JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Burada, merkezi sinir sistemindeki astrositlerin işlevselliğini ve nörolojik hastalık ve tedavilerde glial hücreleri içeren mekanizmaları incelemek için nöral benzeri dokuların biyofabrik olarak tanımlanması için 3D biyobaskı murine kortikal astrositlerin bir yöntemini rapor ediyoruz.

Özet

Astrositler, nöronal destek ve işlevsellik de dahil olmak üzere merkezi sinir sisteminde (CNS) önemli bir role sahip glial hücrelerdir. Bu hücreler ayrıca sinirsel yaralanmalara yanıt verir ve dokuyu dejeneratif olaylardan korumak için hareket eder. Astrositlerin işlevselliğinin in vitro çalışmaları, bu tür olaylarda yer alan mekanizmaları aydınlatmak ve nörolojik bozuklukları tedavi etmek için tedaviler geliştirmeye katkıda bulunmak için önemlidir. Bu protokol, astrositler bakımından zengin sinir benzeri bir doku yapısını 3D biyobaskı astrosit yüklü biyoink ile biyofabrik hale getirmek için bir yöntem açıklanmaktadır. Bu çalışmada ekstrüzyon bazlı bir 3D biyobaskı kullanıldı ve C57Bl/6 fare yavrularının beyin kortikallerinden astrositler çıkarıldı. Biyoink, kortikal astrositlerin 3. 3D biyobaskı koşulları hücre stresini en aza indirerek, hücrelerin% 74.08'inin ±% 1.33'ünün biyobaskıdan hemen sonra uygulanabilir olduğu işlem sırasında astrositlerin yüksek canlılığına katkıda bulundu. 1 haftalık inkübasyondan sonra, astrositlerin canlılığı önemli ölçüde% 83.54'e ±% 3.00'e yükseldi ve bu da 3D yapının hücre büyümesi için uygun bir mikroçevrasyonu temsil ettiğini gösteriyor. Biyomalzeme bileşimi hücre bağlanmasına izin verdi ve astrositik davranışı uyardı, hücreler spesifik astrosit belirteci glial fibril asidik proteini (GFAP) ifade etti ve tipik astrositik morfolojiye sahip oldu. Bu tekrarlanabilir protokol, hücrelerin yerel mikroçevresine benzeyen astrositler bakımından zengin 3D sinir benzeri dokuyu biyofabrilleştirmek için değerli bir yöntem sağlar, astrositlerin işlevselliğini ve nörolojik hastalıklarda yer alan mekanizmalarla ilişkilerini anlamayı amaçlayan araştırmacılar için yararlıdır.

Giriş

Astrositler Merkezi Sinir Sistemi'ndeki (CNS) en bol hücre tipidir ve beyin homeostazında önemli bir rol oynar. Kalıcı nöronal desteğe ek olarak, astrositler nörotransmitter alımını modüle etmekten, kan-beyin bariyer bütünlüğünü korumaktan ve nöronal sinaptogenez1,2'yi düzenlemekten sorumludur. Astrositler ayrıca CNS iltihabında önemli bir role sahiptir, astrosit reaktivitesine veya reaktif astrogliosis3,4, dejeneratif ajanlara sağlıklı doku ekspozisyonlarını önleyen bir glial skar oluşturan bir süreçte beyindeki yaralanmalara yanıt verir5. Bu olay astrositlerin gen ekspresyonunda, morfolojisinde ve fonksiyon 6 ,7 'dedeğişikliklerlesonuçlanır. Bu nedenle, astrositlerin işlevselliğini içeren çalışmalar, nörolojik bozuklukları tedavi etmek için tedavilerin geliştirilmesine yardımcı olur.

İn vitro modeller nörolojik yaralanmalarla ilgili mekanizmaları incelemek için çok önemlidir ve başarılı izolasyon ve kortikal astrositlerin iki boyutlu (2D) kültürü oluşturulmuş olmasına rağmen8, bu model yerel hücre davranışını taklit eden gerçekçi bir ortam sağlayamaz ve beynin karmaşıklığını yeniden üretememektedir9 . 2D durumda, zayıf mekanik ve biyokimyasal destek, düşük hücre-hücre ve hücre-matris etkileşimleri ve bazal-apikal polaritenin yokluğuna yol açan hücre düzleştirme, hücre sinyal dinamiklerini ve tedavilere yanıtı tehlikeye atan değiştirilmiş hücre morfolojisi ve gen ekspresyona yol açan deneysel sonuçları etkiler10. Bu nedenle, sonuçları kliniğe çevirmeyi amaçlayan daha gerçekçi bir sinir ortamı sağlayan alternatifler geliştirmek çok önemlidir.

Üç boyutlu (3D) hücre kültürü, CNS11de dahil olmak üzere organların ve dokuların artan sadakat özellikleriyle yeniden özetleyen daha gelişmiş bir modeli temsil eder. Glial kültür ile ilgili olarak, 3D modeller astrosit morfolojisinin, hücre bazal-apikal polaritesinin ve hücre sinyalinin korunmasına katkıda bulunur12,13. 3D biyobaskı teknolojisi, yerel dokuların yapısını ve özelliklerini yeniden oluşturmak için hücreler ve biyomalzemeler kullanarak 3D canlı dokuları kontrollü bir şekilde biyofabrik hale getirmek için güçlü bir araç olarak ortaya çıkmıştır. Bu teknolojinin kullanımı sonuç tahmininin önemli ölçüde iyileşmesine yol açmış ve CNS14 , 15,16'ya uygulanan rejeneratif tıbba katkıdabulunmuştur.

Burada açıklanan protokol kortikal astrositlerin izolasyonu ve kültürünü detaylandırıyor. Protokol ayrıca, laminin ile desteklenmiş jelatin / jelatin methacryloyl (GelMA) / fibrinojene gömülü biyobaskı astrositleri için tekrarlanabilir bir yöntemi detaylandırıyor. Bu çalışmada kortikal astrositler içeren biyomalzeme bileşimi 1 x 106 hücre/mL yoğunlukta yazdırmak için ekstrüzyon bazlı bir biyobaskı kullanılmıştır. Baskı hızı kontrol altına alarak biyobaskı kesme stresi en aza indirilmiş ve astrositler işlemden sonra yüksek canlılık göstermiştir. Biyobaskılı yapılar 1 hafta boyunca kültürlendi ve astrositler hidrojel içinde yayılabildi, bağlanabildi ve hayatta kalabildi, astrositik morfolojiyi korudu ve belirli bir belirteç glial fibrili asidik proteini (GFAP)ifade etti 4.

Bu prosedür piston tahrikli ekstrüzyon bazlı biyobaskılarla uyumludur ve farklı kaynaklardan elde edilen biyobaskı astrositleri için kullanılabilir. Burada önerilen 3D biyobaskı modeli, sağlıklı dokularda astrosit işlevselliğinde yer alan mekanizmaların çalışmaları ve nörolojik patolojilerin ilerlemesini ve tedavi gelişimini anlamak gibi çok çeşitli sinir mühendisliği uygulamaları için uygundur.

Protokol

Hayvanları içeren tüm prosedürler araştırmalarda hayvan kullanımı için uluslararası yönergelere uydu (http://www.iclas.org) ve Universidade Federal de São Paulo Araştırma Etik Komitesi (CEUA 2019/ 9292090519) tarafından onaylandı.

1. Farelerin beyin diseksiyonu

  1. 10 mL soğuk Hanks Tamponlu Tuz Çözeltisini (HBSS) 100 mm kültür yemeğine ve 1 mL'yi 1,5 mL mikrotüpe aktarın. Hayvan başına bir mikrotüp hazırlayın.
    NOT: Hem kültür yemeğinin hem de mikrotüplerin buzda tutulması gerekir.
  2. DMEM F12 + %10 Fetal Sığır Serumu (FBS), %2 glutamin ve %1 Penisilin-Streptomisidin (P/S) kullanarak astrosit kültür ortamını hazırlayın. 0,2 μm filtre kullanarak ortamı sterilize edin.
  3. Keskin bir çalışma makası kullanarak kafa keserek C57Bl /6 fare yavrularını (doğum sonrası 1 gün) ötenazi edin. Yaban tokası kullanarak, deriyi çekin ve kafatasını ortaya çıkarın. Hem makas hem de asaların %70 etanol ile sterilize olduğundan emin olun.
  4. Keskin kavisli bir uç makası kullanarak kafatasını foramen magnum'dan sagittal düzlem boyunca başın tepesine kesin.
    NOT: Ensefalik dokunun zarar görmemesine dikkat edin.
  5. Daha önce % 70 etanol ile sterilize edilmiş bir spatula kullanarak, beyni kraniyal boşluktan kaldırın ve 10 mL soğuk HBSS içeren kültür kabına yerleştirin.
  6. Beyni içeren kültür çanasını stereomikroskopun altına yerleştirin ve iki künt uçlu etops kullanarak menenjitleri beyinden çıkarın (Şekil 1).
  7. Kortikalleri bir spatula kullanarak beynin ortanca çizgisinden yavaşça uzaklaştırarak beynin geri kalanından ayırın.
  8. Her iki kortiği de toplayın ve hemen 1 mL soğuk HBSS içeren aynı mikrotüpe aktarın.

2. Astrosit izolasyonu ve kültürü

  1. Laminer akışın altında, kavisli bir mikro makas kullanarak kortikal dokuyu küçük parçalara ayırın ve 3x yukarı ve aşağı pipetleme yaparak 1 mL HBSS ile yıkayın. Dokunun oturmasını bekle. HBSS'yi çıkarın ve işlemi iki kez daha tekrarlayarak taze HBSS ekleyin.
  2. HBSS'yi çıkarın ve dokuyu 5 dakika boyunca 37 °C'de% 0.05 trypsin 1 mL ile kuluçkaya yatırın.
    NOT: Bu noktada sadece tripsin sindirimi yeterlidir.
  3. 15x yukarı ve aşağı hafifçe pipetleme ile dokuyu mekanik olarak ayrıştırın.
    NOT: Dokunun tamamen ayrışması, süspansiyon bulanıklığındaki artış ve süspansiyonda büyük doku parçalarının bulunmaması ile gözlenir.
  4. Çözeltiyi 15 mL konik bir tüpe aktarın, eşit miktarda FBS ekleyerek tripsin aktivitesini nötralize edin ve ayrışmayan parçaları çıkarmak için çözeltiyi 0,4 μm hücre süzgeç filtresinde filtreleyin.
  5. Filtreyi 1 mL astrosit ortamıyla yıkayın, süzgeçten geçen hücre süspansiyonunu toplayın ve 200 x g ve 25 °C'de 5 dakika santrifüjleyin. Santrifüjlemeden sonra, süpernatantı atın ve peletin 1 mL astrosit kültür ortamında askıya alın.
  6. Hücre süspansiyonu bir T25 kültür şişesine aktarın, ortamın hacmini 3,5 mL'ye kadar yapın ve hücreleri 37 °C ve% 5 CO2'dekuluçkaya haline getirin.
  7. 24 saat sonra hücrelerin yapışmasını sağlayın. Ardından, ortamı değiştirin ve her 3 günde bir değiştirin.
  8. 7 gün sonra, hücreleri 2 mL 1x PBS ile yıkayarak mikroglia ve oligodendrositleri kültürden çıkarın.
  9. PBS çözümünü astrosit kültür ortamıyla değiştirin ve kültür şişesini bir gecede 180 rpm'de bir yörünge çalkalayıcıda bırakın.
    NOT: Astrositler yaklaşık 10-12 günlük kültürde bir konfluent monolayer oluşturur.

3. Jelatin methacryloyl sentezi (GelMA)

  1. Porcine derisinden elde edilen 10 g jelatin tartın ve çözeltinin tamamen çözünene kadar 240 rpm ve 50 ° C'de bir ısıtma plakasında karıştırmasına izin vererek 100 mL PBS'de çözün.
  2. Bir kaputun altına, düşük bir fonksiyonelleştirme derecesi için 2 mL methakrilik anhidrit (MA) ekleyin ve jelatin emülsiyonunun 240 rpm ve 50 ° C'de 2 saat karıştırmasına izin verin.
    DİkKAT: MA tehlike beyanı: H302 + H332 (yutulursa veya solunursa zararlı), H311 (ciltle temas halinde toksik), 314 (ciddi cilt yanıkları ve göz hasarına neden olur), 315 (cilt tahrişi neden olur), H317 (alerjik cilt reaksiyonuna neden olabilir), H318 (ciddi göz hasarına neden olabilir), 331 (solunursa toksik), H332 (solunursa zararlı), H335 (solunum tahrişi neden olabilir). Kullanım kuralları: P261 (toz/duman/gaz/sis/buhar/sprey solumaktan kaçının), P305 + P351 + P338 + P310 (GÖZLERDEYSE: Birkaç dakika boyunca suyla dikkatlice durulayın. Varsa ve yapılması kolaysa kontakt lensleri çıkarın. Hemen bir ZEhİr MERKEZİ / doktor arayın), P301 + P312 + P330 (YUTULURSA: Kendinizi iyi hissetmiyorsanız ZEhİr MERKEZİ / doktor çağırin. Ağzı durulayın).
    NOT: MA'yı çok yavaş ekleyin, damla damla.
  3. Jelatin-MA çözeltisini 200 mL son hacim elde etmek için önceden ısıtılmış PBS 'nin (50 °C) 100 mL'sinde seyreltin ve çözeltinin 240 rpm ve 50 °C'de 10 dakika karıştırmasını sağla.
  4. ~20 cm diyaliz zarını kesin (moleküler kesme 12-14 kDa) ve yumuşayana kadar deiyonize suya batırın.
    NOT: Delik veya kusur olmadığından emin olmak için zarları deiyonize suyla doldurun.
  5. Bir huni kullanarak jelatin-MA çözeltisini membranlara aktarın.
    NOT: Karışıma izin vermek için içeride fazladan alan bırakarak her iki tarafı da kapatın.
  6. Jelatin-MA çözeltisini içeren zarları diyaliz için 2 L damıtılmış su içeren bir kaba yerleştirin ve 5 gün boyunca 40 °C'de (500 rpm) karıştırmalarını sağlayın.
    NOT: Suyun buharlaşmasını önlemek için kabı örtün.
  7. Damıtılmış suyu günde iki kez değiştirin. Her seferinde, homojenizasyon için zarları ters çevirin.
  8. Beşinci gün, 200 mL önceden ısıtılmış ultra saf suyu (40 °C) diyalizlenmiş jelatin-MA'ya karıştırın ve 40 °C'de 15 dakika karıştırın.
  9. Jelatin-MA çözeltisini 25 mL'ye kadar 50 mL konik tüplere aktarın ve tüplerin 2 gün boyunca -80 ° C'de kalmasını bırakın.
    NOT: Liyofilizasyonu kolaylaştırmak için tüpleri yatay olarak saklayın.
  10. Donmuş çözeltileri 3-5 gün boyunca liyofilize edin ve nemden korunan liyofilize JelMA'yı saklayın.

4. Bioink hazırlığı

NOT: 1 mL biyoink elde etmek için filtrasyon sırasında kayıplar olabileceğinden en az 3 mL biyomalzeme çözeltisi imal edilmesi önerilir.

  1. Fibrinojen çözeltisinin hazırlanması
    1. Deiyonize suda salin çözeltisi (%0,9) hazırlayın ve 10 mg/mL konsantrasyon elde etmek için salin çözeltisinin 1 mL'sinde sığır plazmasından 10 mg fibrinojen çözün.
      NOT: Fibrinojen adsorblar olarak, fibrinojen çözeltisini hazırlamak için cam şişeler kullanmayın.
    2. Fibrinojenin tamamen çözünmesine kadar çözeltiyi 37 °C'de ajitasyon altında bırakın.
      NOT: Fibrinojen çözünmesi için, 37 °C'de bir fırının içine yerleştirilmiş bir döner sistem kullanın. 37 °C'de sıcak bir plaka üzerinde manyetik ajitasyon (180 rpm) fibrinojen de uygundur. Bu durumda, 10 mg/ mL fibrinojenin çözülmesi yaklaşık 40 dakika sürer.
  2. Jelatin/GelMA çözeltisinin hazırlanması
    1. 0,12 g jelatin tartın ve % 4 (w/v) jelatin nihai konsantrasyon elde etmek için önceden ısıtılmış PBS (40 °C) 1,9 mL'ye ekleyin. Çözülmeyi kolaylaştırmak için girdap.
    2. Emülsiyonun tamamen çözünene kadar 40 °C'de tutun.
    3. 0.06 g lyophilized GelMA tartın ve % 2 (w/ v) JelMA son konsantrasyon elde etmek için jelatin çözeltisine aktarın. Çözülmeyi kolaylaştırmak için girdap.
    4. Çözeltiyi tamamen çözünene kadar 40 °C'de tutun.
  3. Astrosit yüklü jelatin/GelMA/fibrinojen biyoink hazırlanması
    1. Pipet 0.9 mL 10 mg/mL fibrinojen çözeltisi ve jelatin/ GelMA çözeltisine transfer 3 mg / mL fibrinojen nihai konsantrasyon elde etmek için.
    2. 0.015 g fotoinitiatör (PI) tartın ve son konsantrasyonu elde etmek için jelatin / GelMA / fibrinojen çözeltisine aktarın% 0.5 (w / v) PI. Tüpü yukarı ve aşağı çevirerek çözeltiyi karıştırın ve PI bozulmasını önlemek için ışıktan korunarak 40 °C'de tutun.
      NOT: Biyoink'i maksimum 24 saat boyunca 4 °C'de stokla.
    3. Laminar akış altında, 0,2 μm filtre kullanarak çözeltiyi steril 15 mL konik tüpe filtreleyin.
      NOT: Filtrasyona izin vermek için biyomalzeme çözeltisi 37-40 °C'de olmalıdır.
    4. Biyomalzeme çözeltisinin 980 μL'lik kısmını 15 mL konik tüpe aktarın.
    5. 100 μg/ mL stok çözeltisi elde etmek için laminin'i tuzlu çözeltide seyreltin.
    6. Pipet 20 μL laminin ve 2 μg / mL laminin nihai konsantrasyonu elde etmek için biyoink içeren tüpe aktarın.
    7. Kabarcıklardan kaçınarak yukarı ve aşağı pipetleyerek hafifçe karıştırın. Herhangi bir kabarcık devam ederse, konik tüpü 2 dakika boyunca 200 x g'da santrifüj edin. Biyoink'i hücrelerle karışana kadar 37 °C'de tutun.
    8. Trypsinize birincil astrositler ile 0.05% trypsin 5 dk.
      NOT: 1 ile 3.
    9. Trypsin aktivitesini FBS ile 1:1 oranında nötralize edin ve hücreleri 15 mL konik bir tüpe aktarın. 5 dakika boyunca 200 x g'da santrifüj edin.
    10. Hücreleri sayın ve 1 x 106 hücreyi farklı bir konik tüpe aktarın. 5 dakika boyunca 200 x g'da santrifüj edin.
    11. Konik tüpün altına hafifçe dokunarak hücre peletini askıya almak için küçük bir hacim (~200 μL) bırakarak üstnatant çıkarın.
    12. 1 mL jelatin/GelMA/fibrinojen çözeltisini hücreleri içeren tüpe aktarın ve homojenize etmek için hafifçe yukarı ve aşağı pipet, 1 x 106 hücre / mL'lik son bir konsantrasyon elde edin.

5. Çapraz bağlantı çözümünün hazırlanması

  1. Trombin rekonsesi
    1. Steril deiyonize suda 15 mL konik tüpte %0,1 (w/v) sığır serum albümini (BSA) ile trombin 100 U/mL stok çözeltisi hazırlayın. -20 °C'de mikrotüplerde stokla.
      NOT: Trombin adsorbları cama olarak, stok çözeltisini hazırlamak veya aliquotları saklamak için cam şişeler kullanmayın.
  2. Trombin-CaCl2 çözeltisinin hazırlanması
    1. Pipet 100 μL trombin stok çözeltisi ve 1 U/mL trombin nihai konsantrasyon elde etmek için 8.9 mL steril deiyonize su içeren 50 mL konik tüpe aktarın.
    2. Deiyonize suda %10 (w/v) CaCl2 çözeltisi hazırlayın ve 0,2 μm filtre kullanarak sterilize edin.
    3. 1:9 (CaCl2 ila trombin) nihai bir oran elde etmek için% 10 CaCl2 çözeltisinin 1.1 mL'sini trombin içeren konik tüpe aktarın.
      NOT: Çapraz bağlantı çözümünü denemede kullanılacak birimde hazırlayın ve depolamayı önleyin.

6. Ekstrüzyon bazlı bir biyobaskı kullanarak biyobaskı astrosit yüklü biyoink

  1. Sinir dokusunun tasarımı
    1. G kodunu kullanarak: X ve Y eksenindeki her biyobaskı çizgisi arasında 1 mm mesafe ve Z ekseninde 6 katman (her çizgi arasında 0,2 mm) 6 x 6 mm (kare şekil) ızgara oluşturun; ekstrüzyonu (E) 0,01 mm'ye ayarlayın ve Z ekseninin her yeni katmanında 0,001 mm artırın; ve yazdırma hızını (F) 400 mm/dk olarakayarlayın( Ek Bilgi ).
  2. Biyobaskı kurulumu
    1. Makineyi 15 dakika boyunca UV ışığına maruz bırak ve sonra% 70 etanol ile silin.
    2. Güç anahtarını kullanarak biyobaskıyı açın. Makineyi bir USB kablosuyla bilgisayara bağlayın. Biyobaskıya bağlamak ve dosya tasarımını yüklemek için kontrol yazılımını açın.
  3. Biyobaskı şırındının hazırlanması
    1. Astrosit yüklü jelatin/GelMA/fibrinojen biyoink'i 1.000 μL pipet kullanarak 5 mL plastik şırınna aktarın.
      NOT: Kabarcık oluşumunu önlemek için yavaşça aktarın.
    2. Steril 22 G künt iğneyi şırıngaya bağlayın.
      NOT: Şırınnayı 4 °C'de 2 dakika bekletin.
    3. Şırınnayı biyobaskı baskı kafasına bağlayın ve kalan kabarcıkları çıkarmak için biyoink'i manuel olarak yıkayın.
  4. Biyobaskı
    NOT: Biyobaskı laminar davlumbazın dışında gerçekleştirildi.
    1. Biyobaskı masasına 35 mm'lik bir kültür çanağı yerleştirin ve iğnenin hareket etmesini sağlamak için iğneyi kültür çanağı yüzeyinden 0,1 mm uzağa yerleştirin.
      NOT: Her biyobaskı için bir adet 35 mm kültür çanağı kullanın.
    2. Yazdır düğmesine basın.
    3. Biyobaskı bittikten sonra şırınnanın çanaktan uzaklaştığından emin olun. Ardından, kültür yemeğini kapatın ve çapraz bağlama işlemine hazırlanın.
      NOT: Bir yapının biyobaskı yaklaşık 1 dakika 10 s sürer.
  5. Biyobaskı yapı ve kültürün çapraz bağlantısı
    1. Kültür çanağı UV ışığı altında GelMA çapraz bağlama için2 x 60 s (yukarı ve aşağı) için 2 mW/cm 2'ye yerleştirin.
    2. Laminar akışı altında, biyobaskılı yapıyı steril bir spatula kullanarak 24 kuyulu bir tabağa aktarın.
    3. 500 μL trombin/CaCl2 çözeltisi ekleyin ve fibrin çapraz bağlantısına izin vermek için 30 dakika bekletin.
    4. Çapraz bağlama solüsyonunun çıkarın ve yapıyı 2 mL PBS 1x ile yıkayın. Ardından, PBS'yi 1 mL astrosit kültürü ortamı ile değiştirin ve 37 °C ve% 5 CO2'dekuluçkaya yatırın. Ortamı her 3 günde bir değiştirin.

7. Astrositlerin uygulanabilirliğinin değerlendirilmesi

  1. Biyobaskı astrositlerin uygulanabilirliği
    1. Biyobaskı yapıyı spatula kullanarak 35 mm'lik bir kültür çanağı içine aktarın.
    2. Yapıyı 1 mL 1x PBS ile yıkayın.
    3. Canlı/Ölü reaktifin 100 μL'lik kısmını yapının üzerine yatırın ve 37 °C'de 30 dakika boyunca tutun ve ışıktan koruyun.
    4. Canlı/Ölü reaktifini çıkarın ve yapıyı 1 mL 1x PBS ile yıkayın.
    5. Örneği bir spatula kullanarak konfokal bir çanağa aktarın ve görüntülerin elde edilmesi için 488 ve 570 nm uyarım kullanarak konfokal mikroskop altında yapı içindeki hücreleri gözlemleyin.
      NOT: Yapı içindeki hücrelerin genel bir görselleştirmesi için 10x büyütme kullanın.
    6. Numunenin düz oturduğundan emin olun. Gerekirse, düzlüğü artırmak için numunenin üzerine bir kapak yerleştirin.
      NOT: Görüntüleme sırasında, numunenin kurumasını önlemek için konfokal kabın iyice kapatıldığından emin olun.
    7. Hesaplamalı bir yazılım kullanarak uygulanabilir (yeşil) ve ölü (kırmızı) sayısını hesaplayın.
  2. 2D astrosit kültürünün uygulanabilirliği
    1. Tohum 0,5 x10 6 astrosit (geçiş 1-3) 35 mm konfokal bir tabakta, astrositler orta ekleyin ve 37 ° C ve% 5 CO2'dekuluçkaya yatır .
    2. Hücreler birleştiğinde, kültür ortamını çıkarın ve 1 mL 1x PBS ile yıkayın.
    3. Live/Dead reaktifinin 200 μL'sini biriktirin ve çanağı ışıktan korunarak 37 °C'de 30 dakika tutun.
    4. Canlı/Ölü reaktifini çıkarın ve hücreleri 1 mL 1x PBS ile yıkayın.
    5. Yemeği dijital kamerayla birleştiğinde konfokal mikroskopa alın ve görüntü elde etmek için 488 ve 570 nm heyecan verici kullanın.
    6. Hesaplamalı bir yazılım kullanarak uygulanabilir (yeşil) ve ölü (kırmızı) sayısını hesaplayın.

8. Astrositlerin immünositleri

  1. 3D biyobaskılı astrositlerin glial fibril asidik protein (GFAP) boyanma
    NOT: Diğer hücre belirteçlerinin varlığını araştırmak için birincil antikoru buna göre değiştirin.
    1. Ortamı kuyudan çıkarın ve yapıyı 1 mL 3x PBS ile yıkayın.
    2. Yapı tamamen kaplanana kadar kuyuya PBS'de % 4 paraformaldehit (PFA) ekleyin ve 4 °C'de 2 saat bekletin.
    3. PFA'yı çıkarın ve yapıyı 1 mL 3x PBS ile yıkayın.
      NOT: PBS'de 4 °C'de saklanırsa bu prosedür birkaç ay duraklatılabilir. PBS buharlaşmasını önlemek için kuyu plakasının kapalı olduğundan emin olun.
    4. Numuneyi 5 dakika boyunca glisinin 0.1 mol / L ile tedavi edin.
    5. 5 dakika boyunca 1 mL 1x PBS ile yıkayın.
    6. Orbital ajitasyon altında 25 °C'de 1 saat boyunca %0,1 Triton X-100 ve %10 FBS içeren PBS ile numuneyi permeabilize edin.
    7. Yapıyı bir gecede 4 °C'de tavuk anti-GFAP (birincil antikor seyreltme 1:500) ile kuluçkaya yatırın.
    8. Birincil antikoru epire edin ve numuneyi 1 mL PBS ile 5 dakika, 3 kez yıkayın.
      NOT: Primer antikor 4 °C'de depolandığında birkaç kez tekrar kullanılabilir.
    9. Örneği Alexa flor 488 konjuge anti-tavuk (ikincil antikor seyreltme 1:500) ve 1 μg/mL DAPI ile yörüngesel ajitasyon altında 25 °C'de 1 saat kuluçkaya yatırın.
      NOT: Numuneyi ışıktan koruyun.
    10. Numuneyi 1 mL PBS ile 5 dakika, 3 kez yıkayın.
    11. Yapıyı 35 mm konfokal bir tabağa aktarın.
      NOT: Numunenin kurumasını önlemek için kabın iyi kapalı olduğundan emin olun.
  2. 2B astrosit kültürünün glial fibril asidik protein (GFAP) boyanma
    1. Tohum 0,5 x10 6 astrosit (geçiş 1-3) 35 mm konfokal bir tabakta, astrositler orta ekleyin ve 37 ° C ve% 5 CO2'dekuluçkaya yatır .
    2. Hücreler birleştiğinde, kültür ortamını çıkarın ve 1 mL 1x PBS ile yıkayın.
    3. 8.1.2-8.1.10 adımlarını yineleyin.
  3. Astrositler sitoskeleton boyama
    1. 8.1.1-8.1.6 adımlarını yineleyin.
    2. PBS'ye 200 μL 50 μg/mL floresan konjuge phalloidin çözeltisi ve yapının üzerine 1 μg/mL DAPI ekleyin.
    3. Yörüngesel ajitasyon altında 25 °C'de 1 saat kuluçkaya yatarak numuneyi ışıktan korur.
    4. Numuneyi 1 mL PBS ile 5 dakika 3 kez yıkayın ve yapıyı bir spatula kullanarak konfokal bir tabağa aktarın.
      NOT: Numunenin kurumasını önlemek için kabın iyi kapalı olduğundan emin olun.

9. Konfokal görüntüleme

  1. Bulaşıkları görüntüleme için dijital kamera (359, 488 ve 570 nm eksilme) ile birleştirilmiş bir konfokal mikroskopa alın.
  2. Genel bir görselleştirme için 10x ve hücrelerin yakınlaştırılmış görüntüleri için 40 veya 63x büyütme kullanın.
    NOT: Numunenin düz oturduğundan emin olun. Gerekirse, düzlüğü artırmak için numunenin üzerine bir kapak yerleştirin.

Sonuçlar

Bu çalışma, katman katman primer astrositler yüklü jelatin /GelMA/fibrinojen biyoink biriktirmek için 3D biyobaskı teknolojisini kullanarak sinir benzeri bir doku geliştirmeyi amaçlamaktadır. Astrositler, canlı bir 3D yapının biyofabrikasyonuna izin vererek biyomalzeme bileşimine eklenen fare yavrularının serebral korteksinden çıkarıldı ve izole edildi .

Bilgisayar destekli tasarım (CAD), besin maddelerinin ve oksijenin difüzyonunu kolaylaşt...

Tartışmalar

3D biyobaskı teknolojisi, yapısal ve fizyolojik olarak doğal dokulara benzeyen rafine yapıların mühendisliğine izin veren bir biyofabrikasyon alternatifi olarak ortaya çıkmıştır22, beyindahil 23. Nöral benzeri dokuların biyofabrikasyonu, CNS11'ietkileyen birçok hastalığın gelişimi ve tedavisi ile ilişkili hücresel ve moleküler mekanizmaları anlamak için önemli bir araç olan in vitro yerel mikroçevre modellemesine i...

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak bir ihtilafı yoktur.

Teşekkürler

Bu çalışma São Paulo Araştırma Vakfı (FAPESP), 2018/23039-3 ve 2018/12605-8 hibe numaraları tarafından desteklendi; Ulusal Bilimsel ve Teknolojik Gelişim Konseyi (CNPq), 465656/2014-5 ve 309679/2018-4 hibe numaraları; ve Yükseköğretim Personelinin İyileştirilmesi Koordinasyonu (CAPES), mali kod 001.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
3D Bioprinter3D Biotechnology SolutionsExtrusion-based bioprinter
Blunt-tip forcepsIntegra Miltex6--30Forceps for brain dissection previously sterilized
Bovine serum albuminSigma-Aldrich9048-46-8Protease free, fatty acid free, essentially globulin free
CaCl2Sigma-Aldrich10043-52-4
Cell culture flaskFisher Scientific156340Culture flask T25
Cell strainerCorning Incorporated352340Cell strainer 40 µm
Confocal microscopeLeicaConfocal TCS SP8 microscopy coupled with an Olympus FluoView 300 confocal system
Conical tubesThermo Scientific339651, 339652Sterile tubes of 15 mL and 50 mL
DAPIAbcamab224589DAPI staining solution
DMEM/F12Gibco; Life Technologies Corporation12500062DMEM/F-12 50/50, 1X (Dulbecco's Mod. Of Eagle's Medium/Ham's F12 50/50 Mix) with L-glutamine
Dyalisis tubingSigma-AldrichD9527Molecular weight cut-off = 14 kDa
EthanolFisher Scientific64-15-5Reagent grade
Fetal Bovine SerumGibco; Life Technologies Corporation12657011Research Grade
FibrinogenSigma-Aldrich9001-32-5Fibrinogen cristalline powder from bovine plasma
GelatinSigma-Aldrich9000-70-8Gelatin powder from porcine skin
GlycineSigma-Aldrich56-40-6Glycine powder
Hanks Buffered Salt Solution (HBSS)Gibco; Life Technologies Corporation14175095No calcium, no magnesium, no phenol red
L-GlutamineSigma-Aldrich56-85-9L-Glutamine crystalline powder
LamininSigma-Aldrich114956-81-9Laminin 1-2 mg/mL L in 50 mM Tris-HCl
Live dead kit cell imaging kitThermo ScientificR37601Green fluorescence in live cells (ex/em 488 nm/515 nm). Red fluorescence in dead cells (ex/em 570 nm/602 nm)
Methacrylic anhydrideSigma-Aldrich760-93-0For GelMA preparation
MicrotubesCorning IncorporatedMCT-150-CMicrotubes of 1,5 mL
NaClSigma-Aldrich7647-14-5
Needle 22GFisher ScientificNC1362045Sterile blunt needle
Operating scissorIntegra Miltex05--02Sharp scissor for brain dissection previously sterilized
ParaformaldehydeSigma-Aldrich30525-89-4Paraformaldehyde powder
Penicillin/StreptomycinGibco; Life Technologies Corporation15070063Pen Strep (5,000 Units/ mL Penicillin; 5,000 ug/mL Streptomycin)
Petri dishCorning Incorporated430591, 430588Sterile petri dishes of 35 and 100 mm
PhalloidinAbcamab176753iFluor 488 reagent
PhotoinitiatorSigma-Aldrich106797-53-92-Hydroxy-4′-(2-hydroxyethoxy)-2-methylpropiophenone
Phosphate buffer saline (PBS)Gibco; Life Technologies Corporation10010023PBS 1 x, culture grade, no calcium, no magnesium
Poly-L-lysineSigma-Aldrich25988-63-0Poly-L-lysine hydrobromide mol wt 30,000-70,000
Primary antobodyAbcamab4674Chicken polyclonal to GFAP
Secondary antibodyAbcamab150176Alexa fluor 594 anti-chicken
SpatulaMiltexV973-70Number 24 cement spatula previously sterilized
StereomicroscopeFisherbrand3000038Microscope for brain dissection
Syringe 5 mLBD1222C84Sterile syringe
Syringe filter 2 µmFisher Scientific09-740-105Polypropylene filter for sterilization
ThrombinSigma-Aldrich9002--04-4Thrombin cristalline powder from bovine plasma
Triton X-100Sigma-Aldrich9002-93-1Laboratory grade
Trypsin-EDTAGibco; Life Technologies Corporation15400054Trypsin no phenol red 1 x diluted in PBS
Versene solutionGibco; Life Technologies Corporation15040066Versene Solution (0.48 mM) formulated as 0.2 g EDTA(Na4) per liter of PBS
Well plateThermo Scientific144530Sterile 24-well plate

Referanslar

  1. Di, L., Mannelli, C., Cuzzocrea, S. Astrocytes: Role and functions in brain pathologies. Frontiers in Pharmacology. 10, 1114 (2019).
  2. Kimelberg, H. K., Nedergaard, M. Functions of astrocytes and their potential as therapeutic targets. Neurotherapeutics. 7 (4), 338-353 (2010).
  3. Giovannoni, F., Quintana, F. J. The role of astrocytes in CNS inflammation. Trends in Immunology. 41 (9), 805-819 (2020).
  4. Escartin, C., et al. Reactive astrocyte nomenclature, definitions, and future directions. Nature Neuroscience. 24 (3), 312-325 (2021).
  5. Carson, M. J., Thrash, J. C., Walter, B. The cellular response in neuroinflammation: The role of leukocytes, microglia and astrocytes in neuronal death and survival. Clinical Neuroscience Research. 6 (5), 237-245 (2006).
  6. Liddelow, S. A., Barres, B. A. Reactive astrocytes: Production, function, and therapeutic potential. Immunity. 46 (6), 957-967 (2017).
  7. Clarke, L. E., et al. Normal aging induces A1-like astrocyte reactivity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the Unied States of America. 115 (8), 1896-1905 (2018).
  8. Schildge, S., Bohrer, C., Beck, K., Schachtrup, C. Isolation and culture of mouse cortical astrocytes isolation and culture of mouse cortical astrocytes. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (71), e50079 (2013).
  9. Duval, K., et al. Modeling physiological events in 2D vs. 3D cell culture. Physiology. 32 (4), 266-277 (2017).
  10. Knight, E., Przyborski, S. Advances in 3D cell culture technologies enabling tissue-like structures to be created in vitro. Journal of Anatomy. 227 (6), 746-756 (2015).
  11. Zhuang, P., Sun, A. X., An, J., Chua, C. K., Chew, S. Y. 3D neural tissue models: From spheroids to bioprinting. Biomaterials. 154, 113-133 (2018).
  12. Balasubramanian, S., Packard, J. A., Leach, J. B., Powell, E. M. Three-dimensional environment sustains morphological heterogeneity and promotes phenotypic progression. Tissue Engineering. Part A. 22 (11-12), 885-898 (2016).
  13. Watson, P. M. D., Kavanagh, E., Allenby, G., Vassey, M. Bioengineered 3D glial cell culture systems and applications for neurodegeneration and neuroinflammation. SLAS Discovery. 22 (5), 583-601 (2017).
  14. Li, Y. E., Jodat, Y. A., Samanipour, R., Zorzi, G., Zhu, K. Toward a neurospheroid niche model: optimizing embedded 3D bioprinting for fabrication of neurospheroid brain-like co-culture constructs. Biofabrication. , (2020).
  15. Zhou, X., et al. Three-dimensional-bioprinted dopamine-based matrix for promoting neural regeneration. ACS Applied Materials & Interfaces. 10 (10), 8993-9001 (2018).
  16. de la Vega, L., et al. 3D bioprinting human induced pluripotent stem cell-derived neural tissues using a novel lab-on-a-printer technology. Applied Sciences. 8 (12), 2414 (2018).
  17. Scheraga, H. A. The thrombin-fibrinogen interaction. Biophysical Chemistry. 112 (2-3), 117-130 (2004).
  18. Ariens, R. A. S., Lai, T., Weisel, J. W., Greenberg, C. S., Grant, P. J. Role of factor XIII in fibrin clot formation and effects of genetic polymorphisms. Blood. 100 (3), 743-754 (2002).
  19. Yue, K., et al. Synthesis, properties, and biomedical applications of Gelatin Methacryloyl (GelMA) hydrogels. Biomaterials. 73, 254-271 (2015).
  20. de Melo, B. A. G., et al. Strategies to use fibrinogen as bioink for 3D bioprinting fibrin-based soft and hard tissues. Acta Biomaterialia. 117, 60-76 (2020).
  21. Wang, X., et al. Gelatin-based hydrogels for organ 3D bioprinting. Polymers (Basel). 9 (9), 401 (2017).
  22. Murphy, S. V., Atala, A. 3D bioprinting of tissues and organs. Naure. Biotechnology. 32 (8), 773-785 (2014).
  23. de la Vega, L., Lee, C., Sharma, R., Amereh, M., Willerth, S. M. 3D bioprinting models of neural tissues: The current state of the field and future directions. Brain Research Bulletin. 150, 240-249 (2019).
  24. Clavreul, S., et al. Cortical astrocytes develop in a plastic manner at both clonal and cellular levels. Nature Communications. 10 (1), 4884 (2019).
  25. Hanu, R., et al. Monocarboxylic acid transporters, MCT1 and MCT2, in cortical astrocytes in vitro and in vivo. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 278 (5), 921-930 (2000).
  26. Liu, R., Wang, Z. h., Gou, L., Xu, H. A cortical astrocyte subpopulation inhibits axon growth in vitro and in vivo. Molecular Medicine Reports. 12 (2), 2598-2606 (2015).
  27. Winter, C. C., Cullen, D. K., Donnell, J. C. O., Song, Y. J., Hernandez, N. S. Three-dimensional tissue engineered aligned astrocyte networks to recapitulate developmental mechanisms and facilitate nervous system regeneration. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (131), e55848 (2018).
  28. East, E., Golding, J. P., Phillips, J. B. A versatile 3D culture model facilitates monitoring of astrocytes undergoing reactive gliosis. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 3 (8), 634-646 (2009).
  29. Hawkinsn, B. T., Grego, S., Sellgren, K. L. Three-dimensional culture conditions differentially affect astrocyte modulation of brain endothelial barrier function in response to transforming growth factor B1. Brain Research. 1608, 167-176 (2015).
  30. Abelseth, E., et al. 3D printing of neural tissues derived from human induced pluripotent stem cells using a fibrin-based bioink. ACS Biomaterials Science and Engineering. 5 (1), 234-243 (2019).
  31. Filippo, T. R. M., et al. CXCL12 N-terminal end is sufficient to induce chemotaxis and proliferation of neural stem/progenitor cells. Stem Cell Research. 11 (2), 913-925 (2013).
  32. Galindo, L. T., et al. Chondroitin sulfate impairs neural stem cell migration through ROCK activation. Molecular Neurobiology. 55 (4), 3185-3195 (2018).
  33. Groll, J., et al. A definition of bioinks and their distinction from biomaterial inks. Biofabrication. 11 (1), 03001 (2018).
  34. Kyle, S., Jessop, Z. M., Al-sabah, A., Whitaker, I. S. Printability of candidate biomaterials for extrusion-based 3D printing: state-of-the-art. Advanced Healthcare Materials. 6 (16), (2017).
  35. Blaeser, A., et al. Controlling shear stress in 3D bioprinting is a key factor to balance printing resolution and stem cell integrity. Advanced Healthcare Materials. 5 (3), 326-333 (2016).
  36. Miyawaki, O., Omote, C., Matsuhira, K. Thermodynamic analysis of sol-gel transition of gelatin in terms of water activity in various solutions. Biopolymers. 103 (12), 685-691 (2015).
  37. Shirahama, H., Lee, B. H., Tan, L. P., Cho, N. Precise tuning of facile one-pot Gelatin Methacryloyl (GelMA) synthesis. Science Reports. 6, 31036 (2016).
  38. Antonovaite, N., Beekmans, S. V., Hol, E. M., Wadman, W. J., Iannuzzi, D. Regional variations in stiffness in live mouse brain tissue determined by depth-controlled indentation mapping. Science Reports. 8 (1), 12517 (2018).
  39. Iwashita, M., et al. Comparative analysis of brain stiffness among amniotes using glyoxal fixation and atomic force microscopy. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 574619 (2020).
  40. Guimarães, C. F., Gasperini, L., Marques, A. P., Reis, R. L. The stiffness of living tissues and its implications for tissue engineering. Nature Reviews. 5, 351-370 (2010).
  41. Ye, W., et al. 3D printing of gelatin methacrylate-based nerve guidance conduits with multiple channels. Materials and Design. 192, 108757 (2020).
  42. Wu, Y., et al. The influence of the stiffness of GelMA substrate on the outgrowth of PC12 cells. Bioscience Reports. 39 (1), 1-9 (2019).
  43. Edgar, J. M., Robinson, M., Willerth, S. M. Fibrin hydrogels induce mixed dorsal/ventral spinal neuron identities during differentiation of human induced pluripotent stem cells. Acta Biomaterialia. 51, 237-245 (2017).
  44. Arulmoli, J., et al. Combination scaffolds of salmon fibrin, hyaluronic acid, and laminin for human neural stem cell and vascular tissue engineering. Acta Biomaterialia. 43, 122-138 (2016).
  45. Brenner, M. Role of GFAP in CNS Injuries. Neuroscience. Letters. 565, 7-13 (2014).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Biyom hendislikSay 173astrositler3D biyobaskbiyofabrikasyondoku m hendisli isinir dokusumerkezi sinir sistemi

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır