A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Method Article
We demonstrate the extraction of ammonium from an ammonium-rich stream using an electrochemical and a bioelectrochemical system. The reactor setup, operation and data analysis are discussed.
Streams such as urine and manure can contain high levels of ammonium, which could be recovered for reuse in agriculture or chemistry. The extraction of ammonium from an ammonium-rich stream is demonstrated using an electrochemical and a bioelectrochemical system. Both systems are controlled by a potentiostat to either fix the current (for the electrochemical cell) or fix the potential of the working electrode (for the bioelectrochemical cell). In the bioelectrochemical cell, electroactive bacteria catalyze the anodic reaction, whereas in the electrochemical cell the potentiostat applies a higher voltage to produce a current. The current and consequent restoration of the charge balance across the cell allow the transport of cations, such as ammonium, across a cation exchange membrane from the anolyte to the catholyte. The high pH of the catholyte leads to formation of ammonia, which can be stripped from the medium and captured in an acid solution, thus enabling the recovery of a valuable nutrient. The flux of ammonium across the membrane is characterized at different anolyte ammonium concentrations and currents for both the abiotic and biotic reactor systems. Both systems are compared based on current and removal efficiencies for ammonium, as well as the energy input required to drive ammonium transfer across the cation exchange membrane. Finally, a comparative analysis considering key aspects such as reliability, electrode cost, and rate is made.
This video article and protocol provide the necessary information to conduct electrochemical and bioelectrochemical ammonia recovery experiments. The reactor setup for the two cases is explained, as well as the reactor operation. We elaborate on data analysis for both reactor types and on the advantages and disadvantages of bioelectrochemical and electrochemical systems.
استرداد قيمة من منتجات مياه الصرف الصحي مكاسب أهمية عندما تصبح الموارد القيمة النادرة والعلاج دون الانتعاش لا يمثل سوى تكلفة. يحتوي كل من مياه الصرف الصحي الطاقة والمواد الغذائية التي يمكن استردادها، واستعادة المواد الغذائية يمكن أن يساعد على إغلاق حلقة إنتاج 1. استعادة الطاقة من خلال الهضم اللاهوائي هو عملية راسخة، في حين استعادة مغذيات التربة أقل شيوعا. وقد تم التحقيق استرداد المغذيات من مجاري النفايات السائلة مثل البول والروث على نطاق واسع، على سبيل المثال، من خلال إنتاج ستروفايت وتجريد مباشر من الأمونيا 2،3. ومع ذلك، فإن الحاجة إلى إضافة الكيميائية هو الجانب السلبي من هذه العمليات 4. هنا نقدم تقنية لاستعادة العناصر الغذائية الموجبة من مجاري النفايات، بما في ذلك كل من البوتاسيوم والأمونيوم. شكل الموجبة من هذه المواد الغذائية يسمح الانتعاش باستخدام غشاء انتقائي أيون في نظام الكهروكيميائية. في هذه الحالة، electrochemicويتكون نظام آل من غرفة الأنود (حيث يأخذ مكان الأكسدة)، وغرفة الكاثود (حيث يأخذ تخفيض مكان) وأيون غشاء انتقائي للفصل بين المقصورات. يتم تطبيق الجهد عبر الخلية لإنتاج تدفق التيار من القطب الموجب إلى القطب السالب. يمكن إنشاء هذا الجهد من مصدر طاقة خارجي لدفع الأكسدة المائية وردود الفعل التخفيض. بدلا من ذلك أكسدة انوديك، على سبيل المثال، المواد العضوية، ويمكن أن يحفزه البكتيريا electroactive، والتي تتطلب طاقة أقل. ليغلق الدائرة والحفاظ على التوازن تهمة، يجب على الأنواع اتهم تهاجر بين الأقطاب لكل إلكترون ولدت. وبالتالي يمكن نقل الأمونيوم من غرفة إلى غرفة الأنود الكاثود عبر غشاء تبادل الأيونات الموجبة (CEM) تعويض تدفق الإلكترونات 4،5.
تقنية المعروضة هنا ليس فقط يزيل الأمونيوم من مجاري النفايات، ولكن يمكن أيضا انتعاشها. مجموع نيتروجين الأمونيا (TAN) موجود في توازن كلا عمونالبوتاسيوم (NH 4 +) والأمونيا (NH 3)، ويعتمد على درجة الحموضة ودرجة الحرارة 6. NH 4 + غير متوفرة بكثرة نظرا لارتفاع تركيز TAN وبالقرب الرقم الهيدروجيني محايدة في غرفة الأنود وهذا النوع موجبة الشحنة وبالتالي يمكن أن تكون مدفوعة من قبل التيار عبر CEM في غرفة الكاثود. التيار يدفع الحد من الماء عند الكاثود، مما يؤدي إلى إنتاج أيونات الهيدروكسيد وغاز الهيدروجين. التحولات التوازن TAN إلى ما يقرب من 100٪ NH 3 نظرا لارتفاع درجة الحموضة في غرفة الكاثود (> 10.0). NH 3 هو الغاز الذي يمكن نقله بسهولة عن طريق دوران الهواء من وحدة تجريد لعمود الامتصاص حيث المحاصرين عليه وتتركز في محلول حامض.
هذه التكنولوجيا لديه القدرة على تقليل سمية الأمونيوم أثناء الهضم اللاهوائي للتيارات-N الغنية مثل السماد، وبالتالي زيادة استعادة الطاقة من مجاري النفايات تلك، بينما في وقت واحدالمواد الغذائية يتعافى 4. ويمكن أيضا استخراج الكهروكيميائية وbioelectrochemical الامونيوم تطبيقها كما تقنية الانتعاش المغذيات على مجاري النفايات ذات المحتوى العالي TAN مثل البول وبالتالي تجنب تكاليف إزالة المغذيات في محطات معالجة مياه الصرف 7.
بروتوكول المعروضة هنا يمكن أن تكون بمثابة أساس لكثير من التجارب الكهروكيميائية وbioelectrochemical مختلفة، ونحن استخدام مفاعل وحدات. تختلف أنواع القطب، والأغشية وسمك إطار يمكن الجمع كما هو موضح في بروتوكول أدناه. والهدف الرئيسي من البروتوكول هو توفير وسيلة للمقارنة من الانتعاش الأمونيوم الكهروكيميائية والانتعاش الأمونيوم الحيوية الكهروكيميائية باستخدام خلية التحليل الكهربائي. يتم تقييم النظم من حيث كفاءة الاستخراج، ومدخلات الطاقة والتكاثر.
1. تجميع مفاعل وتوصيل وحدات تجريد والاستيعاب
الشكل 1. الإعداد مفاعل لنظام bioelectrochemical تمكين استخراج الأمونيوم. ويعمل النظام المعروضة هنا في الوضع المستمر. خطوط الصلبة تمثل تدفق السائل، والخطوط المنقطة تمثل تدفق الغاز. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 2. الإعداد مفاعل لنظام bioelectrochemical تمكين استخراج الأمونيوم. ويعمل النظام المعروضة هنا في الوضع المستمر. خطوط الصلبة تمثل تدفق السائل، والخطوط المنقطة تمثل تدفق الغاز.ww.jove.com/files/ftp_upload/52405/52405fig2large.jpg "الهدف =" _ فارغة "> الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 3. تصميم الأطر مفاعل البرسبيكس. ويتألف كل مفاعل مفاعلين endplate و 2 حجرات المفاعل. جميع أجزاء لها سماكة 2 سم. تفاصيل بشأن حجم المواد الأخرى يمكن العثور عليها في قائمة المواد. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
2. Bioanode استخراج مدفوعة
عنصر | كمية | ||
نا 2 هبو 4 | 6 ز / L | ||
KH 2 PO 4 | 3 ز / L | ||
كلوريد الصوديوم | 0.5 غرام / L | ||
NH 4 الكلورين | 0.5 غرام / L | ||
MgSO 4 · 7H 2 O | 0.1 غرام / L | ||
CaCl 2 · 2H 2 O الحل (14.6 غرام / L) | 1 مل | ||
خلات الصوديوم | 2 ز / L (لبدء التشغيل) | ||
العناصر النزرة | 1 مل | ||
حل فيتامين | 1 مل | ||
العناصر النزرة (1،000x) | ز / L | الفيتامينات (1،000x) | ز / L |
كوكلي 2 | 0.1 | البيوتين | 0.004 |
نا 2 وزارة النفط 4 .2H 2 O | 0.01 | حمض الفوليك | 0.004 |
H 3 BO 3 | 0.01 | البيريدوكسين هيدروكلوريد | 0.02 |
2 ملغ كلور 2 .6H 2 O | 3 | الريبوفلافين | 0.01 |
ZnCl 2 | 0.1 | هيدروكلوريد الثيامين | 0.01 |
CaCl 2 .2H 2 O | 0.1 | حمض النيكوتينيك | 0.01 |
كلوريد الصوديوم | 1 | بانتوثينات DL-الكالسيوم | 0.01 |
nitrilotriacetic الحمضيه | 1.5 | فيتامين B12 | 0.0002 |
AlCl 3 .6H 2 O | 0.01 | ص حمض -aminobenzoic | 0.01 |
CuCl 2 | 0.01 | يبويك (thioctic) حمض | 0.01 |
FeCl 2 | 0.1 | ميو -inositol | 0.01 |
MnCl 2 .2H 2 O | 0.5 | كلوريد الكولين | 0.01 |
ضبط درجة الحموضة إلى 6.5 باستخدام KOH | نياسيتاميد | 0.01 | |
هيدروكلوريد بيريدكسال | 0.01 | ||
أسكوربات الصوديوم | 0.01 |
الجدول 1. Anolyte تكوين لاستخراج الأمونيوم الحيوي الأنود مدفوعة.
مرة | كمية من خلات الصوديوم تضاف إلى علف الأنود (ز / L) |
اليوم 0 - 35 يوم | 2 |
3 | |
يوم 37 - 51 يوم | 4 |
يوم 51 - 61 يوم | 5 |
الجدول 2. تركيز خلات الصوديوم في anolyte لاستخراج الأمونيوم bioanode مدفوعة.
مرة | كمية NH 4 HCO 3 تضاف إلى علف الأنود (ز / L) | مرحلة |
اليوم 0 - 16 يوم | 2.26 | أنا |
يوم 16 - 26 يوم | 4.5 | II |
يوم 26 - 33 يوم | 9 | III |
يوم 33 - 40 يوم | 14.1 | IV |
يوم 40 - 47 يوم | 20 | V |
يوم 47 - 54 يوم | 25.4 | VI |
يوم 54 - 63 يوم | 31 | VII |
الجدول 3. تركيز الأمونيوم في anolyte لاستخراج الأمونيوم bioanode مدفوعة. وأشار مراحل على الرسم البياني الكثافة الحالية (الشكل 2).
3. الكهروكيميائية استخراج
عنصر | كمية |
نا 2 هبو 4 .2H 2 O | 1.03 غرام / L |
KH 2 PO 4 | 0.58 غرام / L |
MgSO 4 · 7H 2 O | 0.1 غرام / L |
CaCl 2 .2H 2 O | 0.02 غرام / L |
(NH 4) 2 SO 4 | اعتمادا على التجربة، للحصول على 1/3/5 ز N / L التركيز النهائي |
الجدول 4. Anolyte تكوين لاستخراج الأمونيوم الكهروكيميائية 4.
4. تحليل عينة
5. تحليل البيانات والحسابات
ينتج Chronoamperometry من مفاعل حيوي
نتائج chronoamperometry، وتحسب وفقا لمعادلة 1، تظهر رسم بياني نموذجي لمفاعل مستمر (الشكل 4). في بداية التجربة، كانت تعمل الأنود والكاثود في وضع إعادة تدوير. وهذا يسمح بيوفيلم لتطوير وبداية ال?...
توفر هذه المخطوطة الأدوات اللازمة لانشاء bioelectrochemical وخلية كهروكيميائية لاسترداد الأمونيوم. الحسابات المقدمة في قسم النتائج وتوفر معايير لتقييم أداء النظام. النظم البيولوجية والكهروكيميائية متشابهة في الإعداد وظيفة. والفرق الرئيسي بين النظامين هو الخيار تيار ثابت ...
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by the BOF grant for SG from Ghent University. AL is supported by the Rutgers University NSF Fuels-IGERT. SA is supported by the European Union Framework Programme 7 project “ProEthanol 2G.” SA and KR are supported by Ghent University Multidisciplinary Research Partnership (MRP)—Biotechnology for a sustainable economy (01 MRA 510W). JD is supported by an IOF Advanced grant (F2012/IOF-Advanced/094). KR is supported by by the ERC Starter Grant “Electrotalk”. The authors thank Tim Lacoere for designing the TOC art figure, Robin Declerck for building the strip and absorption columns and Kun Guo for providing the inoculum source.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Carbon Felt 3.18 mm Thick | Alfa Aesar | ALFA43199 | Used as bioanode, 110 mm x 110 mm |
Ti electrode coated with Ir MMO | Magneto Special Anodes (The Netherlands) | Used as stable anode for electrochemical tests | |
Stainless steel mesh | Solana (Belgium) | RVS 554/64: material AISI 316L, mesh width: 564 micron, wire thickness: 140 micron, mesh number: 36,6 | Used as cathode, 110 mm x 110 mm |
Stainless steel plate | Solana (Belgium) | inox 304 sheet, thickness: 0,5mm | Used as current collector for the bioanode |
Ag/AgCl Reference Electrode | Bio-Logic (France) | A-012167 RE-1B | |
Potentiostat (VSP Multipotentiostat) | Bio-Logic (France) | ||
EC Lab | Bio-Logic (France) | software for performing electrochemistry measurements | |
Cation Exchange Membrane | Membranes International (USA) | Ultrex CMI-7000 | Pretreated according to the manufacturers' instructions |
Turbulence Promotor mesh | ElectroCell Europe A/S (Tarm, Denmark) | EPC20432-PP-2 | spacer material, 110 mm x 110 mm |
Connectors | Serto | 1,281,161,120 | Other sizes possible, dependant on tubing type and size of holes in frames |
Strip and absorption column | In house design | ||
Tubing | Masterflex | HV-06404-16 | |
Gas bag | Keika Ventures | Kynar gas bag with Roberts valve | |
Rashig Rings | Glasatelier Saillart (Belgium) | Raschig rings 4 x 4 mm | Put inside the strip and absorption column to improve the air/liquid contact. Available with many suppliers |
Rubber sheet | Cut to fit on the perspex frames | ||
Perspex reactor frames | Vlaeminck, Beernem | In-house design, see tab "reactor frames" in this file |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved