Biz ö Ashton, V. Barkley, K. Beimfohr, F. Bojorquez, J. Cantrell, G. Castro, R. Christensen, J. Fearn, C. Jara, ö. Meade, G. Owens, L. Rodarte, ö. Sieglaff, A. Sonoqui, M. Stefanek, B. Stuart, J. Trejo, A. Slade ve E. Yescas teknik yardım için teşekkür ederim. Arizona pamuk yetiştiricileri Derneği, pamuk kısmi destek USDA tarımsal araştırma Servisi, USDA Ulusal Enstitüsü gıda ve tarım uzantısı IPM Programı ve haşere yönetimi alternatifleri özel projeler, Cotton Incorporated, tarafından sağlanan Vakıflar, USDA düşünüyorsunuz, NAPIAP (Batı Bölgesi) ve Batı bölgesini IPM özel projeler.

Not: aşağıda açıklanan teknikleri kısmi yaşam tabloları üretilmesi veya ölüm yetişkin etap açıkça içermediği için kabul edilir. Yumurta mortalite yetişkin sahneye incelediği için terim kohort nesile eşdeğerdir.
 1. kurmak alan siteleri <ol><li>kuralları yaşam tabloları böcekler mevcut olduğunda bitki büyüme sırasında herhangi bir zamanda. Seçtiğiniz zaman çalışmaları başlatmak bir amaç ve hedefleri araştırma bağlıdır.</li>
	<li>Kırpma kenar araziler veya ekilmemiş alanları çevreleyen gelen etkileri en aza indirmek için arsa merkezine yakın iki satırı seçin. Her satır bir tel bayrak veya ürün büyük kurtuluşun kolay tehcir kolaylaştırmak için tahta bir kazık ile baş işareti.</li>
	<li>3-4 m arsa kenarından paralel satıra gidin. Yumurta tabur ve ikinci perisi tabur kurmak için kurmak için bir satır kullanmak</li></ol> 2. Yumurta tabur kurmak <ol><li>8 X el objektif bir kullanım için yeni pamuk bitkisinin (genellikle ikinci veya üçüncü düğümden üst) ana kök en üstündeki yaprakların alt kısmında koydu yumurta aramak için. 
	Not: B. tabaci hayat aşamalarında genellikle dikey olarak bitki ve giderek büyük nimf aşamaları aşağıdaki en üstündeki yumurta ile bitki gölgelik içinde dağıtılır. Bu 1 st INSTAR perileri yumurta olarak aynı yaprak üzerine yerleşmek ve büyüdükçe bitki yaprakları ilk oviposition site yukarıda ekler nedeniyle oluşur.
	Taze yumurta gözlemlemek ve böcek işaretlemek için 8 x lens kullanmadan önce kimlik doğrulamak için <ol><li>kullanımı daha yüksek güç 15 X objektif. Taze yumurta mercek altında parlak beyaz rengi var ve büyük (şekil 1A ve 1B) olan yumurta göze çarpıyor. Yumurta gibi onlar olgun tannish bir renge darken.</li>
	</ol></li> <li>Yumurta etrafında küçük bir daire çizmek için toksik olmayan, ultra fine punto siyah kalıcı bir kalem kullanın. Bir erkek başka bir yumurta daha sonra daire içinde döşeme olasılığını en aza indirmek için yeterince daire küçük çizmek.
	<ol><li>Bir delik veya yuvası 8 X el lens tarafındaki bir demir testeresi veya kalem takılı ve lens aracılığıyla çizim yaparken görüntülendi bit matkap ( şekil 2A) ile kesti.</li>
	</ol></li> <li>Aynı yaprak bu işlemi yineleyin, mümkünse, diğer yumurtaları işaretlemek için en fazla dört olmak üzere toplam işaretleme bir tek yaprak ve yaprak sektör başına birden fazla yumurta yumurta. Pamuk için yaprak üç büyük yaprak damarları ( şekil 3) tarafından dört bölgeye bölünmüştür.</li>
	<li>Küçük bir hafif karton etiket işaretli egg(s) içeren yaprak petiole etrafında kravat. Etiket sayısı ve deneysel tasarım ( şekil 2B) göre arsa veya tedavi numarasını için Gösterim içerir.</li>
	<li>1 m uzun boyu işaretleme bant bitki en üstündeki ana kök etrafında kravat. Kaseti kolayca tekrarlanan ziyaretler için bu konum alanında görünür durumda tutmak için gereken taşındı bir yay tarzı kravat kullanın.</li>
	<li>Kayıt yaprak sayısı ve konumsal bilgi üstünde bir taşınabilir analog veya elektronik defter (Tablo 1). Konum bilgileri daha iyi not konuma (örneğin, 1-1, 1-2, 1-4 yumurta 1, 2 ve 4 yaprak #1 tarihinde sektörlerde belirtmek) yaprak sektörlerinin kullanır.</li>
	<li>Her kohort tek bir günde kurmak. 
	Not: Bir kohort belirli bir komplo içinde en az 50 yumurta toplam oluşur.
	<ol><li>Daha iyi kohort üyeleri dağıtmak için bitki başına birden fazla yaprak kullanın. 
		Not: böcek yoğunluğu bağlı olarak, bu her yerde 3-4 yumurta ile 13 yaprakları üzerinden oluşturan veya her bir yumurta ile 50 bırakır. Bireysel bitkiler işaretli yaprakları kadar mümkün olduğunca satır boyunca dağıtmak için kazazedelerin kampında kalırlar.</li>
	</ol></li></ol> 3. Su perisi tabur kurmak <ol><li>8 X 1 st yeni yerleşmiş açmak için el objektif hakkında perileri yaprakların alt kısmında biçim kullanımı pamuk bitkisinin ana kök tepesinden aşağı 3-5 yaprakları. 15 X objektif lens 8 X kullanarak işaretleme önce kimlik doğrulamak için kullanın.</li>
	<li>Perisi etrafında küçük bir daire çizmek için toksik olmayan, ultra fine punto siyah kalıcı bir kalem kullanın. Daire yeterince bir tarayıcı daha sonra daire içinde yerleşme olasılığını en aza indirmek için küçük çizmek. 
	Not: Yeni taranmış 1 st INSTAR perileri santimetre birkaç yumurta yumurtadan sonra ilk birkaç saat sırasında taşıyabilirsiniz Damper denir. Sonra BT &#34; yerleşir &#34; nerede yem ve tüy dökme yetişkin çıkar kadar hiç tekrar hareket ettirmeden bir site üzerine. Bunlar 1 st INSTAR perileri ( şekil 1 c) gezginlerinin ayırt edici yerleşti. İlk olarak, onlar are hareketsiz ve ikinci, onlar daha 2 boyutlu ve sıkı yatıyordu ve düz yaprak üzerinde ve biraz daha saydam bir kehribar rengi.
	<ol><li>Bir delik veya yuvası 8 X el lens tarafındaki bir demir testeresi veya kalem takılı ve lens aracılığıyla çizim yaparken görüntülendi bit matkap ( şekil 2A) ile kesti.</li>
	</ol></li> <li>Fazla dört perileri üzerindeki tek yaprak ve yaprak kesim başına birden fazla su perisi işaretleme diğer perileri işaretlemek için mümkünse, aynı yaprak, bu işlemi yineleyin. Pamuk için yaprak üç büyük yaprak damarları ( şekil 3) tarafından dört bölgeye bölünmüştür.</li>
	<li>Küçük bir hafif karton etiket işaretli perisi içeren yaprak petiole etrafında kravat. Etiket sayısı ve deneysel tasarım ( şekil 2B) göre arsa veya tedavi numarasını için Gösterim içerir.</li>
	<li>1 m uzun boyu işaretleme bant bitki en üstündeki ana kök etrafında kravat. Kaseti kolayca tekrarlanan ziyaretler için bu konum alanında görünür durumda tutmak için gereken taşındı bir yay tarzı kravat kullanın.</li>
	<li>Kayıt yaprak sayısı ve konumsal bilgi üstünde bir taşınabilir analog veya elektronik defter (Tablo 1). Konum bilgileri daha iyi not konuma (örneğin, 1-1, 1-2, 1-4 1, 2 ve 4 yaprak #1 tarihinde sektörlerde perileri göstermek) yaprak sektörlerinin kullanır.</li>
	1 st biçim perileri ve değil Damper işaretlenir, emin olmak için <li>işaretli her yaprak için geri dönüp işaretli böcek yaklaşık 1-2 h sonra ilk kurulum gözlemlemek. İn yatacak yerleşmiş perileri gerekli olabilir.</li>
	<li>Kurmak her kohort tek bir günde. 
	Not: Bir kohort belirli bir komplo içinde en az 50 perileri toplam oluşur. Birden fazla yaprak bitki daha iyi kohort üyeleri dağıtmak için kullanılır. Bağlı olarak böcek yoğunluğu, bu herhangi bir yerde 3-4 perileri ile 13 yaprakları üzerinden oluşturan veya bir su perisi ile her 50 bırakır. Bireysel bitkiler işaretli yaprakları kadar mümkün olduğunca satır boyunca dağıtmak için seçilir. 1 st INSTAR Paletli sahne nedeniyle 2 iletişim kuralında işaretlenmiş yumurta sonra perisi takip edilmektedir aynı böcekler değildirs. böylece, hiçbir Paletli mortalite ölçülür ve yumurta ve su perisi tabur genellikle aynı gün kurulan çünkü zamanında biraz hayat tablo tutarsız. Mortalite ihmal edilebilir düzeydedir ve aslında göz ardı 30-ebilmek var olmak araştırma Gezgin göstermiştir.</li>
</ol> 4. Gözlem ve kayıt yumurta kapağı ve ölüm <ol><li>8-10 d sonra (28-32 ° C; ortalama Arizona yaz koşullar) sonra yumurta kohort kurulması, işaretli yumurta içeren yaprakları toplamak ve gözlem altında için laboratuvara dönmek bir diseksiyon mikroskop. Yumurta mortalite ve alanında mortalite nedenleri açıkça değerlendirmek için çok küçük.</li>
	<li>Belirlemek için yumurta ölüm nedenleri ve kayıt başlatılan kohort kurulması (Tablo 1) not defterinde. 
	Not: Ölüm dislodgement, avlanma veya inviability karakterizedir. Dislodgement: yumurta hava olayları nedeniyle (rüzgar, üfleme toz, yağmur) eksik veya avlanma çiğneme. Avlanma: emme yırtıcı bir daraltılmış koryon ( şekil 4 K) bırakın. Taranmış yumurta daraltılmış görünebilir, ama orada-ecek var olmak içinde yumurta koryon dikey bir yarık. Bu yarık için bakmak için mikroskop altında yaprak üzerinde koryon Tease minuten PIN kullanın. İnviability: yumurta 8-10 d noktadan sonra yumurtadan başarısız ve koyu kahverengi renk vardır. Arizona altında yaz koşullarda (28-32 ° C) normalde 5-7 gün içinde yumurtadan. Bu diğer bölgelerinde farklı olabilir ve ayarlar alanından koleksiyon zamanında gerekli olabilir.</li>
</ol> 5. Gözlem ve nimf geliştirme kayıt ve ölüm <ol><li>bir kohort kurulması sonra iki gün için kullanmak bir 15 X lens perileri gelişimi değerlendirmek ve eğer ölü ölüm nedeni atamak için. En az haftada üç kez (her gün) gözlemler yapmak.
	<ol><li>Kullan göreli boyutu ( şekil 1 c -G) ve zaman biçim değerlendirmek için kuruluş sonra. 
		Not: Dört nimf instars vardır ve her biri yaklaşık 2 d süren ilk üç aşamalı ve 3-5 d süren son aşaması ile Arizona yaz koşulları (28-32 ° C) altında hızlı gelişmedir (Toplam nimf geliştirme 2 wk veya daha az). Yeni gözlemciler INSTAR boyutları laboratuvar veya sera ilgi ana bitki üzerinde yetiştirilen böcekler gözlemleyerek öğrenmelidir. Göreli birimin genel vücut büyüklüğüne göre bacteriosomes (whitefly ortakyaşam barındıran organları) karın nimf biçim, yararlı bir göstergedir ( şekil 1 c -G). Yeni molted perileri çok düz ve yarı saydam. Perileri tüy dökme hazır daha abartılı, profilde kubbeli ve görünüşte opak.</li>
		<li>Belirlemek için perileri ölüm nedenleri ve kayıt başlatılan kohort kurulması (Tablo 1) not defterinde. 
		Not: Ölüm dislodgement, parazitizm, avlanma veya bilinmeyen biçim ( şekil 4) bağlı olarak karakterizedir. Dislodgement: herhangi bir sahne alanı'nın perileri hava olayları nedeniyle (rüzgar, üfleme toz, yağmur) eksik veya avlanma çiğneme. Yerinden çıkar perileri aşaması ölü ve canlı perileri sahne ortalama bir verilen gözlem tarihte tahmin ediyoruz. Asalaklıktan: sadece gözlemlenebilir 4 th biçim perileri. Eşleştirilmiş sarımsı bacterisomes gelişmekte olan parasitoid larva ( şekil 4A); tarafından zorla göç ettirilmiş larva bazen görülebilir ( şekil 4 c) aşamasıdır. Kendine özgü parasitoid pupa aşamasıdır ve cins belirli ( şekil 4B , 4 D). Avlanma: perisi içeriğini tahliye yırtıcı emme ve daraltılmış bir kadavra bırakın ( şekil 4 g -4i '). Nadiren, çiğneme yırtıcı bir kanıt ( şekil 4J) bırakabilir. Bilinmeyen: Yukarıdaki nedenlerden birine isnat edilemez ölüm. Nemli ortamlarda, mantar hastalığı ölüm ek bir sebebi olabilir. Bu kategori parasitoid ana besleme tarafından öldürüldü perileri de içerebilir. Hayatta perileri ortaya exuviae ( şekil 1 H) kendine özgü bir t şeklinde yuvası bırakarak yetişkin olarak</li></ol></li> <li>kaydetmemin geliştirme aşaması (canlı) ve ölüm ve kohort başlatılan defter aşamasında neden kuruluş (Tablo 1).</li>
	Bir kez bir tek yaprak üzerinde gözlenen perileri de <li>ölen ya da yetişkin bir whitefly ortaya çıkan yaprak toplamak ve laboratuvara dönmek. Diseksiyon mikroskop yüksek büyütme alanında kaydetti ölüm nedeninin doğru olduğunu doğrulayın ve herhangi bir düzeltme yapmak için kullanın. 
	Not: Her yerinden olmayan ölü böcek tipik iki haftalık gözlem dönemde yaprak üzerinde kalır ve bu yüzden bazı doğrulamaları değil mümkün olacaktır.</li>
</ol> 6. Veri özeti ve analizler <ol><li>Danışma kaynakları verileri tablodan hayat inşa yardımcı olmak için toplanan 2 , 8 , 11 , 31. Bir örnek yaşam tablosu tablo 2 gösterilmektedir. 
	Not: Sağlam hayat tablo analizleri zaman ve/veya farklı siteler yürütülen birden çok bağımsız yaşam tablo gerektirir. Multivoltine böcek gibi B. tabaci için bu tek bir sezon ve/veya birden fazla mevsim ve siteleri boyunca birden çok hayat tablo olabilir.
	<ol><li>Tahmin gerçek ölüm (d x/l 0) müstenit belgili tanımlık sayı üretimi başında kurulan böceklerin. 
		Gerçek ölüm oranı = (d x/l 0) nerede d x sahne x sırasında ölen numarası ve l 0 böcekler sayısı üretimi başında. Bu ölüm oranları katkı ve d x toplamı toplam ölüm oranı (Tablo 2) üretimi için aşamaları tahminleri bitti.</li>
		<li>Böcek belirli sahne (Tablo 2) başında canlı sayısını temel alan bir sahne (q x) içinde belirgin ölüm tahmin ediyoruz. Sahne özgü q x veya faktör sahne özgü q x içinde tahmin ediyoruz. Bu oranları sadece bir sahne içinde katkı.</li>
		<li>Belirlemek marjinal mortalite formülü kullanarak: 
		M B d B = / (1-b A) M B ölüm faktör marjinal oranı B, d B faktörü B mortalite belirgin oranda nerede ve d A kul tüm ölüm faktörler B 13 , 32 (Tablo 3) faktör için özetlenebilir mortalite belirgin oranıdır. 
		Not: sesil böcekler gibi whiteflies ve birçok diğer böcekler için ölüm bir özel hayat sahne içinde birden çok nedenleri sıralı değildir. Bunun yerine contemporaneously davranırlar ve çok marjinal oranlarının tahmin doğru sahne özgü herhangi bir mortalite oranları 32 , 34 neden tahmin için gereklidir. Örneğin, bir parasitoid bir whitefly perisi saldırabilir. Parasitoid yumurta yumurtadan ve larvalar konak geliştirmek. Bu etkinlik, gözlemci için başlangıçta asemptomatik mu, ya da en büyük olasılıkla, ana bilgisayar böcek öldürmek ve ölüm sebebi olarak alacak. Ancak bazı durumlarda, bir avcı bu aynı perisi saldırabilir veya perisi avlanma veya dislodgement olarak ölüm nedeninin dikkat edilmesi gereken gözlemci önde gelen yaprak üzerinden yerinden. Marjinal ölüm bunun için düzeltir.
		<ol><li>K-değerleri 35 k olarak convert marjinal sahne özel oranları = - ln (1 - M), nereye ln doğal logaritma ve M faiz marjinal mortalite oranı. k değerlerdir katkı ve bu analizler daha da basitleştirir. k-değerleri orantılı mortalite oranları tarafından 1 - geri dönüştürülmüş olabilir e [-k].</li>
		</ol></li> <li>Tahmin olarak yeri doldurulamaz ölüm [1 - e (-TotalK)]-[1 - e (-{konuşmak - kvalue ben })]. 
		Not: Bu bir belirli ölüm faktör kaldırdıysanız həyata değil toplam kuşak ölüm kısmını verir. Örneğin, bir böcek ilacı sprey nedeniyle avlanma veya parazitizm kaldırdıysanız kuşak ne kadar ölüm kaybolmuş olabilir? Bu şekilde tahmini yeri doldurulamaz mortalite varsayar mortalite yok yoğunluğu bağımlılık olduğunu.</li>
		<li>Anahtar faktörler <ol><li>kullanmak basit grafik çözümlemesini herhangi bir sahne, ya da herhangi bir ölüm faktör (veya bir ölüm faktör bir sahne içinde) k-değeri çizilecek karşı toplam-K değer için bütün bir nesil (Toplam K tüm bireysel k-değerlerin toplamı =). 
			Not: En yakın desen toplam-k en iyi taklit eden mortalite en önemli unsur, en iyi kuşak mortalite 35 değişikliklere katkıda faktör faktördür. Bir daha nicel yöntemi k-belirtilen değerlerin her biri toplam-k geriler ve en önemli unsur olan en büyük eğim değeri 3 olarak tanımlar.</li>
		</ol></li> <li>Gerileme k-değerleri bağımsız olarak ölçülen böcek nüfus yoğunluğu (örneğin 13) doğal günlük faizi faktörlerin yoğunluğu bağımlılığı testi. Önemli bir pozitif eğim doğrudan yoğunluğu bağımlılık ve negatif eğim ters bağımlılık öneriyor. 
		Not: İlave yaşam tablo hakkında bilgilerle yetişkin hayatta kalma ve üreme, birçok ek parametreleri (örneğin, oluşturma süresi, net üreme oranı, anlık oranda artış, yaşam beklentisi verilen sahne, vb) ve analizleri (matrix modelleri ve esneklik analizleri 36 , 37 yaptı.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Genellikle, tablolar geniş nesiller çakışan multivoltine böcekler için nerede bir nüfus art arda zaman ve çeşitli grafik ve matematiksel teknikler üzerinde örneklenir dikey bir yaklaşım için kısıtlı olan hayat gelişimi sonra için kullanılır İşe Alım için çeşitli aşamalarında tahmin etmek ve çeşitli yaşam aşamaları2yoğunlukları değiştirmesini mortalite oranları sonucuna. Yaklaşım burada hareketsiz eşit yaşlı böcekler bir popülasyondan bir grup izole ve ...

Hayat uzun bir geçmişi ekoloji1,2ile ortak bir araç tablolarıdır. Hayat tablolarıdır aslında doğum ve ölüm bir nüfus zaman ve bu verilerin üzerinde bir programı bir dizi parametre anlama ve nüfus dinamikleri tahmin için önemli ölçmek için kullanılabilir. Yaşam tabloları da trofik etkileşimleri anlamak ve zararlıları tarım ve doğal sistemleri yönetmek için denetim stratejileri geliştirmede önemli ölüm nedenleri üzerinde bilgi sağlayabilir. Çok sayıda alan bazlı yaşam tabloları böcekler3,4,5için inşa edilmiştir ve analizleri olması koşuluyla dynamics, yönetmelik ve yönetilen pek çok böcek nüfus tahmini önemli anlayışlar ve doğal sistemlerin6,7,8,9,10,11,12,13,14. Vadeli hayat tablo da sık sık büyük ölçüde zamanlamaları doğum ve ölüm ama böcek doğal ölüm kuvvetler ve gerçekçi ortam değişkenleri maruz bırakmayın yapay koşullar altında incelemek dayalı laboratuar çalışmaları tanımlamak için kullanılır. Genellikle, laboratuvar çalışmaların amacı bir türün karşılaştırmalı biyotik potansiyeli tahmin etmektir. Burada açıklanan yöntemlerden temel alanı tanımlamak soruşturma çevre göre potansiyel fark odaklanmıştır.
Hayat tablolar içinde eşit yaşlı bireylerin gerçek bir kohort kadar ölüm, hayatlarının en başından takip edilmektedir, yatay veya dikey nerede sık örnekleri popülasyondan alınmış bir takma istikrarlı yaş yapısı ile zaman içinde alınır, olarak karakterize edilebilir ve sonra hayati oranları matematiksel olarak inşa tabur2,15algılanır. Dağıtılabilir hayat tablo türü böcek niteliğine bağlıdır. Böyle bir yaklaşım çok ve yaygın olarak nesiller her yıl üst üste ile multivoltine bir böcek için çok zor olabilir süre yatay yaşam tabloları kez univoltine (yılda bir nesil) böcekler için geliştirilebilir. Analitik yöntemleri bir dizi önerilen ve böcek nüfus (örnekler için Southwood2 bakınız) dikey yaşam tabloları geliştirmek için kullanılır. Aşağıda gösterildiği metodoloji kohort tabanlı, yatay yaşam tabloları belirli yaşam öyküsü özelliklerle multivoltine böcekler için alanında özellikle, sesil yaşam evreleri varlığı gelişimi için izin verir. Yöntem bir anahtar pest pamuk için bir model sistem olarak gösterilmiştir.
Whitefly, Bemisia tabaci biotype B (Bemisia argentifolii =, Orta Doğu Asya küçük 116) olumsuz etkileri verim ve kalite de dahil olmak üzere birçok tarımsal ve Bahçe Bitkileri tarım küresel bir zararlı olduğunu ılıman bölgelerde17tarım sistemlerinde korumalı. Phloem besin akışı, bilinmeyen etyoloji nimf besleme, çok sayıda bitki virüs ve ürün kalitesi etkileri honeydew18,19 birikimi nedeniyle iletim neden bozuklukları bozan beslenme nedeniyle etkileri ortaya . Böcek bir geniş ana alanı vardır ve en çok 12-13 nesiller bağlı olarak bölge ve mevcut gıda kaynakları20yılda sahip multivoltine. Yönetim zorlukları da yüksek üreme potansiyeline dağıtmak ve içinde ve tarım sistemleri, durgun bir sahne (diapause veya estivation) ve hızla direnç geliştirmek için onun mizaç onun eksikliği arasında geçirmek için onun yetenek tarafından şiddetlenir bastırma21,22için kullanılan böcek öldürücüler için.
Önemli ilerleme gelişmekte olan entegre zararlı Yönetimi (IPM) stratejileri etkili ve ekonomik olarak bu haşere etkilenen bitkileri23,24,25olasılığını yönetme için yapılmıştır. Bu yönetim sistemleri B. tabaci nüfus dinamikleri ses bir temel anlayış üzerinde esas ve yaşam tabloları bu anlayış etkinleştirilmiş olduğu için anahtar yöntem olmuştur. Arizona, yaşam tabloları tahmini ve birden fazla ürün sistemleri13,26önemli mortalite kuvvetlerin B. tabaci için kimlik sağladı, mortalite dynamics göreli olarak ölçümü etkinleştirmiş olmanız gerekir Böcek öldürücüler14, hedef olmayan etkileri de dahil olmak üzere Yönetim Stratejileri transgenik pamuk böcek proteinler27üreten olası işlevsel olmayan hedef etkilerini tahmin etmek için bir yol vermişlerdir, titiz destekledim bir klasik biyolojik mücadele programı28 (Naranjo, yayınlanmamış veri) değerlendirilmesi ve yukarıdan aşağıya ve aşağıdan yukarıya haşere dynamics29üzerindeki etkileri karşılaştırmalı etkilerini araştırmak için yardımcı oldu. Tüm bu uygulamaları burada açıklanan metodoloji dağıtmış olan. Bir sürü doğal ve yönetilen sistem yaklaşım böcek nüfusunun ekoloji çalışma için yararlı olabilir.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Flagging tape</td>
			<td>Gempler, Janesville, Wisconsin USA</td>
			<td>52273</td>
			<td>Five colors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Manila merchandise tags</td>
			<td>American Tag Company, Pico Rivera, California USA</td>
			<td>12-104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultra fine point marker</td>
			<td>Sanford, Bellwood, Illinois, USA</td>
			<td>451898</td>
			<td>Available at Office Max, Amazon</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peak Loupe 8X</td>
			<td>Adorama, New York, NY USA</td>
			<td>2018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peak Loupe 15X</td>
			<td>Adorama, New York, NY USA</td>
			<td>19621</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

methodology for developing life tables for sessile insects in the field using the whitefly, bemisia tabaci, in cotton as a model system

Yaşam tabloları zamanlamaları doğum ve nüfus ölümden zamanla ölçme aracı sağlar. Kaynakları ve ekoloji tarım ekosistemleri de dahil olmak üzere, çeşitli uygulamalar olan nüfus, mortalite oranları ölçmek için de kullanılabilir. Tabloları sağlar çünkü onlar ölene kadar doğumdan itibaren bir popülasyondaki bireylerin bir grup takip miktarının önemli nüfus oranları, en doğrudan ve doğru yöntemi için yatay veya kohort tabanlı, hayat. Burada, protokolleri iletken ve kohort dayalı yaşam tabloları küresel bir böcek haşere Bemisia tabaciolgunlaşmamış yaşam aşamaları sesil doğa yararlanır alanda analiz için sunulur. Bireysel böcekler pamuk yaprak alt üzerinde bulunur ve toksik olmayan kalemle böcek etrafında küçük bir daire çizerek işaretlenir. Bu böcek sonra art arda ölçmek için el lens yardımıyla zamanla geliştirme bir sahneden diğerine ve sahne-özel ölüm nedenlerini belirlemek için doğal ve tanıtılan mortalite güçleri ile ilişkili görülebilmektedir. Analizleri nasıl doğru bir şekilde ölçmek için bu hareket her aşamasında contemporaneously içinde birden fazla ölüm zorlar ve bu verilerin anlamlı nüfus dinamik ölçümleri sağlamak için nasıl kullanılacağını açıklar. Yöntemi doğrudan yetişkin hayatta kalma ve üreme, çıkarsama olgunlaşmamış aşamaları dinamikleri için sınırlar için hesaba katmaz. Pamuk sisteminde aşağıdan yukarıya (bitki Kalite) ve B. tabaci mortalite dinamikleri üzerinde yukarıdan aşağıya (doğal düşmanları) etkileri etkisini ölçme üzerinde odaklanmış bir örnek gösterilmiştir.

Bir örnek kohort bir tipik sunu ve hesaplama hayat tablo sonuçları göstermek için Tablo 2 ' de sunulmuştur. En yararlı veri içinde her aşamasında her faktör için marjinal mortalite oranlarında yakalanır. Bu oranlar k-değerler için (Bölüm 6 iletişim kuralı) dönüştürerek, tüm faktörler üzerinde sahne özgü mortalite ve faktör özel ölüm tüm aşamaları üzerinde kolayca, kuşak ölüm toplam olarak tahmin edilebilir. Bu da yeri doldurulamaz m...

Watch this Scientific Journal Video about Methodology for Developing Life Tables for Sessile Insects in the Field Using the Whitefly, Bemisia tabaci, in Cotton As a Model System at JoVE.com

Methodology for Developing Life Tables for Sessile Insects in the Field Using the Whitefly, Bemisia tabaci, in Cotton As a Model System

Yaşam tabloları miktar kaynaklarının ve mortalite oranları böcek nüfus izin ve anlama, tahmin ve agroecosystems nüfus dinamikleri işleme katkıda bulunur. İletken ve kohort dayalı yaşam tabloları sesil olgunlaşmamış yaşam evreleri ile bir böcek için alanı analiz yöntemleri sunulmaktadır.

Metodoloji geliştirme yaşam tabloları alanını kullanarak Whitefly, Bemisia tabaci, pamuk gibi bir Model sistemi içinde sesil böcekler için için

Life tables provide a means of measuring the schedules of birth and death from populations over time. They also can be used to quantify the sources and ...

methodology-for-developing-life-tables-for-sessile-insects-field

Research

Education

JoVE Core

JoVE Journal

Statistics

Environment

Unit 1

Methodology for Developing Life Tables for Sessile Insects in the Field Using the Whitefly, Bemisia tabaci, in Cotton As a Model System

Survival Analysis

SCIENTISTS IN ACTION

11.7K Görüntüleme.  USDA-ARS, Arid-Land Agricultural Research Center. Yaşam tabloları miktar kaynaklarının ve mortalite oranları böcek nüfus izin ve anlama, tahmin ve agroecosystems nüfus dinamikleri işleme katkıda bulunur. İletken ve kohort dayalı yaşam tabloları sesil olgunlaşmamış yaşam evreleri ile bir böcek için alanı analiz yöntemleri sunulmaktadır.

Video: Methodology for Developing Life Tables for Sessile Insects in the Field Using the Whitefly, Bemisia tabaci, in Cotton As a Model System

Methods for Performing Crosses in Setaria viridis, a New Model System for the Grasses

Setaria viridis is an emerging model system for C4 grasses. It is closely related to the bioenergy feed stock switchgrass and the grain crop foxtail millet. Recently, the 510 Mb genome of foxtail millet, S. italica, has been sequenced 1,2 and a 25x coverage genome sequence of the weedy relative S. viridis is in progress. S. viridis has a number of characteristics that make it a potentially excellent model genetic system including a rapid generation time, small stature, simple growth requirements, prolific seed production 3 and developed systems for both transient and stable transformation 4. However, the genetics of S. viridis is largely unexplored, in part, due to the lack of detailed methods for performing crosses. To date, no standard protocol has been adopted that will permit rapid production of seeds from controlled crosses.
The protocol presented here is optimized for performing genetic crosses in S. viridis, accession A10.1. We have employed a simple heat treatment with warm water for emasculation after pruning the panicle to retain 20-30 florets and labeling of flowers to eliminate seeds resulting from newly developed flowers after emasculation. After testing a series of heat treatments at permissive temperatures and varying the duration of dipping, we have established an optimum temperature and time range of 48 &deg;C for 3-6 min. By using this method, a minimum of 15 crosses can be performed by a single worker per day and an average of 3-5 outcross progeny per panicle can be recovered. Therefore, an average of 45-75 outcross progeny can be produced by one person in a single day. Broad implementation of this technique will facilitate the development of recombinant inbred line populations of S. viridis X S. viridis or S. viridis X S. italica, mapping mutations through bulk segregant analysis and creating higher order mutants for genetic analysis.

Methods for Performing Crosses in Setaria viridis, a New Model System for the Grasses

We have developed a methodology for performing crosses in Setaria viridis (S. viridis). The method involves pruning the panicle prior to a hot water treatment to kill viable pollen. Crosses are performed following a well-controlled growth regime and typically result in the recovery of 1 to 7 cross-pollinated seed/s per panicle.

In Cross Sahne Yöntemleri<em&gt; Setaris viridis&#39;in</emOtlar için&gt; Yeni Bir Model Sistemi

Setaria viridis is an emerging model system for C4 grasses. It is closely related to the bioenergy feed stock switchgrass and the grain crop foxtail ...

Çevre

A Flow-through Exposure System for Evaluating Suspended Sediments Effects on Aquatic Life

This paper describes the Fish Larvae and Egg Exposure System (FLEES). The flow-through exposure system is used to investigate the effects of suspended sediment on various aquatic species and life stages in the laboratory by using pumps and automating delivery of sediment and water to simulate suspension of sediment. FLEES data are used to develop exposure-response curves between the effects on aquatic organisms and suspended sediment concentrations at the desired exposure duration. The effects data are used to evaluate management practices used to reduce the interactions between aquatic organisms and anthropogenic causes of suspended sediments. The FLEES is capable of generating total suspended solids (TSS) concentrations as low as 30 to as high as 800 mg/L, making this system an ideal choice for evaluating the effects of TSS resulting from many activities including simulating low ambient levels of TSS to evaluating sources of suspended sediments from dredging operations, vessel traffic, freshets, and storms.

A robust and flexible flow-through exposure system designed to maintain sediment in suspension is presented. The system is used to investigate the effects of suspended sediment on various aquatic species and life stages in the laboratory.

Sucul Life Asma değerlendirmek Sedimanlar Etkileri için Flow-through Pozlama Sistemi

This paper describes the Fish Larvae and Egg Exposure System (FLEES). The flow-through exposure system is used to investigate the effects of suspended ...

Controlled-release of Chlorine Dioxide in a Perforated Packaging System to Extend the Storage Life and Improve the Safety of Grape Tomatoes

A controlled-release chlorine dioxide (ClO2) pouch was developed by sealing a slurry form of ClO2 into semipermeable polymer film; the release properties of the pouch were monitored in containers with or without fruit. The pouch was affixed to the inside of a perforated clamshell containing grape tomatoes, and the effect on microbial population, firmness, and weight loss was evaluated during a 14 day storage period at 20 &#176;C. Within 3 days, the ClO2 concentration in the clamshells reached 3.5 ppm and remained constant until day 10. Thereafter, it decreased to 2 ppm by day 14. The ClO2 pouch exhibited strong antimicrobial activity, reducing Escherichia coli populations by 3.08 log CFU/g and Alternaria alternata populations by 2.85 log CFU/g after 14 days of storage. The ClO2 treatment also reduced softening and weight loss and extended the overall shelf life of the tomatoes. Our results suggest that ClO2 treatment is useful for extending the shelf life and improving the microbial safety of tomatoes during storage without impairing their quality.

Here, we describe a protocol for the application of a novel, slow-release ClO2 product that reduces spoilage and extends the shelf life of fresh fruit. The slow-release ClO2 product was added to standard commercial grape tomato packaging and tested against Escherichia coli and Alternaria alternata.

Bir Delikli Ambalaj Sistemde Klor Dioksit Kontrollü salım Depolama ömrünü uzatmak ve Üzüm Domates Güvenliğini Artırmak İçin

A controlled-release chlorine dioxide (ClO2) pouch was developed by sealing a slurry form of ClO2 into semipermeable polymer film; the release properties ...

Techniques for Investigating the Anatomy of the Ant Visual System

This article outlines a suite of techniques in light microscopy (LM) and electron microscopy (EM) which can be used to study the internal and external eye anatomy of insects. These include traditional histological techniques optimized for work on ant eyes and adapted to work in concert with other techniques such as transmission electron microscopy (TEM) and scanning electron microscopy (SEM). These techniques, although vastly useful, can be difficult for the novice microscopist, so great emphasis has been placed in this article on troubleshooting and optimization for different specimens. We provide information on imaging techniques for the entire specimen (photo-microscopy and SEM) and discuss their advantages and disadvantages. We highlight the technique used in determining lens diameters for the entire eye and discuss new techniques for improvement. Lastly, we discuss techniques involved in preparing samples for LM and TEM, sectioning, staining, and imaging these samples. We discuss the hurdles that one might come across when preparing samples and how best to navigate around them.

This article outlines a suite of techniques in light and electron microscopy to study the internal and external eye anatomy of insects. These include several traditional techniques optimized for work on ant eyes, detailed troubleshooting, and suggestions for optimization for different specimens and regions of interest.

Karınca görsel sistem anatomisi soruşturma teknikleri

This article outlines a suite of techniques in light microscopy (LM) and electron microscopy (EM) which can be used to study the internal and external eye ...

Harvesting Venom Toxins from Assassin Bugs and Other Heteropteran Insects

Heteropteran insects such as assassin bugs (Reduviidae) and giant water bugs (Belostomatidae) descended from a common predaceous and venomous ancestor, and the majority of extant heteropterans retain this trophic strategy. Some heteropterans have transitioned to feeding on vertebrate blood (such as the kissing bugs, Triatominae; and bed bugs, Cimicidae) while others have reverted to feeding on plants (most Pentatomomorpha). However, with the exception of saliva used by kissing bugs to facilitate blood-feeding, little is known about heteropteran venoms compared to the venoms of spiders, scorpions and snakes.
One obstacle to the characterization of heteropteran venom toxins is the structure and function of the venom/labial glands, which are both morphologically complex and perform multiple biological roles (defense, prey capture, and extra-oral digestion). In this article, we describe three methods we have successfully used to collect heteropteran venoms. First, we present electrostimulation as a convenient way to collect venom that is often lethal when injected into prey animals, and which obviates contamination by glandular tissue. Second, we show that gentle harassment of animals is sufficient to produce venom extrusion from the proboscis and/or venom spitting in some groups of heteropterans. Third, we describe methods to harvest venom toxins by dissection of anaesthetized animals to obtain the venom glands. This method is complementary to other methods, as it may allow harvesting of toxins from taxa in which electrostimulation and harassment are ineffective. These protocols will enable researchers to harvest toxins from heteropteran insects for structure-function characterization and possible applications in medicine and agriculture.

Although many insects in the suborder Heteroptera (Insecta: Hemiptera) are venomous, their venom composition and the functions of their venom toxins are mostly unknown. This protocol describes methods to harvest heteropteran venoms for further characterization, using electrostimulation, harassment, and gland dissection.

Venom toksinlerin Assassin böcek ve diğer Heteropteran böcekler hasat

Heteropteran insects such as assassin bugs (Reduviidae) and giant water bugs (Belostomatidae) descended from a common predaceous and venomous ancestor, ...

A Precise and Autonomous System for the Detection of Insect Emergence Patterns

Existing systems to measure insect emergence patterns have limitations; they are only partially automated and are limited in the maximum number of emerging insects they can detect. In order to obtain precise measurement of insect emergence, it is necessary for systems to be semi-automated and able to measure large numbers of emerging insects. We addressed these issues by designing and building a system that is automated and can measure emergence of up to 1200 insects. We modified the existing &#34;falling-ball&#34; system using Arduino microcontrollers to automate data collection and expand the sample size through multiple data channels. Multiple data channels enable the user to not only increase their sample size, but also allows for multiple treatments to be run simultaneously in a single experiment. Furthermore, we created an R script to automatically visualize the data as a bubble plot, while also calculating the median day and time of emergence. The current system was designed using 3D printing so the user can modify the system to be adjusted for different species of insects. The goal of this protocol is to investigate important questions in chronobiology and stress physiology, using this precise and automated system to measure insect emergence patterns.

Measurement of insect emergence patterns requires precision. Existing systems are only semi-automated and sample size is limited. We addressed these issues by designing a system using microcontrollers to precisely measure the time of emergence of large numbers of emerging insects.

Böcek ortaya çıkışı desenler tespiti için hassas ve özerk bir sistem

Existing systems to measure insect emergence patterns have limitations; they are only partially automated and are limited in the maximum number of ...

Visualizing Efficacy of Pesticides Against Disease Vector Mosquitoes in the Field

Efficacy of public health pesticides targeting nuisance and disease-vector insects such as mosquitoes, sand flies, and filth-breeding flies is not uniform across ecological zones. To best protect public and veterinary health from these insects, the environmental limitations of pesticides need to be investigated to inform effective use of the most appropriate pesticide formulations and techniques. We have developed a research program to evaluate combinations of pesticides, pesticide application equipment, and application techniques in hot-arid desert, hot-humid tropical, warm and cool temperate, and urban locations to derive pesticide use guidelines specific to target insect and environment. To these ends we designed a system of protocols to support efficient, cost-effective, portable, and standardized evaluation of a diverse range of pesticides and equipment across multiple environments. At the core of these protocols is the use of an array of small cages with colony-reared sentinel mosquitoes (adults and immatures) and sand flies (adults), strategically arranged in natural habitats and exposed to pesticide spray. Spatial and temporal patterns of pesticide efficacy are derived from percent mortality in sentinel cages, then mapped and visualized in a geographic information system. Maps of sentinel mortality data may be statistically compared to evaluate relative efficacy of a pesticide across multiple environments, or to study multiple pesticides in a single environment. Protocols may be modified to accommodate a variety of scenarios, including, for example, the vertical orientation of sentinels in canopy habitats or simultaneous testing of ground and aerial application methods.

The efficacy of public health pesticides targeting nuisance and disease-vector insects is not uniform across different ecological zones. Here we present a system of techniques using captive vector insects as sentinels for pesticide efficacy to derive electronic maps supporting the standard evaluation of pesticides across multiple environments.

Pestisitler hastalık vektör sivrisinekler alanında karşı etkinliği görselleştirme

Efficacy of public health pesticides targeting nuisance and disease-vector insects such as mosquitoes, sand flies, and filth-breeding flies is not uniform ...

A Loop-mediated Isothermal Amplification (LAMP) Assay for Rapid Identification of Bemisia tabaci

The whitefly Bemisia tabaci (Gennadius) is an invasive pest of considerable importance, affecting the production of vegetable and ornamental crops in many countries around the world. Severe yield losses are caused by direct feeding, and even more importantly, also by the transmission of more than 100 harmful plant pathogenic viruses. As for other invasive pests, increased international trade facilitates the dispersal of B. tabaci to areas beyond its native range. Inspections of plant import products at points of entry such as seaports and airports are, therefore, seen as an important prevention measure. However, this last line of defense against pest invasions is only effective if rapid identification methods for suspicious insect specimens are readily available. Because the morphological differentiation between the regulated B. tabaci and close relatives without quarantine status is difficult for non-taxonomists, a rapid molecular identification assay based on the loop-mediated isothermal amplification (LAMP) technology has been developed. This publication reports the detailed protocol of the novel assay describing rapid DNA extraction, set-up of the LAMP reaction, as well as interpretation of its read-out, which allows identifying B. tabaci specimens within one hour. Compared to existing protocols for the detection of specific B. tabaci biotypes, the developed method targets the whole B. tabaci species complex in one assay. Moreover the assay is designed to be applied on-site by plant health inspectors with minimal laboratory training directly at points of entry. Thorough validation performed under laboratory and on-site conditions demonstrates that the reported LAMP assay is a rapid and reliable identification tool, improving the management of B. tabaci.

A Loop-mediated Isothermal Amplification LAMP Assay for Rapid Identification of Bemisia tabaci

This paper reports the protocol for a rapid identification assay for Bemisia tabaci based on loop-mediated isothermal amplification (LAMP) technology. The protocol requires minimal laboratory training and can, therefore, be implemented on-site at points of entry for plant imports such as seaports and airports.

Bir döngü-aracılı izotermal amplifikasyon (lamba) tahlil hızlı teşhis edilmesi için kullanılan Bemisia tabaci

The whitefly Bemisia tabaci (Gennadius) is an invasive pest of considerable importance, affecting the production of vegetable and ornamental crops in many ...

An Induction System for Clustered Stomata by Sugar Solution Immersion Treatment in Arabidopsis thaliana Seedlings

Stomatal movement mediates plant gas exchange, which is essential for photosynthesis and transpiration. Stomatal opening and closing are accomplished by a significant increase and decrease in guard cell volume, respectively. Because shuttle transport of ions and water occurs between guard cells and larger neighboring epidermal cells during stomatal movement, the spaced distribution of plant stomata is considered an optimal distribution for stomatal movement. Experimental systems for perturbing the spaced pattern of stomata are useful to examine the spacing pattern's significance. Several key genes associated with the spaced stomatal distribution have been identified, and clustered stomata can be experimentally induced by altering these genes. Alternatively, clustered stomata can be also induced by exogenous treatments without genetic modification. In this article, we describe a simple induction system for clustered stomata in Arabidopsis thaliana seedlings by immersion treatment with a sucrose-containing medium solution. Our method is easy and directly applicable to transgenic or mutant lines. Larger chloroplasts are presented as a cell biological hallmark of sucrose-induced clustered guard cells. In addition, a representative confocal microscopic image of cortical microtubules is shown as an example of intracellular observation of clustered guard cells. The radial orientation of cortical microtubules is maintained in clustered guard cells as in spaced guard cells in control conditions.

An Induction System for Clustered Stomata by Sugar Solution Immersion Treatment in Arabidopsis thaliana Seedlings

The goal of this protocol is to demonstrate how to induce clustered stomata in cotyledons of Arabidopsis thaliana seedlings by immersion treatment with a sugar-containing medium solution and how to observe intracellular structures such as chloroplasts and microtubules in the clustered guard cells using confocal laser microscopy.

Kümelenmiş stoma bantlı şeker çözüm daldırma tedavisinde Arabidopsis thaliana fidan tarafından için bir indüksiyon sistemi

Stomatal movement mediates plant gas exchange, which is essential for photosynthesis and transpiration. Stomatal opening and closing are accomplished by a ...

A Gnotobiotic System for Studying Microbiome Assembly in the Phyllosphere and in Vegetable Fermentation

The phyllosphere, the above ground portion of the plant that can be colonized by microbes, is a useful model system to identify processes of microbial community assembly. This protocol outlines a system for studying microbial community dynamics in the phyllosphere of Napa cabbage plants. It describes how to grow germ-free plants in test tubes with a calcined clay and nutrient broth substrate. Inoculation of germ-free plants with specific microbial cultures provides opportunities to measure microbial growth and community dynamics in the phyllosphere. Through the use of sterile vegetable extract produced from cabbages shifts in microbial communities that occur during fermentation can also be assessed. This system is relatively simple and inexpensive to set up in the lab and can be used to address key ecological questions in microbial community assembly. It also provides opportunities to understand how phyllosphere community composition can impact the microbial diversity and quality of vegetable fermentations. This approach for developing gnotobiotic cabbage phyllosphere communities could be applied to other wild and agricultural plant species.

A method of growing germ-free Napa cabbages has been developed which enables researchers to evaluate how single microbial species or multispecies microbial communities interact on cabbage leaf surfaces. A sterile vegetable extract is also presented which can be used to measure shifts in community composition during vegetable fermentation.

Fillosferde ve Bitkisel Fermantasyonda Mikrobiyom Montajı Nın İncelenmesi için Gnotobiyotik Sistem

The phyllosphere, the above ground portion of the plant that can be colonized by microbes, is a useful model system to identify processes of microbial ...