Bu çalışma Bölümü Savunma-Prostat Kanseri Araştırma Programı (W81XWH-12-1-0124) fon tarafından desteklenen, Ulusal Kanser Enstitüsü, ve Robert McCooey Genitoüriner Onkoloji Araştırma Fonundan U54CA143876. Biz HUVECler sağlamak için VE-kaderin antikorları sağlamak için Dr Annarita Lorenzo (Patoloji Anabilim Dalı) teşekkür etmek istiyorum, ve Dr Marco Seandel (Cerrahisi Anabilim Dalı) olacaktır.

Gözlem CTC-endotel Etkileşimleri Lam 1. Ekimi HUVEC&#39;ler <ol><li> Doku kültürü kaputu altında, ilk olarak, PBS ile 1 mm kanal genişliğini mikroslayd durulayın. Yavaşça kat 50 ug / ml fibronektin (PBS içinde çözülmüş) bir 1 ml&#39;lik luer-lock şırınga kullanılarak 200 ul Mikroslayd. </li><li> Kapak ile Mikroslayd örtün ve 30 dakika boyunca doku kültürü kaputu içine tutun. Mikroslayd içindeki sıvının yavaş dağıtım kanalında kabarcık oluşumunu engeller. </li><li> Ilık (37 ° C) HUVEC büyüme ortamında 200 ul serpmek (M199 ortamı, 1 M HEPES,% 20 FBS, 5 mg / ml heparin, 100 ug / ml endotelyal hücre büyüme faktörü ve L-glutamin) Mikroslayd üzerinden ve boyunca inkübe Oda sıcaklığında 20 dakika. Perfüzyon sırasında HUVEC hücre süspansiyonu hazırlamak. </li><li> PBS ile durulayın HUVECler ve oda sıcaklığında 1-2 dakika boyunca% 0.05 tripsin-EDTA ekleyin. 5 dakika boyunca 180 x g &#39;de 2 ml büyüme ortamı içinde santrifüj HUVECler. </li><li> Bir neuba kullanarak hücre konsantrasyonunu ölçünuer hemositometre ve büyüme ortamı ul 10 7 HUVEC hücre/100 hazırlamak. Daha sonra, dikkatli bir şekilde 200 ul pipet kullanarak Mikroslayd girişinden orta çıkarın. </li><li> Göz seviyesine mikroslayd ve 1 ml luer-lock şırınga kullanılarak getirmek, yavaşça kanal içine HUVEC&#39;lerin hazırlanmış konsantrasyonu 200 ul serpmek. Dikkat kabarcık oluşumunu önlemek için bu adım gereklidir. Kabarcıklar görünüyorsa, kabarcıklar çıkış kanalını girmek kadar biraz daha uzun bir süre için sızdırılmasını tutun. </li><li> Giriş ve çıkış Mikroslayd hem HUVEC ortamının eşit bir hacmi (~ 80 ul) koyun. Bu, her iki yönde hücrelerinin akışını engeller. </li><li> Slayt örtün ve 1.5 saat için inkübatör (37 ° C) tutun. </li></ol> Bir mikro Gecelik HUVEC Kültür Akış Odası Meclis 2.. Hazırlanması <ol><li> 15 mi boyunca inkübatör içinde bir steril 20 ml şırınga, dişi ve erkek Luer bağlantıları, boru ve bir şırınga pompası yerleştirinn. </li><li> Minimum ölü hacmi için, 0.04 inç iç çaplı boru kullanın. Daha küçük boru çapı baloncuk oluşumunu engeller. </li><li> Ilık (37 ° C) HUVEC ortamı (12 mi) ile 20 ml şırınga doldurun. Şırınga üzerine konnektörleri ile tüp takın. Kabarcıklarını çıkarın. Mikroslayd Bu montaj bağlayın. </li><li> Tamamen HUVEC medya ile Mikroslayd giriş doldurun. Yanındaki mikroslayd için konnektöre bağlı doldurulmuş 20 ml şırınga getirin. Yavaşça mikroslayd için bağlacı takın. </li><li> Kuvöz içine set-up getirmek ve 10 ul / dk kesme hızında ayarlanmış şırınga pompası, bağlanın. 37 ° C&#39;de inkübatör hücreleri O / N bırak </li><li> Bir sonraki gün, Mikroslayd girişine bağlı soketi kaldırarak kurulumu sökülmesi. </li><li> EC&#39;lere on E-selektin ekspresyonunu için 4 ml medyada ng / ml 10 IL-1β içeren yeni büyüme ortamı hazırlamak. 10 ml şırınga içinde ortam aspire. T Kaldıro Mikroslayd girişinden ortam ve slayt için şırınga bağlayın. </li><li> Kuluçka makinesi içinde, 4 saat boyunca 10 ul / dak kesme oranında şırınga pompası ayarlayın. </li></ol> 3. Anti-PSMA&#39;nm Hazırlama (J591-488) Etiketli Prostat Kanseri Hücreleri <ol><li> HUVEC IL-1β İnkübasyon sırasında, anti-J591 PSMA-Alexa488 etiketli PCa hücrelerini hazırlamak. 1 dakika boyunca MDA hücreler% 0.05 tripsin-EDTA ekleyin. Bu, hücre yüzeyi üzerinde mevcut olan peptidi etkileyebilir gibi uzun süreler boyunca tripsin üzere hücrelerin maruz bırakılmamalıdır. Enzim hücre ayrışma reaktif yerine de tripsin kullanılabilir. 5 dakika boyunca 200 x g&#39;de santrifüj. </li><li> 1 ml H / H tamponu (Hanks dengeli tuz solution/0.1% HSA/10 mM HEPES / 1 mM CaCI2) içinde MDA hücre pelletini. Karanlık bir yerde, oda sıcaklığında 30 dakika boyunca 20 ug / ml &#39;de anti-J591 PSMA-Alexa488 antikor ekleyin. Inkübasyon sırasında hücreleri tekrar süspansiyon. </li><li> 30 dakika sonra, 5 dakika boyunca 800 x g&#39;de santrifüj hücre çözümü. Aspihızı ve 1 ml H / H tampon içinde pelletini. Etiketlenmiş MDA hücre sayımı ve 1x10 6 hücre / ml nihai konsantrasyona getirin. J591-488 etiketli MDA hücreleri ile 5 ml şırınga doldurun ve kabarcıkları giderin. </li></ol> 4. PCa&#39;nın Hastalarda Anti-PSMA&#39;ya (J591-488) Etiketli KTC Zenginleştir hazırlanması <ol><li> (Sodyum sitrat ihtiva eder), bir mavi kapak tüp içinde prostat kanseri hastalarından alınan 7.5 ml kan toplamak. Yavaşça% 0.1 BSA / 1 mM EDTA / PBS içinde kan 1:01 seyreltin. </li><li> 5.3 ml Ficoll-Paque Plus 50 ml konik bir tüp içinde ekleyin. Katman Ficoll Paque üstünde kan seyreltilmiştir. 30 dakika boyunca 400 x g&#39;de santrifüj. </li><li> Ön kaplama, tüm tüpler veya uçlarına% 2 FBS/RPMI-1640 / 1 mM CaCl 2/4 mM MgCI2 yüzeylerine kapalı zaman eğrileri non-spesifik bağlanma önlemek için (R / S tamponu) ile kapalı zaman eğrileri ile temas. Kapalı zaman eğrileri ile temas eden ortam ve tampon içinde, 4 ° C sıcaklığı muhafaza edin. </li><li> Periferal kan tek çekirdekli hücre (PBMC) fraksiyonu toplamak30 ml R / S tampon ihtiva eden bir 50-ml konik bir tüp içinde arabirimden CTCS ihtiva etmektedir. 8 dakika boyunca 400 x g&#39;de santrifüj. </li><li> Pelet yeniden süspanse edin ve 8 dakika boyunca 400 x g&#39;de R / S tampon maddesi içinde tekrar yıkayın. Santrifüj işleminden sonra H / H tampon içinde pelletini. Karanlık bir yerde, oda sıcaklığında 30 dakika boyunca 20 ug / ml &#39;de anti-J591 PSMA-488 antikor ekleyin. </li><li> 30 dakika sonra, 5 dakika boyunca 800 x g&#39;de J591-488 etiketli CTCS içeren PBMC santrifüj. H / H tamponunda süspanse. Numune ile bir 1 ml şırınga (R / S tampon maddesi ile önceden kaplanmış) doldurun. </li></ol> 5. Mikroskop hazırlanması, Şırınga pompası ve Akış Odası Meclis <ol><li> Ters mikroskop açın ve 10X objektif de Kohler aydınlatma ayarlayın. Mikroskop örnek aşaması ile aynı seviyede şırınga pompası getirin ve 1 din / cm 2 kesme stresi (~ 10 ul / dak) olarak ayarlayın. </li><li> Zeiss Axiovision yazılımını açın. Bilgisayar ekranında hedefi seçin. Yeni Oluşturyazılım araçları seçeneği altında klasör. </li><li> Axiovision akıllı deneyler seçeneğini açın ve 30 dakika boyunca kısa 30 sn video kayıt ayarlarını. </li><li> Canlı floresan video, görüntü seçenekleri-12 msn Pozlama, 2 x 2 bin, 5 Kazancı ayarlayın. Bu parametreler Zeiss MRM kamera ile video kare oranı (~ saniyede 23 kare) yakın videoları ulaşmada yardımcı olur. </li><li> , Bilgisayar ekranında 10 X objektif de akış kanalı tam genişliğini görselleştirmek bir C-mount adaptörü (0.63 xf/60 mm Arayüz) kullanın. </li><li> Cıvalı lamba açın. </li><li> Şırınga pompa üzerine şırınga ve hücreleri ihtiva eden konektörü yerleştirin. </li><li> Bring IL-1β inkübatör HUVECler uyarılır. HUVECler içeren Mikroslayd doldurulmuş giriş kanalı için bağlayıcı takın. </li><li> Boru bağlı bir bağlantı parçası ile çıkış kanalı bağlayın. Yoluyla akışını toplamak için bir çanak ya da 15 ml konik bir tüp içine boru koyun. </li><li> Infusi başlayın10 ul / dk &#39;da Mikroslayd aracılığıyla. Endotel hücreleri ve MDA etiketli hücreler veya epifloresans mikroskopta 488-nm filtre altında hastalardan türetilen etiketli kapalı zaman eğrileri arasındaki etkileşimi dikkate alınmalıdır. </li><li> 30 sn kısa videolar gibi deney kaydetmeye başlayın. Oynatma analiz sırasında, haddeleme hızını ölçmek. Haddeleme hız zamanla hücreler tarafından kat edilen mesafenin bölünmesiyle ölçülür. </li></ol> Mikroslayd 6. Immün <ol><li> 10 dakika boyunca, IL-1β uyarımlı HUVEC hücreleri MDA perfüze sonra Mikroslayd giriş ve çıkışından Ortamı çıkarın. </li><li> 200 ul ucunu kullanarak, 5 dakika boyunca Mikroslayd girişine kalsiyum ve magnezyum ihtiva eden ılık (37 ° C) PBS koydu. Bankta bir pervane gibi onun kapağını kullanarak mikroslayd eğin. İmmunosteyn sırasında tüm inkubasyon için bir eğik pozisyonda mikroslayd tutun. </li><li> Girişine sıcak% 2 formaldehit delinmesiyle HUVECler Fix </li><li&gt; oda sıcaklığında 20 dakika boyunca inkübe edin. 5 dakika her biri için iki kez PBS ile yıkayın. </li><li> Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca PBS içerisinde% 5 BSA içinde triton-X-100 (% 0.1) ilave edin. </li><li> 5 dakika her biri için iki kez PBS ile yıkayın. 30 dakika boyunca PBS içerisinde% 5 BSA ile bloke edin. </li><li> Birincil antikor, keçi anti-inkübe VE-cadherin (1:100),% 2.5 BSA O / N 4 ° C&#39;de </li><li> Ertesi gün, her biri 5 dakika boyunca PBS ile iki kere yıkayın. 45 dakika boyunca ikinci eşek anti-keçi 647 antikor ekleyin. 5 dakika her biri için iki kez PBS ile yıkayın. </li><li> 1 saat boyunca insanlaştırılmış J591-Alexa488 konjüge edilmiş antikor ile oda sıcaklığında inkübe edin. </li><li> 5 dakika her biri için iki kez PBS ile yıkayın. 5 dakika için DAPI ekleyin. 5 dakika için damıtılmış su ile yıkayın. </li><li> PBS ekleyin (veya uzun süreli depolama için Mowiol). Konfokal mikroskop altında Mikroslayd görselleştirmek. </li></ol>

<ol>
	<li>Dimitroff, C. J., Lechpammer, M., Long-Woodward, D., Kutok, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rolling+of+human+bone-metastatic+prostate+tumor+cells+on+human+bone+marrow+endothelium+under+shear+flow+is+mediated+by+E-selectin.">Rolling of human bone-metastatic prostate tumor cells on human bone marrow endothelium under shear flow is mediated by E-selectin.</a> Cancer Res. 64, 5261-5269 (2004).</li><li>Barthel, S. R., Gavino, J. D., Descheny, L., Dimitroff, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeting+selectins+and+selectin+ligands+in+inflammation+and+cancer.">Targeting selectins and selectin ligands in inflammation and cancer.</a> Expert Opin. Ther. Targets. 11, 1473-1491 (2007).</li><li>Konstantopoulos, K., Thomas, S. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cancer+cells+in+transit:+the+vascular+interactions+of+tumor+cells.">Cancer cells in transit: the vascular interactions of tumor cells.</a> Annu. Rev. Biomed. Eng. 11, 177-202 (2009).</li><li>Nagrath, S., Sequist, L. V., Maheswaran, S., Bell, D. W., Irimia, D., Ulkus, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+rare+circulating+tumour+cells+in+cancer+patients+by+microchip+technology.">Isolation of rare circulating tumour cells in cancer patients by microchip technology.</a> Nature. 450 (7173), 1235-1239 (2007).</li><li>Mannweiler, S., Amersdorfer, P., Trajanoski, S., Terrett, J. A., King, D., Mehes, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterogeneity+of+prostate-specific+membrane+antigen+(PSMA)+expression+in+prostate+carcinoma+with+distant+metastasis.">Heterogeneity of prostate-specific membrane antigen (PSMA) expression in prostate carcinoma with distant metastasis.</a> Pathol. Oncol. Res. 15 (2), 167-172 (2009).</li><li>Tagawa, S. T., Milowsky, M. I., Morris, M. J., Vallabhajosula, S., Christos, P. J., Akhtar, N. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phase+II+study+of+lutetium-177+labeled+anti-prostate-specific+membrane+antigen+(PSMA)+monoclonal+antibody+J591+for+metastatic+castration-resistant+prostate+cancer.">Phase II study of lutetium-177 labeled anti-prostate-specific membrane antigen (PSMA) monoclonal antibody J591 for metastatic castration-resistant prostate cancer.</a> Cancer Res. , (2013).</li><li>Ganguly, A., Zhang, H., Sharma, R., Parsons, S., Patel, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+human+umbilical+vein+endothelial+cells+and+their+use+in+the+study+of+neutrophil+transmigration+under+flow+conditions.">Isolation of human umbilical vein endothelial cells and their use in the study of neutrophil transmigration under flow conditions.</a> J. Vis. Exp. (66), 10-3791 (2012).</li><li>Moss, M. A., Zimmer, S., Anderson, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+metastatic+potential+in+the+adhesion+of+human+breast+cancer+cells+to+endothelial+monolayers.">Role of metastatic potential in the adhesion of human breast cancer cells to endothelial monolayers.</a> Anticancer Res. 20, 1425-1433 (2000).</li><li>Wiese, G., Barthel, S. R., Dimitroff, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+physiologic+E-selectin-mediated+leukocyte+rolling+on+microvascular+endothelium.">Analysis of physiologic E-selectin-mediated leukocyte rolling on microvascular endothelium.</a> J Vis Exp. 24, (2009).</li><li>Gebauer, F., Wicklein, D., Stubke, K., Nehmann, N., Schmidt, A., Salamon, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selectin+binding+is+essential+for+peritoneal+carcinomatosis+in+a+xenograft+model+of+human+pancreatic+adenocarcinoma+in+pfp--/rag2--+mice.">Selectin binding is essential for peritoneal carcinomatosis in a xenograft model of human pancreatic adenocarcinoma in pfp--/rag2-- mice.</a> Gut. 62 (5), 741-750 (2013).</li><li>Giavazzi, R., Foppolo, M., Dossi, R., Remuzzi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rolling+and+adhesion+of+human+tumor+cells+on+vascular+endothelium+under+physiological+flow+conditions.">Rolling and adhesion of human tumor cells on vascular endothelium under physiological flow conditions.</a> J. Clin. Invest. 92 (6), 3038-3044 (1993).</li><li>Remuzzi, A., Giavazzi, R., Dejana, E., Corada, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adhesion+of+tumor+cells+under+flow.">Adhesion of tumor cells under flow.</a> Adhesion Protein Protocols. 96, 153-157 (1999).</li><li>Liu, H., Moy, P., Kim, S., Xia, Y., Rajasekaran, A., Navarro, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monoclonal+antibodies+to+the+extracellular+domain+of+prostate-specific+membrane+antigen+also+react+with+tumor+vascular+endothelium.">Monoclonal antibodies to the extracellular domain of prostate-specific membrane antigen also react with tumor vascular endothelium.</a> Cancer Res. 57 (17), 3629-3634 (1997).</li><li>Jung, B., Obinata, H., Galvani, S., Mendelson, K., Ding, B. S., Skoura, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Flow-regulated+endothelial+S1P+receptor-1+signaling+sustains+vascular+development.">Flow-regulated endothelial S1P receptor-1 signaling sustains vascular development.</a> Dev. Cell. 23 (3), 600-610 (2012).</li><li>Yin, X., Rana, K., Ponmudi, V., King, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Knockdown+of+fucosyltransferase+III+disrupts+the+adhesion+of+circulating+cancer+cells+to+E-selectin+without+affecting+hematopoietic+cell+adhesion.">Knockdown of fucosyltransferase III disrupts the adhesion of circulating cancer cells to E-selectin without affecting hematopoietic cell adhesion.</a> Carbohydr. Res. 345 (16), 2334-2342 (2010).</li><li>Carman, C. V., Springer, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+transmigratory+cup+in+leukocyte+diapedesis+both+through+individual+vascular+endothelial+cells+and+between+them.">A transmigratory cup in leukocyte diapedesis both through individual vascular endothelial cells and between them.</a> J Cell Bio. 167 (2), 377-388 (2004).</li></ol>

Dr Bander Bu makalede kullanılan J591 antikor için Cornell Araştırma Vakfı (&quot;CRF&quot;) atanan patentleri mucididir. Dr Bander için bir danışman ve BZL Biologics, patentler daha fazla araştırma ve geliştirme için KBY tarafından lisanslı olduğu şirketin hisselerini sahibi.

Nedeniyle kan hücreleri arasında kapalı zaman eğrileri düşük sayıda, bu hücre popülasyonu olarak saf CTCS izole etmek güçtür. CTC / EC etkileşimleri çalışmak için, kapalı zaman eğrileri nadir ve saf olmayan nüfus iki büyük zorluklar teşkil etmektedir: Kan hücrelerinin arasında kapalı zaman eğrileri a) belirlenmesi; b) CTC / EC etkileşimlerinin Gözlem. Kan hücreleri arasında prostat CTCS belirlenmesi ilk sınırlamasını aşmak içi...

Metastaz az anlaşılmaktadır karmaşık çok-adımlı bir işlemdir. E-selectin/selectin ligand ekseni vasküler endotel ve kanser hücrelerinin 1,2 arasında birinci yapışkan etkileşimi teşvik ederek tümör metastazında önemli bir rol oynadığı gösterilmiştir. Farklı E-selektin ligand (lar), tümör hücreleri tarafından eksprese 3 ise endotel (E)-selektin, aktive edilmiş endotel hücreleri tarafından eksprese edilen bir transmembran proteindir. Çok sayıda in vitro yaklaşımların başarılı bir tümör hücrelerinin ve endotel hücreleri arasındaki E-selectin/selectin ligand etkileşimlerini (EC) 1 Modele kullanılmıştır. Bu etkileşimleri çalışmak için, farklı akış odası sistemleri, kan damar sistemini simüle etmek için istihdam edilmektedir. Akış odası montajları arasında, EC&#39;ler ile bağlantılı olarak paralel plaka akış bölmesi (PPFC) rutin olarak vivo kesme stresi koşulları simüle eden bir in vitro modeli olarak kullanılır. Bu bağlamdayöntemi, EC 35 mm çanak üzerinde yetiştirilen ve bir tek tabaka elde sonra, EC PPFC bağlı olan ve kayma gerilme tabanlı deneyleri yapılmaktadır. Bununla birlikte, PPFC ve mevcut sistem hasta ve EC&#39;ler türetilen tümör hücrelerinin (kapalı zaman eğrilerinin), dolaşımdaki arasında yapışma etkileşimleri incelemek için pek çok sınırlamalar mevcut temel olarak, kapalı zaman eğrilerinin kan hücrelerinin milyonlarca arasında dolaşan, primer tümörden döken hücre nadir nüfus, çünkü (1 CTC 9 kan hücreleri başına 10) 4. Bu nedenle, kültürlenmiş hücre çizgileri sınırsız kaynağı aksine, düşük CTC sayısı çalma analiz için etkileşimleri kaydetmek için uygun bir akış kanalı genişliği gerektiren, çok az ve nadir CTC / EC etkileşimleri yol açar. Hasta kapalı zaman eğrilerinin elde edilen saf olmayan bir nüfus olduğu ek olarak, bu nedenle tanımlama işareti özel olarak CTCS izlemek için gereklidir. Bu sorunu çözmek için, biz (PCA) CT prostat kanseri tespit etmek için yeni bir yöntem geliştirdiCs neredeyse tüm bu kapalı zaman eğrileri, kendi hücre yüzeyinde 5,6 prostat spesifik zar antijeni (PSMA) belirtisi göstermesi gerçeğinden yararlanarak. Bu raporda, biz sonunda metastaz mekanizmasını anlamak için, EC &#39;ile prostat CTC etkileşimleri çalışmak için yeni sistemin potansiyel yarar göstermek için, prostat kanseri hücre hattı MDA PCa2b (MDA) kullanılır. Metodoloji vivo vasküler sistemde 7-9 taklit çeşitli kesme bazlı deneyler için uygulanabilir. PKa CTC / EC etkileşimleri incelemek Bunun yanı sıra, akım odası sistemi kolayca periferal kan tek-çekirdekli hücreleri ya da analiz EC&#39;ler ile tümör hücrelerinin etkileşimleri için adapte edilebilir. Sökülmesi ve akış odasının Reassembling kolaylığı, bir mikroslayd III (0.1) (bundan sonra mikroslayd olarak anılacaktır), perfüzyon ve pr ikna etmek için farklı sitokinler ile ECS uyarıcı altında kültür ECS sağlarifadesini otein. Bunun yanı sıra, kültürlü EC, örneğin E-ve P-selektin, rekombinant proteinleri, tümör hücreleri ile Mikroslayd ve etkileşimler üzerine kaplanabilir laminar akış koşulları altında 10 gözlenebilir.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="744">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Microslide</td>
			<td style="width:192px;">Ibidi</td>
			<td style="width:119px;">80331</td>
			<td style="width:189px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Fibronectin</td>
			<td style="width:192px;">Millipore</td>
			<td style="width:119px;">FC010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Plastic tubing</td>
			<td style="width:192px;">Tygon</td>
			<td style="width:119px;">AAQ04103</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Male luer adapter</td>
			<td style="width:192px;">GlycoTech</td>
			<td style="width:119px;">31-001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Female luer adapter</td>
			<td style="width:192px;">GlycoTech</td>
			<td style="width:119px;">31-001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Syringe pump</td>
			<td style="width:192px;">Chemyx Inc</td>
			<td style="width:119px;">Fusion 100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Luer-lock syringe</td>
			<td style="width:192px;">BD Biosciences</td>
			<td style="width:119px;">309628</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">M199 medium</td>
			<td style="width:192px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">M7653</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Endothelial Mitogen</td>
			<td style="width:192px;">Biomedical Technologies</td>
			<td style="width:119px;">BT-203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">HBSS</td>
			<td style="width:192px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">H9269</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="44">
			<td height="44" style="height:44px;width:244px;">Anti-PSMA J591-488</td>
			<td style="width:192px;">Weill Cornell Medical College-Lab of Urologic Oncology</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Interleukin-1 beta</td>
			<td style="width:192px;">Peprotech</td>
			<td style="width:119px;">200-01B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Trypsin</td>
			<td style="width:192px;">Millipore</td>
			<td style="width:119px;">SM-2002-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Heparin</td>
			<td style="width:192px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">H-3149</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="44">
			<td height="44" style="height:44px;width:244px;">HUVECs</td>
			<td style="width:192px;">Weill Cornell Medical College-Department of Surgery</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>provided by Marco Seandel</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">VE-Cadherin</td>
			<td style="width:192px;">Santa Cruz</td>
			<td style="width:119px;">sc-5648</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">10x objective</td>
			<td style="width:192px;">Zeiss Plan Neofluar</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="26">
			<td height="26" style="height:26px;width:244px;">Enzyme free cell dissociation reagent</td>
			<td style="width:192px;">Millipore</td>
			<td style="width:119px;">S-004-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">RPMI-1640</td>
			<td style="width:192px;">Lonza</td>
			<td style="width:119px;">12-702-F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:244px;">Ficoll-paque plus</td>
			<td style="width:192px;">GE healthcare</td>
			<td style="width:119px;">17-1440-02</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in vitro method to observe e-selectin-mediated interactions between prostate circulating tumor cells derived from patients and human endothelial cells

Metastaz tümör hücrelerinin ikincil bir niş damar dışına ve form erişim sağlamasını ve böylece, birincil tümör intravasate kan vasküler ve lenf sistemi için tutacak edildiği bir süreçtir. Kan damar sistemi için tümör hücrelerinin ekstravazasyon farklı hücre hatlarından elde edilen endotelyal hücreleri (EC) ve tümör hücreleri kullanılarak incelenebilir. İlk çalışmalar, statik koşullar kullanılarak yapılmıştır ancak iyi EC fizyolojik akış koşulları altında farklı davranır olduğu belgelenmiştir. Bu nedenle, farklı akım odası düzenekleri henüz EC&#39;ler ile kanser hücresi etkileşimleri incelemek için kullanılmaktadır. Akım akışı odası takımları, farklı kesme stres koşullarında farklı hücre hatları veya sıvının kullanarak tekrarlanabilir sonuçlar sunuyoruz. Ancak, gözlemlemek ve bu tümör hücrelerini (KTC) dolaşan gibi nadir hücreleri ile etkileşimleri çalışmak için, bazı değişiklikler geleneksel akış odası montaj yapılacak gerekmektedir. KTCkan hücrelerinin milyonlarca arasında nadir bir hücre popülasyonu vardır. Sonuç olarak, kapalı zaman eğrileri saf bir popülasyonu elde etmek zordur. Normal olarak, dolaşımda bulunan farklı hücre tipleri ile kapalı zaman eğrileri kirlenmesi mevcut zenginleştirme ya da tükenme teknikleri kullanılarak kaçınılmazdır. Bu raporda, biz floresan etiket dolaşan prostat kanseri hücreleri için benzersiz bir yöntem tarif ve kendine monte akış odası sistemine EC&#39;lere olan etkileşimlerini araştırır. Bu teknik bundan başka, prostat kapalı zaman eğrileri ve ilgi duyulan herhangi bir protein arasındaki etkileşimi gözlemlemek için uygulanabilir.

Şekil 1, bu mikroslayd üzerinde EC&#39;ler bir tek tabaka bir O / N kültür gösterir. Şekil 1A döküntü Mikroslayd 100% 70% 10X objektif (Şekil 1B) kullanılarak görülebilir iken, 5X objektif kullanarak görünür olduğunu göstermektedir. E-selektin aracılık ettiği işlemleri için, kenarlarında haddeleme hücre video kayıt ve oynatma analiz için Mikroslayd% 70&#39;den fazlası mevcut kılan olarak kabul edilmez. Bizim tecrübelerimize göre, başlang?...

Watch this Scientific Journal Video about In vitro Method to Observe E-selectin-mediated Interactions Between Prostate Circulating Tumor Cells Derived From Patients and Human Endothelial Cells at JoVE

In vitro Method to Observe E-selectin-mediated Interactions Between Prostate Circulating Tumor Cells Derived From Patients and Human Endothelial Cells

Bizim rapor fizyolojik akış koşulları altında prostat kanserinde CTC / EC etkileşimleri görselleştirmek ve analiz etmek için eşsiz bir yöntem açıklanır.

Hastalar ve İnsan endotel hücrelerinden türetildiği Prostat dolaşımdaki tümör hücrelerinin arasında E-selektin aracılı Etkileşimleri gözlemleyin vitro Yöntemi

Metastasis is a process in which tumor cells shed from the primary tumor intravasate blood vascular and lymphatic system, thereby, gaining access to ...

in-vitro-method-to-observe-e-selectin-mediated-interactions-between

Research

JoVE Journal

Medicine

In vitro Method to Observe E-selectin-mediated Interactions Between Prostate Circulating Tumor Cells Derived From Patients and Human Endothelial Cells

9.0K Görüntüleme.  Weill Cornell Medical College.  Bizim rapor fizyolojik akış koşulları altında prostat kanserinde CTC / EC etkileşimleri görselleştirmek ve analiz etmek için eşsiz bir yöntem açıklanır. 

Video: In vitro Method to Observe E-selectin-mediated Interactions Between Prostate Circulating Tumor Cells Derived From Patients and Human Endothelial Cells

Isolation, Characterization and Comparative Differentiation of Human Dental Pulp Stem Cells Derived from Permanent Teeth by Using Two Different Methods

Developing wisdom teeth are easy-accessible source of stem cells during the adulthood which could be obtained by routine orthodontic treatments. Human pulp-derived stem cells (hDPSCs) possess high proliferation potential with multi-lineage differentiation capacity compare to the ordinary source of adult stem cells1-8; therefore, hDPSCs could be the good candidates for autologous transplantation in tissue engineering and regenerative medicine. Along with these benefits, possessing the mesenchymal stem cells (MSC) features, such as immunolodulatory effect, make hDPSCs more valuable, even in the case of allograft transplantation6,9,10. Therefore, the primary step for using this source of stem cells is to select the best protocol for isolating hDPSCs from pulp tissue. In order to achieve this goal, it is crucial to investigate the effect of various isolation conditions on different cellular behaviors, such as their common surface markers &amp; also their differentiation capacity.
Thus, here we separate human pulp tissue from impacted third molar teeth, and then used both existing protocols based on literature, for isolating hDPSCs,11-13 i.e. enzymatic dissociation of pulp tissue (DPSC-ED) or outgrowth from tissue explants (DPSC-OG). In this regards, we tried to facilitate the isolation methods by using dental diamond disk. Then, these cells characterized in terms of stromal-associated Markers (CD73, CD90, CD105 &amp; CD44), hematopoietic/endothelial Markers (CD34, CD45 &amp; CD11b), perivascular marker, like CD146 and also STRO-1. Afterwards, these two protocols were compared based on the differentiation potency into odontoblasts by both quantitative polymerase chain reaction (QPCR) &amp; Alizarin Red Staining. QPCR were used for the assessment of the expression of the mineralization-related genes (alkaline phosphatase; ALP, matrix extracellular phosphoglycoprotein; MEPE &amp; dentin sialophosphoprotein; DSPP).14

The method described isolation and characterization of human Dental Pulp Stem Cells (hDPSCs) by using either enzymatic dissociation of pulp (DPSC-ED) or direct outgrowth of stem cells from pulp tissue explants (DPSC-OG). Then followed by in vitro comparative differentiation of both types of hDPSCs into odontoblasts.

İnsan Diş Pulp Kök Hücre İzolasyonu, Karakterizasyonu ve Karşılaştırmalı Farklılaşma İki Farklı Yöntemler Kullanılarak Daimi Dişler türetilen

Developing wisdom teeth are easy-accessible source of stem cells during the adulthood which could be obtained by routine orthodontic treatments. Human ...

Tıp

Patient Derived Cell Culture and Isolation of CD133+ Putative Cancer Stem Cells from Melanoma

Despite improved treatments options for melanoma available today, patients with advanced malignant melanoma still have a poor prognosis for progression-free and overall survival. Therefore, translational research needs to provide further molecular evidence to improve targeted therapies for malignant melanomas. In the past, oncogenic mechanisms related to melanoma were extensively studied in established cell lines. On the way to more personalized treatment regimens based on individual genetic profiles, we propose to use patient-derived cell lines instead of generic cell lines. Together with high quality clinical data, especially on patient follow-up, these cells will be instrumental to better understand the molecular mechanisms behind melanoma progression.
Here, we report the establishment of primary melanoma cultures from dissected fresh tumor tissue. This procedure includes mincing and dissociation of the tissue into single cells, removal of contaminations with erythrocytes and fibroblasts as well as primary culture and reliable verification of the cells' melanoma origin.
Recent reports revealed that melanomas, like the majority of tumors, harbor a small subpopulation of cancer stem cells (CSCs), which seem to exclusively fuel tumor initiation and progression towards the metastatic state. One of the key markers for CSC identification and isolation in melanoma is CD133. To isolate CD133+ CSCs from primary melanoma cultures, we have modified and optimized the Magnetic-Activated Cell Sorting (MACS) procedure from Miltenyi resulting in high sorting purity and viability of CD133+ CSCs and CD133- bulk, which can be cultivated and functionally analyzed thereafter.

Patient Derived Cell Culture and Isolation of CD133+ Putative Cancer Stem Cells from Melanoma

This article describes the preparation of freshly obtained melanoma tissue into primary cell cultures, and how to remove contaminations of erythrocytes and fibroblasts from the tumor cells. Finally, we describe how CD133+ putative melanoma stem cells are sorted from the CD133- bulk using Magnetic Activated Cell Sorting (MACS).

Hasta Türetilen Hücre Kültürü ve CD133 İzolasyonu<sup&gt; +</supMelanom dan&gt; sağlayan olası Kanser Kök Hücreleri

Despite improved treatments options for melanoma available today, patients with advanced malignant melanoma still have a poor prognosis for ...

Isolation of Cancer Stem Cells From Human Prostate Cancer Samples

The cancer stem cell (CSC) model has been considerably revisited over the last two decades. During this time CSCs have been identified and directly isolated from human tissues and serially propagated in immunodeficient mice, typically through antibody labeling of subpopulations of cells and fractionation by flow cytometry. However, the unique clinical features of prostate cancer have considerably limited the study of prostate CSCs from fresh human tumor samples. We recently reported the isolation of prostate CSCs directly from human tissues by virtue of their HLA class I (HLAI)-negative phenotype. Prostate cancer cells are harvested from surgical specimens and mechanically dissociated. A cell suspension is generated and labeled with fluorescently conjugated HLAI and stromal antibodies. Subpopulations of HLAI-negative cells are finally isolated using a flow cytometer. The principal limitation of this protocol is the frequently microscopic and multifocal nature of primary cancer in prostatectomy specimens. Nonetheless, isolated live prostate CSCs are suitable for molecular characterization and functional validation by transplantation in immunodeficient mice.

The isolation of cancer stem cells (CSCs) directly from human tissues is requisite for their biological characterization. This manuscript describes a methodology for the isolation of prostate CSCs from human tissues, while also providing tips on troubleshooting difficult steps.

İnsan Prostat Kanseri Örneklerinden Kanser Kök Hücreleri İzolasyon

The cancer stem cell (CSC) model has been considerably revisited over the last two decades. During this time CSCs have been identified and directly ...

Generation of Induced Pluripotent Stem Cells from Muscular Dystrophy Patients: Efficient Integration-free Reprogramming of Urine Derived Cells

Dystrophic cardiomyopathy is a poorly understood consequence of muscular dystrophy. Generating induced Pluripotent Stem Cells (iPSCs) from patients with muscular dystrophy is an invaluable cellular source for in&#160;vitro disease model systems and can be used for drug screening studies. Patient-derived urine cells have been used in successful reprogramming into induced pluripotent stem cells in order to model dystrophic cardiomyopathy1. Addressing the safety concerns of integrating vector systems, we present a protocol using a non-integrating Sendai virus vector for transduction of Yamanaka factors into urine cells collected from patients with muscular dystrophy. This protocol generates fully reprogrammed clones within 2&#8211;3 weeks. The pluripotent cells are vector-free by passage-13. These dystrophic iPSCs can be differentiated into cardiomyocytes and used either to study disease mechanisms or for drug screening.

This protocol entails detailed procedures for isolation of urine derived cells from muscular dystrophy patients; their efficient and rapid reprogramming through Sendai virus transduction.

Musküler Distrofi Hastalarda gelen uyarılmış pluripotent kök hücrelerin oluşturulması: İdrar Türetilmiş Hücre Verimli Entegrasyonu-ücretsiz yeniden programlanması

Dystrophic cardiomyopathy is a poorly understood consequence of muscular dystrophy. Generating induced Pluripotent Stem Cells (iPSCs) from patients with ...

In vitro Enrichment of Ovarian Cancer Tumor-initiating Cells

Evidence suggests that small subpopulations of tumor cells maintain a unique self-renewing and differentiation capacity and may be responsible for tumor initiation and/or relapse. Clarifying the mechanisms by which these tumor-initiating cells (TICs) support tumor formation and progression could lead to the development of clinically favorable therapies. Ovarian cancer is a heterogeneous and highly recurrent disease. Recent studies suggest TICs may play an important role in disease biology. We have identified culture conditions that enrich for TICs from ovarian cancer cell lines. Growing either adherent cells or non-adherent &#8216;floater&#8217; cells in a low attachment plate with serum free media in the presence of growth factors supports the propagation of ovarian cancer TICs with stem cell markers (CD133 and ALDH activity) and increased tumorigenicity without the need to physically separate the TICs from other cell types within the culture. Although the presence of floater cells is not common for all cell lines, this population of cells with innate low adherence may have high tumorigenic potential.Compared to adherent cells grown in the presence of serum, TICs readily form spheres, are significantly more tumorigenic in mice, and express putative stem cell markers. The conditions are easy to establish in a timely manner and can be used to study signaling pathways important for maintaining stem characteristics, and to identify drugs or combinations of drugs targeting TICs. The culture conditions described herein are applicable for a variety of ovarian cancer cells of epithelial origin and will be critical in providing new information about the role of TICs in tumor initiation, progression, and relapse.

In vitro Enrichment of Ovarian Cancer Tumor-initiating Cells

Tumor-initiating cells (TICs) may represent a viable therapeutic target for the treatment of ovarian cancer, a highly recurrent and fatal disease. We present a protocol for culture conditions that enrich for this highly tumorigenic population of cells.

Yumurtalık Kanseri Tümör başlatan Hücrelerinin in vitro Zenginleşmeden içinde

Evidence suggests that small subpopulations of tumor cells maintain a unique self-renewing and differentiation capacity and may be responsible for tumor ...

Studying Pancreatic Cancer Stem Cell Characteristics for Developing New Treatment Strategies

Pancreatic ductal adenocarcinoma (PDAC) contains a subset of exclusively tumorigenic cancer stem cells (CSCs) which have been shown to drive tumor initiation, metastasis and resistance to radio- and chemotherapy. Here we describe a specific methodology for culturing primary human pancreatic CSCs as tumor spheres in anchorage-independent conditions. Cells are grown in serum-free, non-adherent conditions in order to enrich for CSCs while their more differentiated progenies do not survive and proliferate during the initial phase following seeding of single cells. This assay can be used to estimate the percentage of CSCs present in a population of tumor cells. Both size (which can range from 35 to 250 micrometers) and number of tumor spheres formed represents CSC activity harbored in either bulk populations of cultured cancer cells or freshly harvested and digested tumors 1,2. Using this assay, we recently found that metformin selectively ablates pancreatic CSCs; a finding that was subsequently further corroborated by demonstrating diminished expression of pluripotency-associated genes/surface markers and reduced in vivo tumorigenicity of metformin-treated cells. As the final step for preclinical development we treated mice bearing established tumors with metformin and found significantly prolonged survival. Clinical studies testing the use of metformin in patients with PDAC are currently underway (e.g., NCT01210911, NCT01167738, and NCT01488552). Mechanistically, we found that metformin induces a fatal energy crisis in CSCs by enhancing reactive oxygen species (ROS) production and reducing mitochondrial transmembrane potential. In contrast, non-CSCs were not eliminated by metformin treatment, but rather underwent reversible cell cycle arrest. Therefore, our study serves as a successful example for the potential of in vitro sphere formation as a screening tool to identify compounds that potentially target CSCs, but this technique will require further in vitro and in vivo validation to eliminate false discoveries.

Pancreatic cancer stem cells (CSCs) can be expanded in vitro using the anchorage-independent sphere culture technique, which represents a powerful tool to study CSC biology and can serve as the first step to develop novel CSC-targeting therapies. Here the methodology for expanding, analyzing and targeting of pancreatic CSCs is provided.

Pankreas Kanseri Yeni Tedavi Stratejileri Geliştirme Hücre Özellikleri Kök incelenmesi

Pancreatic ductal adenocarcinoma (PDAC) contains a subset of exclusively tumorigenic cancer stem cells (CSCs) which have been shown to drive tumor ...

Isolation and Propagation of Circulating Tumor Cells from a Mouse Cancer Model

Cancer metastasis is the foremost cause of cancer-associated deaths. Recent studies have shown that circulating tumor cells (CTCs) are important in cancer metastasis. Indeed, the number of CTCs correlates with tumor size. Here, a detailed description is provided of a methodology for isolation and propagation of CTCs from a syngeneic mouse model of hepatocellular carcinoma (HCC) which allows for downstream analysis of potentially important molecular mechanisms of solid organ tumor metastasis. This method is efficient and reproducible. It is a non-invasive technique and, therefore, has potential to replace the invasive biopsy of tissues from humans which may be associated with complications. Therefore, the method discussed here allows for the isolation and propagation of CTCs from whole blood samples such that they can be examined and characterized. This has potential for future adaptation for clinical applications such as diagnosis, and personalized targeted therapy.

Circulating tumor cells (CTCs) have been shown to play an important role in tumor metastasis. Here, a method for the isolation and propagation of CTCs from the whole blood of a syngeneic mouse tumor model of hepatocellular carcinoma (HCC) metastasis is described.

Fare Kanser Modeli Tümör Hücreleri Sirkülasyon İzolasyonu ve Yayılım

Cancer metastasis is the foremost cause of cancer-associated deaths. Recent studies have shown that circulating tumor cells (CTCs) are important in cancer ...

Isolation and Culture Expansion of Tumor-specific Endothelial Cells

Freshly isolated tumor-specific endothelial cells (TEC) can be used to explore molecular mechanisms of tumor angiogenesis and serve as an in vitro model for developing new angiogenesis inhibitors for cancer. However, long-term in vitro expansion of murine endothelial cells (EC) is challenging due to phenotypic drift in culture (endothelial-to-mesenchymal transition) and contamination with non-EC. This is especially true for TEC which are readily outcompeted by co-purified fibroblasts or tumor cells in culture. Here, a high fidelity isolation method that takes advantage of immunomagnetic enrichment coupled with colony selection and in vitro expansion is described. This approach generates pure EC fractions that are entirely free of contaminating stromal or tumor cells. It is also shown that lineage-traced Cdh5cre:ZsGreenl/s/l reporter mice, used with the protocol described herein, are a valuable tool to verify cell purity as the isolated EC colonies from these mice show durable and brilliant ZsGreen fluorescence in culture.

We report a reliable method to isolate and culture primary tumor-specific endothelial cells from genetically engineered mouse models.

Tümör spesifik Endotel Hücreleri İzolasyon ve Kültürü Genişleme

Freshly isolated tumor-specific endothelial cells (TEC) can be used to explore molecular mechanisms of tumor angiogenesis and serve as an in vitro model ...

Generation of Prostate Cancer Patient Derived Xenograft Models from Circulating Tumor Cells

Patient derived xenograft (PDX) models are gaining popularity in cancer research and are used for preclinical drug evaluation, biomarker identification, biologic studies, and personalized medicine strategies. Circulating tumor cells (CTC) play a critical role in tumor metastasis and have been isolated from patients with several tumor types. Recently, CTCs have been used to generate PDX experimental models of breast and prostate cancer. This manuscript details the method for the generation of prostate cancer PDX models from CTCs developed by our group. Advantages of this method over conventional PDX models include independence from surgical sample collection and generating experimental models at various disease stages. Density gradient centrifugation followed by red blood cell lysis and flow cytometry depletion of CD45 positive mononuclear cells is used to enrich CTCs from peripheral blood samples collected from patients with metastatic disease. The CTCs are then injected into immunocompromised mice; subsequently generated xenografts can be used for functional studies or harvested for molecular characterization. The primary limitation of this method is the negative selection method used for CTC enrichment. Despite this limitation, the generation of PDX models from CTCs provides a novel experimental model to be applied to prostate cancer research.

This manuscript details a method used to generate prostate cancer patient derived xenografts (PDXs) from circulating tumor cells (CTCs). The generation of PDX models from CTCs provides an alternative experimental model to study prostate cancer; the most commonly diagnosed tumor and a frequent cause of death from cancer in men.

Prostat Kanseri Hasta Üretimi Tümör Hücreleri Sirkülasyon gelen Xenograftlarında Modeller Türetilmiş

Patient derived xenograft (PDX) models are gaining popularity in cancer research and are used for preclinical drug evaluation, biomarker identification, ...

Depletion of Mouse Cells from Human Tumor Xenografts Significantly Improves Downstream Analysis of Target Cells

The use of in vitro cell line models for cancer research has been a useful tool. However, it has been shown that these models fail to reliably mimic patient tumors in different assays1. Human tumor xenografts represent the gold standard with respect to tumor biology, drug discovery, and metastasis research 2-4. Tumor xenografts can be derived from different types of material like tumor cell lines, tumor tissue from primary patient tumors4 or serially transplanted tumors. When propagated in vivo, xenografted tissue is infiltrated and vascularized by cells of mouse origin. Multiple factors such as the tumor entity, the origin of xenografted material, growth rate and region of transplantation influence the composition and the amount of mouse cells present in tumor xenografts. However, even when these factors are kept constant, the degree of mouse cell contamination is highly variable.
Contaminating mouse cells significantly impair downstream analyses of human tumor xenografts. As mouse fibroblasts show high plating efficacies and proliferation rates, they tend to overgrow cultures of human tumor cells, especially slowly proliferating subpopulations. Mouse cell derived DNA, mRNA, and protein components can bias downstream gene expression analysis, next-generation sequencing, as well as proteome analysis 5. To overcome these limitations, we have developed a fast and easy method to isolate untouched human tumor cells from xenografted tumor tissue. This procedure is based on the comprehensive depletion of cells of mouse origin by combining automated tissue dissociation with the benchtop tissue dissociator and magnetic cell sorting. Here, we demonstrate that human target cells can be can be obtained with purities higher than 96% within less than 20 min independent of the tumor type.

Human tumor xenografts are vascularized and infiltrated by cells of mouse origin during the growth phase in vivo. To circumvent the bias caused by these contaminating cells during downstream analysis, we developed a method allowing for comprehensive depletion of all mouse cells by magnetic cell sorting.

İnsan Tümör ksenogratflarının gelen Fare Hücrelerinin tükenmesi Anlamlı Hedef Hücre Alt Analizi geliştirir

The use of in vitro cell line models for cancer research has been a useful tool. However, it has been shown that these models fail to reliably mimic ...