISPR) / CRISPR-ilişkili (Cas) 9 9. ZFN ve her Fokl endonükleaz 10-12 birleştirilir (sırasıyla çinko parmak proteinlerin dizileri ve tekrar-değişken di-tortuları (RVDs),), iki özel olarak tasarlanmış protein bazlı DNA-bağlayıcı etki çiftleri olarak işlev TALEN. Tersine, Cas9-aracılı DNA parçalanmasının özgüllüğü (aynı zamanda, tek bir kimerik RNA molekülü olarak geçecek kılavuz RNA birleştirilebilir crRNA ve tracrRNA) CRISPR RNA transaktive tarafından sağlanan ile bir kompleks içinde hareket 11CRISPR proteini.
RVDs tanımlanmış bir dizi ile Talens hızla 13-17 seçmek için montaj stratejileri çok sayıda bireysel deneyciler tarafından inşa edilebilir. CRISPR/Cas9 ancak kılavuz RNA-DNA özgünlüğü hala tam 18,19 çözülmüş değil bağlama, tasarımcı nükleazların daha az emek-yoğun nesil vaat ediyor. Özel ZFNs nesil şimdiye kadar uzman akademik laboratuarları ve bu Sangamo Biyobilimlerdeki ve Sigma CompoZr hizmet olarak ticari tedarikçiler ile sınırlı olmuştur.
Genel olarak, tasarımcı nükleazlara ile düzenleme genom sonradan katılan homolog olmayan uç (NHEJ) veya homolog rekombinasyon (HR) DNA onarım makine 10,12 çekmek tanımlanan genomik loci, at çift iplikli sonları (DSB) tanıtmayı amaçlamaktadır. Bir DSB aracılı NHEJ onarım genellikle tamir yerinde yakın eklemeler ve silmeler getirilmesi ile sonuçlanır. Böylece NHEJ onarım cBir genlerin protein kodlama sekansı 4,7,9 içinde bir çerçeve kayma mutasyonu getirerek, bir hedef genin işlevi nakavt için yararlanılabilir. Alternatif olarak, ek veya tanımlanmış genetik bilginin değiştirilmesi tasarımcı nükleazlar ile birlikte bir DNA donör temin edilmesiyle elde edilebilir. Bir DNA donör Böylece HR ile DSB onarım için bir şablon olarak hizmet veren hedef alan ile homoloji bölgeleri ile çevrili araştırmacı tasarlanmış DNA dizileri içerir. Plazmidler 5,6,20 ve tek sarmallı oligonükleotid 8,9,21 Hem verici olarak başarılı bir şekilde kullanılmıştır. NHEJ-nor HR-aracılı genom düzenleme ne genel genetik mimari bozmadan nükleotid sekansında küçük değişikliklere oluşturmak için bu stratejiler özellikle uygun hale getirir, fare embriyo, genomuna bir seçilebilir markerin giriş gerektirir.
Bu protokolde genom düzenleme için gerekli tüm prosedürler açıklanmaktadırTalens kullanılarak fare embriyosu. Bunlar TALEN hedef site 22 1) tanımlanmasını içerir, golden gate klonlama 13 tarafından Talens 2) yapım, TALEN mRNA, döllenmiş fare oosit, embriyo transferi için 5) cerrahi girişimler içine TALEN mRNA 4) mikroenjeksiyon 3) in vitro sentez ve 6) kurucusu hayvanlarda TALEN kaynaklı mutagenez analizi. Biz TALEN mRNA mikroenjeksiyon ve NHEJ kaynaklı eklemeler / silmeler için kurucularından tarama odaklanmak. Bu amaçla plazmid olarak ve fare embriyoları mikro enjeksiyon için TALEN mRNA in vitro sentezi transfekte zaman memeli hücrelerinde hem de ifade edilmesine olanak iki fonksiyonlu TALEN yapıları yarattı. Bu yapılar, heterodimerik Foki kaynaşmış bir kesik TALE omurga 23 Memeli hücrelerinde optimum genom düzenleme için 24,25 etki içermektedir. Bu protokol, aynı zamanda, diğer tasarım nükleazlara mikroenjeksiyonu için veya tasarımcı nükleazlara birleşik enjeksiyon için kabul edilebilirve verici yapıları (DNA donör tasarım Wefers et al. 26,27 ile mükemmel bir teknik yayınlarda tarif edilmiştir).
Etik Bildirimi
Tüm hayvan deneyleri Kanton Zürih Kanton Veteriner Ofisi kurallara ve yönetmeliklere uygun olarak yapıldı.
1.. TALEN Hedef Siteleri Tanıtımı
2 "jove_title". Golden Gate TALEN Meclisi
Bu bölüm, Cermak et al. 13 tam uzunlukta TALENS birbirini takip eden iki Golden Gate klonlama adımları (Şekil 1) kullanılarak inşa edilmektedir tarafından yayınlanan bir protokol kullanılarak TALENS montajını tarif eder. Bu yaklaşım nihai ekspresyon yapılarına 12 ve 31 arasında herhangi bir sayıda RVDs dahil edilmesini sağlar. Montaj protokol oosit mikroenjeksiyon aşağıdaki derece aktif Talens ifade üreten mRNA'lardan (Şekil 1C) için tasarlanmış hedef vektörlere adapte edilmiştir. Ayrıca (kuran ve plazmid kütüphane korumak için Golden Gate TALEN kitinin çevrimiçi protokolüne bakınız http://www.addgene.org/TALeffector/goldengateV2/ ).
3. Nükleaz mRNA sentezi
4. Embriyo İzolasyon ve Mikroenjeksiyon
5. Cerrahi Embriyo Transferi
6. PCR ve T7 endonükleaz ya da restriksiyon enzim sindirimi ile analiz Kurucular
Bu memeli hücrelerinde TALENS sentezlenmesini hem de T7 faj promoteri (Şekil 1C) için in vitro mRNA sentezine izin vermek Cermak'ın et al. 13 tarafından yayınlanan Altın GateTALEN düzeneği ile uygun hedef plazmidleri yapılmıştır. Bu plazmidler Fokl homodimerler göre hedef dışı etkileri azaltmak ve Fokl 25,29 heterodimerler ilk nesil ile karşılaştırıldığında bölünme etkinliğini arttırmak için gösterilmiştir heterodimerik Fokl etki (ELD veya KKR mutasyonlar) taşır. Altın kapı montaj reaksiyonlar # 1 ve # 2 genellikle çok verimli ve her beyaz koloni, koloni PCR ile analiz edildiğinde, klonlanmış RVDs (Şekil 1B ve 1D) belirli sayıda için beklenen modelini gösterir.
In vitro sentezlenen mRNA Jel analizi (Şekil 2) ile analiz edilir, her bir numune için çok az veya hiç smear ile tek bir bant açığa ayırt edilmelidir. Başarılı poliadenilasyona gösterir örnekleri L1/R1 ve L2/R2, L3/R3 arasında net bir boyut değişim var olmalıdır.
Kurucu hayvanların bir enzim kullanılarak, ya T7 endonükleaz sindirimi ve ardından genotipleme PCR (Şekil 3) ya da bir sınırlandırma sindirimi kullanan NHEJ indüklenen mutasyona uğramış aleller için taranabilir nükleaz çiftinin boşluk bölgesi içinde yaran vahşi tip sekans (Şekil 4),. T7 endonükleaz deney bağımsız enjekte nükleaz çiftinin boşluk bölgesi içinde belirli bir genomik sekansın mutasyonu herhangi bir uygulanabilir; Bununla birlikte, bu heterodupleks PCR ürünleri DNA elyaf arasında sadece uyumsuzluklarını bulgulamaktadır. Böylece, kurucu iki aynı mutasyona uğramış allel taşıyan nadir durumlarda, PCR ürünleri herhangi T7 sindirim desen göstermek olmaz. Belirli bir kısıtlama alanı NHEJ tarafından yok edilecek nükleaz boşluk bölgesi içinde yer almaktadır Bu tür bir ayrım her zaman, ancak, mümkünEklemeler / silmeler (Şekil 5) ile indüklenen. Burada, sindirilmemiş bantları mutasyonların varlığını gösterir ve her sindirilmiş ürünlerin yokluğu güçlü (Şekil 4b'de yıldız ile işaretlenmiştir) hedeflenen genin her iki allel içinde mutasyonlar taşıyan bir kurucu göstermektedir.
Şekil 1. Pfus vektörlere RVD diziler Heterodimerik pCAG-T7-Hedef vektörlere TALEN RVDs Golden Gate klonlama. A) Meclis. İşte bir örnek birey MASALI diziler, sırasıyla, 15 ve 17 RVDs RVDs oluşan bir TALEN çifti için gösterilmiştir (uzun 21 RVDs daha MASALI diziler için, üç pfus-RVDs meclisleri gösterilmez, gerekli). Oklar pfus spesifik koloni PCR reaksiyonları. B) PCR ürünleri belirtmek için primerlerDoğru pfus meclisleri büyütüldü tipik) bir grup klonlanmış tüm RVDs (10 RVDs örneğin yaklaşık 1.1 kb) ve bir bitiş RVD dizilerin tekrarlayan doğa için daha küçük daha az önemli gruplarından "merdiven". C'nin kombine uzunluğuna tekabül göstermek son montaj pfus-RVD dizileri sırasıyla FokIELD ve FokIKKR varyantları ile heterodimerik TALEN ekspresyon vektörleri içine, son tekrar (plr) ihtiva eden bir plazmid. (N-ve C açıklamalı) TALEN omurga T7 faj promoteri de sağlar iken CAG (CMV erken güçlendirici element / tavuk beta-aktin) promoteri, transfekte memeli hücrelerinde yüksek düzeyde ekspresyon sağlayan Miller et al. 23 tarafından yayınlanan benzer bir mimari nitro mRNA sentezi (nükleaz STOP kodonu alt vektörün doğrusallaştırılması için SacI kullanım). D) C oklarla gösterilen primerler kullanılarak koloni PCR) doğru monte TALENS tanımlanmasını sağlar. Tam lengt"merdiven etkisi" başarılı montaj sağlam bir göstergesini temsil ederken h PCR ürünleri genellikle daha az belirgindir. resmi büyütmek için buraya tıklayın .
Şekil 2. . Agaroz jel elektroforezi kullanılarak in vitro sentezi nukleaz mRNA kalite kontrol ZFN mRNAlarının bir örnek olarak gösterilmiştir (L, ZFN sol, R, sağ ZFN). Numuneler önce poliadenilasyonunun mRNA göstermek L1/R1, mRNA ve L3/R3 poliadenillenmiş örnekleri L2/R2 gösteri saflaştırılmış poliadenile mRNA göstermektedir. resmi büyütmek için buraya tıklayın .
içerik-genişliği fo = "6in": src = "/ files/ftp_upload/50930/50930fig3highres.jpg" src = "/ files/ftp_upload/50930/50930fig3.jpg" width = "600" fo alt = "Şekil 3" />
Şekil 3,. Hedef lokusunun nükleaz ile indüklenen mutasyon taşıyan Kurucu hayvanların tanımlanması için kullanılan bir T7 endonükleaz tahlilin örneği. A) TALEN çift fare prion proteini geni (PRNP kodlayıcı bölge içinde bölmek için tasarlanmıştır, TALEN hedef sekansı), istek üzerine temin edilebilir. Bir PCR ürünü, PCR ürünü daha sonra oluşum ve T7 endonükleaz sindirim hetero tabi tutulur, 110 bp yukarı yer alan bir ileri primer (F) ve ters primer (R) TALEN bölünme sitesinin. B alt 250 bp) kullanılarak oluşturulur. ° C) tek kurucu hedeflenen genomik bölge içinde TALEN kaynaklı mutagenez sindirim 250 ürün ve 110 baz ile tam uzunlukta PCR ürününün varlığı ile ortaya çıkar.50930/50930fig3highres.jpg "target =" _blank "> büyük resmi görebilmek için buraya tıklayın.
Şekil 4. Hedef lokusunun nükleaz ile indüklenen mutasyon fare Rosa26 lokusu 29 hedef intron 1 içinde bir Xbal kısıtlama alanı için. ZFN özgü taşıma Kurucu hayvanların belirlenmesi için kullanılan PCR ürünleri restriksiyon dijest örneği. A) Kurucular kullanılarak PCR ile taranmıştır genotiplenmesi ileri primer (F) 500 bp üst baş ve ters primer (R) yarılma sitesi. B alt 250 bp) Xbal ile PCR ürünleri sindirim yıldız işareti ile işaretlenmiştir iki alelik mutasyonlarla fareleri () gösteren sindirim desenler ortaya, mono bulunduğu -alelik mutasyon (sindirilmiş ve sindirilmemiş grupları, örneğin, hayvan 2)potansiyel bi-alel değişiklikler ile farelerin ve wt fareler (tam sindirim, örneğin, hayvan 21). C) Dizi 3 (hayvan 24) farklı eklemeler / silmeler kadar gösterir. resmi büyütmek için buraya tıklayın .
Primer Adı | 'Ila 3' sekans 5 |
pCR8_F1 | ttgatgcctggcagttccct |
pCR8_R1 | cgaaccgaacaggcttatgt |
TAL_F1 | ttggcgtcggcaaacagtgg |
TAL_R2 | ggcgacgaggtggtcgttgg |
TAL_Seq_5-1 | catcgcgcaatgcactgac |
Tablo 1. Golden Gate TALEN takımı içinde koloni PCR analizleri ve sekanslama için kullanılan primerlerin dizileriprotokolü.
Plazmid / Koleksiyon | Iştirakçi | Addgene Kimliği | Yorumlar |
Golden Gate TALEN ve TAL Efektör Kit 2.0 | Voytas laboratuvar | 1000000024 | Golden Gate TALEN montaj için gerekli tüm plazmidler İçeriyor |
pCAG-T7-TALEN -KKR/ELD hedef vektörleri | Pelczar laboratuvar | 40131, 40132 | Eklenti, memeli hücreleri ve in vitro mRNA sentezindeki TALEN ifadesi için plazmidler |
Tablo 2. Golden Gate TALEN montaj için gerekli olan plasmidler ve plasmid koleksiyon Addgene (elde edilebilir www.addgene.org ).
ÇevrimiçiKaynak | Yorumlar |
http://tale-nt.cac.cornell.edu | Yeten Tasarımı; TALEN hedef dışı tahmini |
http://zifit.partners.org/ZiFiT/ | Yeten, AÇIK ZFN, CoDA ZFN, CRISPR/Cas9 Tasarımı |
http://www.genome-engineering.org | Yeten, CRISPR/Cas9 Tasarımı; CRISPR/Cas9 hedef dışı tahmini |
http://baolab.bme.gatech.edu/Research/BioinformaticTools/assembleTALSequences.html | Yeten Meclisi sıralama sonuçlarının doğrulanması için dizileri |
http://pgfe.umassmed.edu/ZFPmo dularsearchV2.html | Modüler montaj ZFN tasarımı |
www.genomecenter.ucdavis.edu/s egallab / segallabsoftware | Modüler montaj ZFN tasarımı |
Tablo 3. ZFN, Yeten, ve CRISPR/Cas9 tasarımı için online kaynaklar.
Tasarımcı Nükleaza odaklı genom düzenleme yaklaşımları önemli ölçüde kendi genomları 10,12 hedeflenen değişiklikler için uygun türlerin yelpazesini genişletmiştir. Farelerde, gen hedefleme ES hücrelerinin iki yıldır standart bir teknik olmuştur; fare ES hücreleri, bazı son başarılı olmuştur, ancak bununla birlikte, bu, fare dışındaki türlerden ES hücrelerine adapte zor olduğu kanıtlanmıştır. Hatta böyle EUCOMM, KOMP veya ZFN ve TALEN yüksek hassasiyet olabilir ve değişiklikler yelpazenin ilgili esneklik sağlar tarafından NorCOMM 3 genom düzenleme gibi konsorsiyumlar tarafından sunulan "off-the-raf" gen-hedefli fare ES hücre klonlarının durumu ile fare genomuna sokulur. Nükleaz aracılı mutasyonlar taşıyan Kurucu hayvanların her zaman ES hücrelerinin enjeksiyonu blastosist kaynaklanan kimera için durum böyle değildir yüksek germ-hattı yetkili 4-6,20,21, görünmektedir. Bu nedenle, bazı durumlarda des mikroenjeksiyon inigner nükleazlar hedef genom modifikasyonlarla yeni fare hatları önemli ölçüde daha hızlı üretimi ile sonuçlanabilir.
ZFN ve yetenekleri yeri püskürtülmesiyle knockout farelerde başarılı bir şekilde üretimi enjekte nükleaz çiftinin aktivitesi üzerinde büyük ölçüde bağlıdır. TALENS organizma bir dizi gen geniş bir hedef yüksek başarı oranına sahip olduğu gösterilmiştir; Bununla birlikte, son çalışmalar TALEN bağlayıcı sitozin metilasyon 30,31 duyarlı olduğunu göstermektedir. Böylece, yeni üretilen nükleaz çiftleri, örneğin TALENS pCAG-T7 vektörlerine klonlanır, örneğin NIH-3T3 veya Nöro gibi bir fare hücre hattı içine geçici olarak transfekte edilebilir bir ölçüde fare embriyo kromatin durumunu taklit-2a. Burada, nükleaz aktivitesi önceden mRNA sentezi ve mikroenjeksiyon bölüm 5'de tarif edildiği gibi T7 endonükleaz analizi ya da PCR ürünü bir sınırlama sindirimi kullanan tahmin edilebilir. Bu bağlamda ilgili genomik bölgenin sıralama tavsiyehücre çizgisi ve mikro-enjeksiyon deneyleri için kullanılan fare suşu ive.
Fare zigot, farklı TALEN veya ZFN çiftleri farklı mRNA konsantrasyonlarda en iyi şekilde çalışır ve bu nedenle mikro-enjekte nükleaz mRNA'nın en uygun çalışma konsantrasyonu deneysel olarak tespit edilmesi gerekebilir. Çok yüksek embriyo ölümcül neden olabilir, oysa nükleaz çift bağlı olarak, çok düşük bir konsantrasyonunun bir yarılmaya neden olur. Nukleaz çifti bağlı olarak, 2 ng / ul ve 200 mikrogram / ul gibi yüksek kadar düşük toplam mRNA konsantrasyonları kullanarak başarı oldu. Bu etkiler, hücre kültürü ve embriyo hayatta kalma ve hedef lokusunun modifikasyonu oranı her iki deneysel olarak tespit edilmesi gerekmektedir için optimum konsantrasyon nükleaz deney tahmin etmek güçtür.
Yüksek aktif ZFN veya TALEN mikroenjeksiyon embriyo tek hücreli aşamada ötesinde hedef sekansı ayrılması ve bu nedenle mutagenez An karmaşık kalıpları neden olabilirkurucuları d mozaisizm. Biz ve diğerleri 4, tek bir kurucu (Şekil 5C) üç veya daha fazla farklı mutasyona uğramış allelleri gözlemledik. Bu kurucuları yeni bir fare hattı kurulması Böylece, yavrular dikkatle sindirim deneyler, tanımlanmamış bir mutasyon mevcut tek olduğunu kanıtlar sağlarlar uygun mutasyonun varlığı için sıralanmasıyla taranmalıdır.
Eleştirilerden biri sık sık ZFN ve TALEN sistemlerine karşı dile getirdiği bu nükleazlar da hedef sitelere benzer genomunda başka bir yerde mevcut dizilerini klivajlayabilen olasılığıdır. Bu gibi hedef dışı etkiler homodimerik Fokl alanı kullanarak erken üretimi reaktifleri ile gözlenmiştir ve heterodimer konstruktları hedef dışı etkiler 25 hafifletmek için dizayn edilmiştir. Olası hedef dışı siteleri silico 32,33 bir dereceye kadar öngörülen ve PCR ve dizileme ile taranabilir. Bariz bir avantaj of yerine hücre çizgileri daha farelerin üretilmesi için ZFNs ve TALENS kullanan tercih edilen bir vahşi tip suşu için çeşitli çaprazlamaların gerçekleştirerek arzu edilen genom modifikasyona bağlanmamış hedef mutasyonları kapalı kaldırma olasılığıdır. Kurucu farelerin çok sayıda, nükleaz hedefli lokusundan üretilir ve siliko hedef dışı tahmin edilen PCR ürünlerinin nesil derin sekanslama analizi için noktalar, PCR ürünlerinin sindirim deneyleri için alternatif bir nicel ve nitel okuma sunabilir.
Bu protokol açıklanan yardımla üreme teknikleri gibi C57Bl/6J veya B6D2F1 gibi mikroenjeksiyon deneyleri için kullanılan standart fare suşları için optimize edilmiştir. Bu tür suşlar outbred gibi farklı orijinlerden Fareler, prensip olarak genom düzenleme yaklaşımlar için kullanılabilir ve özel araştırma soru için daha uygun bir genetik arka planı sağlayabilir. Böyle süperovülasyon gibi yardımla üreme tekniklerinin performansı predi olabilirsuşları 34-36 bir dizi cted ama nükleaz mikroenjeksiyon için embriyo yeterli sayıda elde etmek için standart olmayan suşlar için daha fazla optimizasyon gerektirebilir.
ZFN ve Yeten yanı sıra, bu tür RNA-güdümlü CRISPR/Cas9 sistemi 9,37,38 gibi yeni tasarımcı nükleazlar şimdi genom düzenleme uygulamaları için getirilmiştir. Mikroenjeksiyon ve burada tarif edilen kurucu hayvan analiz için tüm yöntemler de CRISPR/Cas9 ve genom düzenleme gelecek modları için de geçerlidir.
Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan ederim.
Biz mükemmel teknik yardım için Monika Tarnowska, Cornelia Albrecht, ve Ewa Skoczylas teşekkür etmek istiyorum. Bu çalışma SNF Sinergia hibe CRSI33-125073 PP tarafından finanse edildi.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
BsaI | NEB | R0535S or L | |
Esp3I | Thermo Scientific | ER0451 | |
T4 Ligase | NEB | M0202S or L | |
Spectinomycin | Sigma | S0692-1ML | |
Ampicillin | Sigma | A0166 | |
X-Gal | Sigma | B4252 | |
IPTG | Sigma | I6758 | |
Plasmid-Safe nuclease | Epicentre | E3101K | |
QIAprep Spin Miniprep Kit | Qiagen | 27106 | |
QIAGEN Plasmid Midi Kit | Qiagen | 12143 | |
QIAquick PCR Purification Kit | Qiagen | 28106 | |
mMESSAGE mMACHINE T7 Ultra Kit | Invitrogen | AM1345 | |
NucAway Spin Columns | Invitrogen | AM10070 | |
RNaseZAP | Sigma | R2020-250ML | |
NorthernMax Formaldyde Load Dye | Invitrogen | AM8552 | |
RNA Millennium Markers | Invitrogen | AM7150 | |
10x TBE buffer | Thermo Scientific | B52 | |
T7 endonuclease | NEB | M0302S or L | |
pGEM-T EasyVector System I | Promega | A3600 | |
SYBR Green I Nucleic Acid Gel Stain | Invitrogen | S-7563 | |
pregnant mare's serum gonadotrophin (PMSG) | Sigma | G4877 | |
human chorionic gonadotropin (hCG) | Sigma | CG5 | |
M2 embryo culture medium | Sigma | M7167 | |
M16 embryo culture medium | Sigma | M7292 | |
Mineral oil, embryo tested | Sigma | M8410 | |
Ketamine | CentraVet | Ket 201 | |
Xylazine | Sigma Aldrich | 46995 | |
Equipment/Tools | |||
Inverted microscope with Nomarski DIC optics (for example Nikon Eclipse TE200) | Nikon | ||
Micromanipulator units (for example Narishige, NT88NF) | Narishige | ||
Embryo holding capillaries | Sutter Instruments | B100-75-10 | |
Embryo injection capillaries | Narishige | GD-1 | |
Capillary puller (for example Sutter P97) | Sutter Instruments | ||
Microforge (for example Narishige MF-900) | Narishige | ||
Walton skin scissors | FST | 14077-10 | |
Surgical scissors | FST | 14041-10 | |
Surgical probe | FST | 10140-03 | |
Reflex wound clip system (9 mm) | FST | 12031-09 | |
Reflex wound clips (9 mm) | FST | 12032-09 | |
Dumont fine forceps 5 | FST | 11254-20 | |
Moria curved forceps | FST | 11370-31 | |
Moria fine forceps | FST | 11399-80 | |
Dietrich bulldog clamp | FST | 18038-45 | |
C57BL/6J mice | Jackson Labs | strain code 000664 | |
CD-1 mice | Charles River | strain code 000664 |
Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi
Izin talebiThis article has been published
Video Coming Soon
JoVE Hakkında
Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır