İmmünofloresan ile Memeli Hücrelerinde Nükleer Kanama ve DNA Sızıntısının Tespiti

Özet

Laminopati bozuklukları genellikle nükleer zarfta değişikliklere yol açar ve bu da nükleer kanama ve sızıntıya neden olabilir. Bu çalışma, memeli hücrelerinde nükleer yapıyı ve bütünlüğü değerlendirmek için bir araç sağlayan, çift sarmallı DNA (dsDNA) ile birlikte nükleer laminayı görselleştirmek için bir immünofloresan yöntemi sunmaktadır.

Özet

Nükleer lamina, laminler ve lamin ile ilişkili proteinlerden oluşan, nükleer zarın altında yatan bir filament ağıdır. Nükleer mimari, nükleer gözenek konumlandırma, gen ekspresyon düzenlemesi, kromatin organizasyonu, DNA replikasyonu ve DNA onarımında kritik roller oynar. Lamin proteinlerinin ekspresyonu veya translasyon sonrası işlenmesinde yer alan genlerdeki mutasyonlar, laminopatiler olarak bilinen genetik bozukluklara neden olur. Spesifik olarak, LMNA veya ZMPSTE24 genlerindeki mutasyonlar, tamamen işlenmiş lamin A'da bulunmayan farnezil ve metil gruplarını tutan tam olarak işlenmemiş lamin A formlarının birikmesine yol açabilir. Bu eksik işlenmiş lamin A proteinleri, olgun lamin A'nın bulunduğu nükleer lamina yerine iç nükleer zara lokalize olur. Yanlış lokalize lamin proteinleri, nükleer işlevi ve yapıyı derinden bozar ve genellikle nükleer kanamaya neden olur. Ciddi vakalarda, nükleer yırtılma meydana gelebilir, bu da bölümlere ayırma kaybına ve genomik DNA'nın sitozole sızmasına neden olabilir. Anormal nükleer yapı ve bölümlendirme kaybı, sabit hücreler üzerinde dolaylı immünofloresan (IF) ile tanımlanabilir. Bu çalışma, nükleer zarfı ve DNA'yı aynı anda görselleştirmek için bir lamin proteinine ve çift sarmallı DNA'ya (dsDNA) karşı spesifik antikorlar kullanan böyle bir yöntemi özetlemektedir. Bu yaklaşım, nükleer yapısal bütünlüğün ve nükleer DNA'nın sitozole potansiyel sızıntısının hızlı bir şekilde değerlendirilmesini sağlar.

Giriş

Nükleer lamina, nükleer zarın altında yatan ve lamin adı verilen proteinlerden oluşan bir filament ağıdır. Nükleer lamina, nükleer mimaride, nükleer gözeneklerin konumlandırılmasında, gen ekspresyonunun düzenlenmesinde, kromatin organizasyonunda, DNA replikasyonunda ve DNA onarımında önemli roller oynar ^1,2,3. Lamin proteinlerinin ekspresyonunda rol oynayan genlerdeki mutasyonlar laminopati adı verilen genetik bozukluklara yol açar³.

Restriktif dermopati (RD), ağırlıklı olarak ZMPSTE24 gen^4'te erken sonlandırma kodonları oluşturan ve metalloprotaz ZMPSTE24 yokluğuna yol açan bileşik heterozigot mutasyonların neden olduğu ciddi bir laminopati bozukluğudur. Bu laminopati intrauterin gelişme geriliği, sıkı, sert cilt, küçük boyutlu ağız, ince kıl ve kemik mineralizasyon kusurları ile karakterizedir¹. RD hastaları genellikle akciğer yetmezliği nedeniyle yaşamlarının ilk haftasını geçemezler¹. Atipik Hutchinson-Gilford Progeria Sendromu (AT-HGPS) ve Mandibuloakral displazi tip B (MAD-B) olarak bilinen diğer iki laminopati bozukluğu, azalmış ZMPSTE24 ekspresyonunu içerir ve azalmış yaşam süresi ile ilişkilidir ve erken yaşlanma bozukluklarıyla benzerlikler gösterir⁵. Bu laminopatilerde etkilenen ZMPSTE24 proteaz, nükleer laminanın kritik bir bileşeni olan lamin A'nın translasyon sonrası modifikasyonunda hayati öneme sahiptir. ZMPSTE24 eksikliği, prelamin A² olarak bilinen, eksik işlenmiş bir lamin A formunun birikmesine neden olur.

Şekil 1: Lamin A işlemi normal vs. RD hücreleri. Normal hücrelerde Lamin A işleme yolu (solda) ve RD'de değiştirilmiş lamin A işleme veya ZMPSTE eksikliği olan hücrelerde (sağda). Farnezil (Fa) ve metil (Me) grupları belirtilmiştir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 1'de görüldüğü gibi, normal lamin A işleminde, C-terminalinin yakınındaki bir sistein kalıntısına bir farnezil (lipid) grubu bağlanır, ardından üç C-terminal amino asidin ^3,6 proteolitik bölünmesi gelir. Sistein kalıntısı daha sonra metillenir. Bu iki modifikasyon, prelamin A'nın iç nükleer zar^2'ye hedeflenmesine izin verir. ZMPSTE24 daha sonra, son 15 C-terminal amino asidin, farnezil ve metil grupları ile birlikte, nükleer lamina ^6,7,8'e iletilen olgun Lamin A proteini üretmek için uzaklaştırıldığı bir bölünme reaksiyonu gerçekleştirir. RD, AT-HGPS ve MAD-B'de, ZMPSTE24 metalloproteinaz eksik olduğundan veya tam olarak işlevsel olmadığından işlemenin son adımı etkili bir şekilde gerçekleşmez ^8,9. Bu, kalıcı olarak farnesillenmiş ve metillenmiş olarak kalan prelamin A'nın birikmesine neden olur⁹. Bu son gruplar, prelamin A'nın, Şekil 1'de görüldüğü gibi, olgun lamin A'nın nihayetinde bulunması gereken nükleer laminaya lokalize olmak yerine iç nükleer membrana yapışmasına neden olur. Bu nedenle, ZMPSTE eksikliği, nükleer yapı^{10,11,12,13,14,15} ile birlikte çeşitli nükleer fonksiyonlar üzerinde derin etkilere sahiptir. Nükleer yapıdaki bu değişiklikler, DNA'nın sitozole sızmasına ve sitozolün çekirdeğe girmesine neden olabilen nükleer kanama ve hatta nükleer yırtılmayı içerebilir. Anormal şekilli çekirdekler, kusurlu prelamin A işleminin neden olduğu çok sayıda diğer fenotiple birlikte gerçekten de laminopati bozukluklarının ayırt edici bir özelliğidir^16,17. Nükleer laminadaki kusurlar, nükleoplazmada nükleer protein kalite kontrolünün ve DNA onarım proteinlerinin yanlış lokalizasyonu da dahil olmak üzere çok sayıda zararlı etkiye yol açar ve bu da nükleer fonksiyonda çok sayıda kusura neden olur¹⁸. Laminopati fenotiplerini iyileştirmeyi amaçlayan terapötik yaklaşımların geliştirilmesine yönelik araştırmaları kolaylaştırmak için laminopatilerin bu ayırt edici özelliklerini tanımlamaya ve izlemeye yardımcı olabilecek basit bir tekniğe sahip olmak önemlidir. Laminopatili fareler için, nükleer kanamanın ortadan kaldırılmasının, laminopati fenotiplerinin¹⁶ genelleştirilmiş eliminasyonu ile ilişkili olduğu gösterilmiştir. İnsan hücrelerinde nükleer bütünlüğün izlenmesine izin veren bir teknik, hastalık fenotiplerini ortadan kaldırmak veya önemli ölçüde iyileştirmek için potansiyel tedavilerin çalışmasını geliştirebilir.

Dolaylı immünofloresan (IF), ilgilenilen bir hedefi tespit etmek için hem birincil etiketlenmemiş bir antikor hem de birincil antikoru tanıyan florofor etiketli bir ikincil antikor kullanan hassas ve yaygın olarak kullanılan bir tekniktir¹⁹. IF yöntemleri, belirli hücre içi bileşenleri ve yapıları görselleştirmek için güçlü bir araç sağlayabilir. Birden fazla ikincil antikor molekülünün birincil antikor ile etkileşime girmesi ve bu da sinyalin¹⁹ amplifikasyonuna neden olması da mümkündür. Dolaylı IF, ikincil antikorlar, tür¹⁹ içinde korunan birincil antikorun Fc alanına karşı yükseltildiğinden, nispeten küçük bir ikincil antikor seti ile çoklu birincil antikorun saptanmasına da izin veren çok yönlü bir tekniktir.

Bu makale, sırasıyla DNA ve nükleer laminayı tespit etmek için çift sarmallı DNA (dsDNA) ve lamin B1'e karşı antikorlar kullanarak, ZMPSTE24 eksik hücrelerde nükleer kanama ve DNA sızıntısını değerlendirmek için dolaylı (IF) bir yöntemi açıklamaktadır. Bu yaklaşımın faydasını göstermek için, prosedür, ZMPSTE24 ifade eden bir HeLa hücre hattının yanı sıra, nakavt edilmiş ZMPSTE24 ekspresyonu olan bir HeLa hücre hattına uygulandı ve iki hücre hattının sonuçları karşılaştırıldı.

Protokol

Reaktiflerin ve kullanılan ekipmanın ayrıntıları Malzeme Tablosunda listelenmiştir.

1. Malzemelerin hazırlanması

1. Hücreleri lamellerin üzerine kaplamadan önce en az on adet 22 mm x 22 mm kare cam lamel ve forseps otoklavlayın.

2. Çözeltilerin hazırlanması

1. Takviye edilmiş ortam:% 10 fetal sığır serumu (FBS), 100 ünite / mL penisilin ve 100 μg / mL streptomisin ile 500 mL Dulbecco'nun Modifiye Eagle Medium'unu (DMEM) hazırlayın.
2. Antikor seyreltme tamponu (ADB): 2 g sığır serum albüminini (BSA) ve 1 g Balık jelatinini 80 mL 1x fosfat tamponlu salin (PBS) içinde çözün. BSA ve balık jelatini çözüldükten sonra PBS ile 100 mL'ye getirin.
3. 1x PBS-Tween (PBS-T): 500 mL PBS ve 0.5 mL Tween hazırlayın. Tween çözeltiye kolayca karışana kadar 37 ° C'lik bir su banyosuna koyun.

3. İstenilen hücrelerin büyütülmesi

NOT: HeLa hücreleri bu protokolde bir T75 şişesi içinde birleşecek şekilde büyütüldü.

1. Altı lamel üzerine %70 etanol püskürtün ve tüy bırakmayan bir mendil üzerinde kurumaya bırakın. Lamelleri, her oyuk için bir lamel olacak şekilde forseps kullanarak steril 6 oyuklu bir plakaya yerleştirin.
2. 6 oyuklu plakadaki her bir oyuğa 2 mL takviye edilmiş DMEM ekleyin.
3. Hücrelerden ortamı aspire edin ve şişeye 15 mL PBS ekleyerek, hafifçe döndürerek hücreleri yıkayın. PBS'yi aspire edin ve 2 mL tripsin-EDTA (tripsin) ekleyin.
   1. Hücreleri tripsin ile kaplayın ve şişelerin şişeden ayrılmasını sağlamak için şişeyi 2 dakika boyunca 37 °C ve% 5 CO₂ nemlendirilmiş inkübatöre geri yerleştirin.
4. Tripsinli hücreleri toplamak için şişeye 8 mL takviye edilmiş DMEM ekleyin. Topaklanan hücreleri ayırmak için birkaç kez yukarı ve aşağı pipetleyin. Hücre süspansiyonunu şişede toplayın ve 15 mL'lik bir polistiren tüpe yerleştirin.
5. Bir hemositometre kullanarak hücreleri sayın.
6. 500.000 hücreyi, 6 oyuklu plakadaki lamellerin her birine doğrudan damla damla ekleyin. Nemlendirilmiş bir inkübatörde hücrelerin gece boyunca 37 ° C'de ve% 5 CO_2'de büyümesine izin verin.

4. Hücre fiksasyonu ve geçirgenliği

1. %4 formaldehit çözeltisini kullanmadan önce taze olarak hazırlayın: 18 mL PBS'ye 2 mL %37,5 formaldehit çözeltisi ekleyin. İyice karıştırın.
2. Kullanmadan önce geçirgenlik solüsyonunu taze olarak hazırlayın: 20 mL PBS'ye 100 μL Triton-X ekleyin. Triton-X çözelti içinde eriyene kadar 37 ° C'lik bir su banyosunda birkaç dakika inkübe edilmesine izin verin. İyice karıştırın.
3. Medyayı plakanın kuyularında aspire edin. Hücreleri 2 mL PBS ile bir kez yıkayın. Tüm PBS'yi kuyulardan aspire edin.
4. Her kuyucuğa 2 mL% 4 formaldehit çözeltisi ekleyin. Oda sıcaklığında (RT) 10 dakika bekletin. Kuyucuklardan% 4 formaldehiti tamamen aspire edin.
5. Hücreleri 2 mL PBS ile 3 kez yıkayın. Her yıkamadan sonra PBS'yi kuyulardan tamamen çıkarın.
6. Her kuyucuğa 2 mL geçirgenlik çözeltisi ekleyin. RT'de 10 dakika bekletin. Tamamen aspire etme solüsyonu.
7. Hücreleri 2 mL PBS ile 3 kez yıkayın. İlk iki yıkamadan sonra PBS'yi tamamen aspire edin, üçüncü yıkamadan sonra PBS'yi kuyucuklarda bırakın.
   NOT: Hücreler, bu adımdan sonra birkaç hafta boyunca son PBS yıkamasında 4 ° C'de saklanabilir, bu da sıvı buharlaşmasını önlemek için plakanın parafin film ile kapatıldığından emin olur. Prosedüre devam edilebiliyorsa, bu adım atlanabilir.

5. İmmünofloresan boyama

1. Tüm PBS'yi kuyulardan çıkarın. Her oyuğa 2 mL ADB ekleyerek hücreleri bloke edin ve RT'de inkübe edin, 30 dakika boyunca sallayın.
2. 30 dakikalık bloke süresinin sonuna doğru, ADB'de birincil antikor seyreltmesini karıştırın (hem Lamin B1 hem de dsDNA antikorları için 1: 1.000 seyreltme, Tablo 1). Her lamel için 75 μL gereklidir, bu nedenle altı lamel için 600 μL ADB, 0.6 μL Lamin B primer antikoru ve 0.6 μL dsDNA antikoru karıştırılmalıdır. İyice girdap.
3. ADB'yi kuyulardan çıkarın. Düz bir yüzeyde, işlenmekte olan tüm lamelleri yerleştirmek için yeterince büyük bir parafin filmi parçası bantlayın.
4. Her lamel için, parafin filmin üzerine 75 μL birincil antikor seyreltmesi ekleyin ve ADB'de kabarcık pipetlenmediğinden emin olun. Ardından, lamelleri hücre tarafı aşağı bakacak şekilde forseps kullanarak ADB damlacığının üzerine yerleştirin.
5. Kuluçka lamellerini kuyu plakası kapağı ile örtün ve RT'de 1 saat inkübe edilmesine izin verin.
6. Lamelleri forseps kullanarak parafin filminden çıkarın ve lamelleri, hücre tarafı yukarı bakacak şekilde 6 oyuklu plakaya geri yerleştirin.
7. Lamelleri 2 mL PBS-T ile 3 kez yıkayın, her seferinde 3-5 dakika sallayın. Her yıkamadan sonra tüm PBS-T'yi kuyulardan çıkarın.
8. Son yıkama sırasında, ikincil antikor seyreltmesini hazırlayın (her iki ilgili ikincil antikor için 1: 1.000, Tablo 1). Her lamel için 75 μL gereklidir, bu nedenle altı lamel için 600 μL ADB ve 0.6 μL ikincil Alexa Fluor etiketli antikor karıştırılmalıdır. İyice girdap. İkincil antikor seyreltmesini mümkün olduğunca ışıktan koruyun.

Antikor			Kaynak	Şirket	Referans
dsDNA İşaretleyici Antikoru (HYB331-01)			Fare monoklonal	Santa Cruz	SC-58749 Serisi
Keçi Anti-Fare IgG (H + L) Yüksek Çapraz Adsorbe Edilmiş İkincil Antikor, Alexa Fluor Plus 488			Keçi	ThermoFisher (Termo Balıkçı)	A32723 Serisi
Keçi Anti-Fare IgG (H + L) Yüksek Çapraz Adsorbe Edilmiş İkincil Antikor, Alexa Fluor Plus 405			Keçi	Canlandırıcı	A31553 Serisi
Lamin B1 Poliklonal Antikor			Tavşan	Protein teknolojisi	12987-1-AP
Keçi Anti-Tavşan IgG (H + L) Yüksek Çapraz Adsorbe Edilmiş İkincil Antikor, Alexa Fluor 594			Keçi	Canlandırıcı	A11037 Serisi

Tablo 1: Antikorlar. Bu protokolde kullanılan tüm antikorların listesi.

9. Tüm PBS-T'yi son yıkamadan çıkarın. İkincil antikor seyreltmesindeki lamelleri, 5. adımda olduğu gibi, RT'de 30 dakika boyunca parafin film üzerinde inkübe edin. Bu adım ve kalan tüm adımlar için ışıktan koruyun. Işığı korumak için küçük bir kutu kullanılabilir. Kuyucuklara çözelti eklemek veya kuyulardan çözelti çıkarmak için gerektiğinde hızlı bir şekilde çalıştığınızdan emin olun.
10. Forseps kullanarak lamelleri parafin filmden çıkarın ve lamelleri hücre tarafı yukarı bakacak şekilde 6 oyuklu plakaya geri yerleştirin.
11. Lamelleri 2 mL PBS-T ile 3 kez yıkayın. Her yıkamadan sonra tüm PBS-T'yi kuyulardan çıkarın.
12. Slaytları bir etanol serisi ile kurutun (%70, %90, %100). Her kuyucuğa 2 mL %70 etanol ekleyerek başlayın. 1-2 dakika bekletin ve tüm etanolü kuyulardan çıkarın. Kalan etanol yüzdeleri ile tekrarlayın.
13. Lamelleri forseps kullanarak kuyulardan çıkarın ve tüy bırakmayan bir mendil üzerinde ışıktan koruyarak kurumaya bırakın.
14. Lamelin hücre tarafı aşağı bakacak şekilde, lamel başına 20 μL montaj ortamı kullanarak cam mikroskop slaytlarına monte edin. Işıktan koruyarak gece boyunca kurumaya bırakın.

6. Görüntü edinme

1. Görüntülemeden önce, lamellerin kenarlarını ince bir tabaka şeffaf oje ile kaplayın (herhangi bir marka veya tür yeterli olacaktır). Işıktan koruyarak kurumaya bırakın.
   NOT: Görüntü almak için mikroskop kullanma talimatları, kullanılan mikroskoba bağlı olarak değişecektir. Burada kullanılan mikroskop üzerindeki kameranın çözünürlüğü 1280 x 960 pikseldir. Benzer veya daha iyi çözünürlük yeterli olacaktır.
2. Mikroskop sahnesine bir slayt koymadan önce, dosya kaydetme ayarlarının yapılması gerekir. Mikroskobu açın ve bir USB sürücü takın. Mikroskop ayarlarında kaydetme ayarlarını yapın ve tüm kanalların (GFP ve RFP) ayrı ayrı kaydedileceğinden ve görüntülerin USB sürücüsünde doğru konuma gittiğinden emin olun.
   NOT: USB sürücüsünde bir klasör oluşturun ve ileride başvurmak üzere her lamel kendi adını verin.
3. Görüntülemeden önce, %70 etanol ile tüy bırakmayan bir mendil püskürtün ve slaytların arkasını nazikçe temizleyin. Kızakların önünü nazikçe temizleyin ve çok az basınç uygulandığından emin olun.
4. Lameller aşağı bakacak şekilde mikroskobun üzerine temiz bir slayt yerleştirin. Işık kalkanı kutusuyla örtün.
5. 40x objektif lens kullanarak, mikroskop ekranında çekirdekleri bulmak için uygun kanalı (burada kullanılan lamin B1 antikoru için RFP) kullanın. Başlamak için ışık yoğunluğunu yaklaşık %50'ye ayarlayın.
6. Aşırı doygun alanları kontrol etmek için Color Off (Rengi Kapalı) seçeneğini belirleyin ve lamel boyunca hiçbir alanın siyah beyaz ayarında kırmızı sinyal olmadığından emin olun. Çok fazla kırmızı sinyal varsa, minimum kırmızı sinyal gösterilene kadar ışık yoğunluğunu düşürün.
   NOT: Kırmızı sinyal aşırı doygunluğu gösterir. Çekirdekler zar zor görünüyorsa, aşırı doygunluk olmadan uygun bir yoğunluk elde edilene kadar yoğunluğu %10'luk artışlarla artırın.
7. Aşırı doygun olmadıklarından emin olmak için diğer tüm lamelleri aynı yoğunlukta kontrol edin. Yukarıdakiyle aynı işlemi kullanarak diğer kanaldaki tüm lamelleri kontrol edin (burada kullanılan dsDNA antikoru için GFP).
8. Her kanal için ışık yoğunluklarını kaydedin. Görüntüleme işlemi boyunca her kanal için tüm ışık yoğunluklarının sabit tutulduğundan emin olun.
9. Her lamel ayrı ayrı görüntüleyin. İlk kanalla başlayın, çekirdekleri odaklayın ve görüntüyü yakalayın.
10. Kanalları dikkatlice değiştirin ve hücreleri tekrar odak noktasına getirin. Odaklanıldığında görüntüyü yakalayın.
11. Gerekli kanallarda (GFP ve RFP) görüntüleri yakaladıktan sonra, birleştirilen görüntüyü gözlemlemek ve görüntüyü çekerken slaydın hareket etmediğinden emin olmak için Kaplama'yı seçin. Kanallar üst üste gelmezse, görüntüler aynı hizaya gelene kadar gerekli kanalı yeniden yapın.
12. Flash sürücü simgesine tıklayarak görüntüyü kaydedin. Görüntülemeye devam etmek için lamel üzerinde farklı bir yere gidin.
    NOT: Aynı bölgenin tekrar tekrar yakalanmasını önlemek için her seferinde lamel üzerinde farklı bir alanın görüntülendiğinden emin olun. Görüntülemeye lamel sol üst köşesinden başlamanız ve çoğaltma olmadan tam kapsama sağlamak için "S" şeklinde hareket etmeniz önerilir.

7. Veri analizi

1. Bu yöntem ile elde edilen veriler görseldir. DNA sızıntısı veya nükleer kanama belirtileri için görüntüleri inceleyin. Kanama ve sızıntı örnekleri temsili sonuçlar bölümünde gösterilmektedir.

Sonuçlar

Bu çalışma, çift sarmallı DNA (dsDNA) ile birlikte nükleer laminayı görselleştirmek için bir IF yöntemi sunmaktadır. IF gerçekleştirildikten sonra, yakalanan görüntüler nükleer kanama ve DNA sızıntısı belirtileri açısından incelenebilir.

Şekil 2: He...

Tartışmalar

Sunulan protokol, en önemlisi sabit hücrelerin birincil ve ikincil antikorlarla tedavi edilmesi olan birkaç kritik adım içerir. İlgilenilen hedefe karşı kaliteli bir primer antikorun, kullanılan mikroskop aralığında floroforlu doğru karşılık gelen bir sekonder antikor ile kullanılmasının sağlanması optimal sonuçlar verecektir¹⁹. Antikorun kalitesi, bu tekniğin sonuçlarını büyük ölçüde etkileyebilir, çünkü hatalı antikorlar spesif...

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
22 mm Square Glass Coverslips	Propper Manufacturing Company	M8710	Any size or shape can be used as long as they can be fixed to a standard microscope slide.
36.5% Formaldehyde	Sigma Aldrich	F8775	Fixation Reagent.
75 cm 2 Flasks	Corning	430725U	For cell culture.
Bovine Serum Albinum (BSA)	Fisher Scientific	9048-46-8	Antibody dilution buffer.
DMEM with 1 g/L glucose, L-glutamine & sodium pyruvate	Corning	10-014-CV	For cell culture.
Ethanol (200 Proof)	Decon Laboratories	2701	For dehydration of samples before mounting, diluted to make multiple concentrations.
EVOS FL Digital Inverted Fluorescence Microscope	Fisher Scientific	12-563-460	Imaging.
Fish Gelatin	Sigma Aldrich	G7041	Antibody dilution buffer.
Fluoromount-G	Southern Biotech	0100-01	Mounting medium to prevent photobleaching.
Parafilm (4 in)	Fisher Scientific	13-374-12	Any size can be substituted, as long as the coverslips being used can fit.
Penicillin-Streptomycin	Gibco	15-140-122	For cell culture.
Phosphate Buffered Saline (PBS)	N/A	N/A	Made and sterilized in the lab for tissue culture and solutions.
Premium Fetal Bovine Serum (FBS)	Atlanta Biologicals	S11150	For cell culture.
Superfrost Premium Microscope Slides	Fisher Scientific	12-544-7	Any standard microscope slides can be used.
Tissue Culture Treated 6-well Flat Bottom Plates	Falcon	353046	For cell culture.
TritonX-100	Thermofisher Scientific	A16046.AP	For washing.
Trypsin-EDTA (0.5%)	Gibco	15-400-054	For cell culture.
Tween 20	Fisher Scientific	9005-64-5	Cell Permeation reagent.