JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Erratum Notice
  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Erratum
  • Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. Read More ...

Summary

يمكن ملاحظة التنكس العصبي في كل من العينين والدماغ نتيجة لمرض السكري من خلال الاختبارات السلوكية التي أجريت على القوارض. توفر متاهة Y، وهي مقياس للإدراك المكاني، والاستجابة الحركية البصرية، وهي مقياس للوظيفة البصرية، نظرة ثاقبة على التشخيصات والعلاجات المحتملة.

Abstract

الاستجابة الحركية البصرية ومتاهة Y هي اختبارات سلوكية مفيدة لتقييم الوظيفة البصرية والمعرفية ، على التوالي. تعد الاستجابة الحركية البصرية أداة قيمة لتتبع التغيرات في عتبات التردد المكاني (SF) وحساسية التباين (CS) بمرور الوقت في عدد من نماذج أمراض الشبكية، بما في ذلك اعتلال الشبكية السكري. وبالمثل ، يمكن استخدام متاهة Y لمراقبة الإدراك المكاني (كما يقاس بالتناوب التلقائي) والسلوك الاستكشافي (كما يقاس بعدد من الإدخالات) في عدد من نماذج الأمراض التي تؤثر على الجهاز العصبي المركزي. تشمل مزايا الاستجابة الحركية البصرية ومتاهة Y الحساسية وسرعة الاختبار واستخدام الاستجابات الفطرية (ليست هناك حاجة إلى التدريب) ، والقدرة على القيام بها على الحيوانات المستيقظة (غير المخدرة). هنا ، يتم وصف البروتوكولات لكل من الاستجابة الحركية البصرية ومتاهة Y وأمثلة على استخدامها الموضحة في نماذج من مرض السكري من النوع الأول والنوع الثاني. وتشمل الأساليب إعداد القوارض والمعدات ، وأداء الاستجابة الحركية البصرية ومتاهة Y ، وتحليل بيانات ما بعد الاختبار.

Introduction

يعيش أكثر من 463 مليون شخص مصاب بمرض السكري، مما يجعله واحدا من أكبر أوبئة الأمراض العالمية1. أحد المضاعفات الخطيرة التي تنشأ عن مرض السكري هو اعتلال الشبكية السكري (DR) ، وهو سبب رئيسي للعمى للبالغين الأمريكيين في سن العمل2. في السنوات ال 30 المقبلة، من المتوقع أن تتضاعف النسبة المئوية للسكان المعرضين لخطر الإصابة بالحد من مخاطر الكوارث، لذلك من الأهمية بمكان إيجاد طرق جديدة لتشخيص الحد من مخاطر الكوارث في مراحلها المبكرة لمنع تطور الحد من مخاطر الكوارث3 والتخفيف من حدته. يعتقد تقليديا أن DR هو مرض وعائي4,5,6. ومع ذلك ، الآن مع وجود أدلة على خلل وظيفي عصبي وموت الخلايا المبرمج في شبكية العين التي تسبق أمراض الأوعية الدموية ، يتم تعريف DR على أنه يحتوي على مكونات عصبية وأوعية دموية4،5،6،7،8،9. تتمثل إحدى طرق تشخيص DR في فحص التشوهات العصبية في شبكية العين ، وهو نسيج قد يكون أكثر عرضة للإجهاد التأكسدي والإجهاد الأيضي من مرض السكري من الأنسجة العصبية الأخرى10.

يحدث الانخفاض في الوظيفة الإدراكية والحركية أيضا مع مرض السكري وغالبا ما يرتبط بتغيرات الشبكية. يصور الأفراد الأكبر سنا المصابون بداء السكري من النوع الثاني أداء معرفيا أساسيا أسوأ ويظهرون تدهورا معرفيا أكثر تفاقما من المشاركين في التحكم11. بالإضافة إلى ذلك ، تم إنشاء شبكية العين كامتداد للجهاز العصبي المركزي ويمكن أن تظهر الأمراض في شبكية العين12. سريريا، تمت دراسة العلاقة بين شبكية العين والدماغ في سياق مرض الزهايمر وأمراض أخرى ولكن لم يتم استكشافها بشكل شائع مع مرض السكري12،13،14،15،16. يمكن استكشاف التغيرات في الدماغ والشبكية أثناء تطور مرض السكري باستخدام نماذج حيوانية ، بما في ذلك الفئران STZ (نموذج لمرض السكري من النوع الأول حيث يتم استخدام السم أو الستربتوزوتوسين أو STZ ، لإتلاف خلايا بيتا البنكرياسية) وفئران Goto-Kakizaki (نموذج متعدد الجينات لمرض السكري من النوع الثاني حيث تتطور الحيوانات إلى ارتفاع السكر في الدم تلقائيا في حوالي 3 أسابيع من العمر). في هذا البروتوكول ، يتم توفير وصف لمتاهة Y والاستجابة الحركية البصرية لتقييم التغيرات المعرفية والبصرية في القوارض المصابة بالسكري ، على التوالي. تقوم الاستجابة الحركية البصرية (OMR) بتقييم التردد المكاني (على غرار حدة البصر) وحساسية التباين من خلال مراقبة حركات تتبع الرأس الانعكاسية المميزة لقياس العتبات البصرية لكل عين17. يشير التردد المكاني إلى سمك أو صفاء القضبان ، وتشير حساسية التباين إلى مقدار التباين الموجود بين القضبان والخلفية (الشكل 1E). وفي الوقت نفسه ، تختبر متاهة Y الذاكرة المكانية قصيرة المدى والوظيفة الاستكشافية ، التي لوحظت من خلال التناوب التلقائي والدخول من خلال أذرع المتاهة.

يمكن إجراء كلا الاختبارين في الحيوانات المستيقظة وغير المخدرة ولهما ميزة الاستفادة من الاستجابات الفطرية للحيوانات ، مما يعني أنها لا تتطلب التدريب. كلاهما حساس نسبيا ، حيث يمكن استخدامه للكشف عن العجز في وقت مبكر من تطور مرض السكري في القوارض ، وموثوق به ، من حيث أنه ينتج نتائج ترتبط باختبارات بصرية أو شبكية أو سلوكية أخرى. بالإضافة إلى ذلك ، فإن استخدام OMR ومتاهة Y بالاقتران مع اختبارات مثل التصوير الكهربائي للشكليات والتصوير المقطعي للتماسك البصري يمكن أن يوفر معلومات حول متى تتطور التغيرات الشبكية والهيكلية والمعرفية بالنسبة لبعضها البعض في نماذج الأمراض. يمكن أن تكون هذه التحقيقات مفيدة في تحديد التنكس العصبي الذي يحدث بسبب مرض السكري. في نهاية المطاف، يمكن أن يؤدي هذا إلى طرق تشخيصية جديدة تحدد بشكل فعال DR في المراحل المبكرة من التقدم.

يتم وصف أنظمة OMR و Y-maze المستخدمة لتطوير هذا البروتوكول في جدول المواد. تم استخدام البحث السابق حول OMR ، من قبل Prusky et al.18 ، و Y-maze ، بواسطة Maurice et al.19 ، كنقطة انطلاق لتطوير هذا البروتوكول.

Protocol

تمت الموافقة على جميع الإجراءات من قبل لجنة رعاية واستخدام الحيوانات المؤسسية لشؤون المحاربين القدامى في أتلانتا وتتوافق مع دليل المعاهد الوطنية للصحة لرعاية واستخدام المختبر (منشورات المعاهد الوطنية للصحة ، الطبعة 8th ، تم تحديثها عام 2011).

1. الاستجابة الحركية البصرية (OMR)

  1. إعداد جهاز OMR (تفاصيل عن الجهاز والبرامج في جدول المواد)
    1. اختر المنصة المناسبة للقوارض: الفأر أو الجرذ أو الفئران الكبيرة / الضعيفة (الشكل 1 أ).
    2. افتح برنامج OMR ، الذي يجب أن يفتح على نافذة بها عدة علامات تبويب للخيارات وبث فيديو مباشر من داخل OMR / الأسطوانة الافتراضية (الشكل 1B). قم بالتكبير أو التصغير باستخدام كاميرا الفيديو حسب الحاجة بحيث تكون المنصة والمناطق المحيطة بها مرئية.
    3. لاحظ الرموز الموجودة على الجانب الأيسر من الصورة الحية (الشكل 1C). انقر على أيقونة النجمة ورمز الخطوط الدوارة بحيث تختفي كل من العلامة النجمية الخضراء والخطوط الدوارة الخضراء من الخلاصة المباشرة.
    4. انقر على أيقونة البوصلة بحيث تظهر دائرة خضراء وخطان عموديان. قم بتمديد الدائرة الخضراء بحيث تتماشى تماما مع الدائرة السوداء على المنصة ، مما يضمن محاذاة OMR تماما.
    5. انقر على أيقونة البوصلة لأنه ليس من الضروري رؤية الدائرة أثناء الاختبار. انقر على أيقونة النجمة الخضراء ورمز الخطوط الدوارة الخضراء لجعلها تظهر مرة أخرى. لاحظ أن الخطوط الخضراء تدور في نفس اتجاه الخطوط الموجودة في الأسطوانة ، مما يسمح للباحث بمعرفة اتجاه الخطوط.
    6. انقر فوق علامة التبويب اختبار . ضمن اختبار، انقر فوق علامة التبويب الفيزياء النفسية . ضمن العتبة، حدد التردد لقياس التردد المكاني.
      ملاحظة: يستخدم برنامج OMR نموذج الدرج لحساب التردد المكاني (SF) تلقائيا. سيتم الحفاظ على التباين عند 100٪.
    7. ضمن اختبار، انقر فوق علامة التبويب الإعدادات المسبقة . حدد الإعدادات الافتراضية ل Mouse18 أو Rat20.
    8. ضمن اختبار، انقر فوق علامة التبويب إفراغ . حدد المربع فارغ على التتبع ، والذي سيوقف الخطوط مؤقتا / يفرغ شاشات الكمبيوتر في الأسطوانة كلما نقر الماوس بزر الماوس الأيمن.
    9. انقر فوق علامة التبويب النتائج ، حيث سيتم عرض نتائج الاختبار.
  2. تقييم التردد المكاني
    1. ضع القوارض على المنصة الدائرية في وسط غرفة الواقع الافتراضي التي تضم أربع شاشات كمبيوتر تظهر شبكات الموجة الجيبية العمودية التي تدور حول الغرفة بسرعة 12 درجة / ثانية (الشكل 1D).
    2. لاحظ أن كاميرا الفيديو الموضوعة في الجزء العلوي من الغرفة تعرض سلوك القوارض مباشرة على شاشة الكمبيوتر.
    3. ابحث عن وجود أو عدم وجود إجراءات انعكاسية من قبل رأس القوارض حيث تتحرك الشبكات في اتجاه عقارب الساعة أو عكس اتجاه عقارب الساعة. تأكد من أن الأشرطة المصورة مرئية في البرنامج - فستعرض هذه الأشرطة اتجاه حركة الصريف.
      1. راقب رأس القوارض للتحرك في نفس اتجاه الشبكات الشبكية. انتظر حتى يكون هناك سعي سلس ، وليس رشقات نارية غير منتظمة من حركة الرأس ، لاحتسابها على أنها تتبع.
      2. انقر على نعم أو لا حسب الاقتضاء. لاحظ أن SF سيبدأ ب 0.042 cyc / deg ويضبط مع كل نعم ولا ليصبح أسهل أو أكثر صعوبة (الشكل 1E). انقر فوق إعادة تعيين إذا كان الاختبار بحاجة إلى إعادة تعيين بسبب النقر العرضي أو غير الصحيح على نعم ولا.
    4. عند اختبار القوارض ، تأكد من إبقاء العلامة النجمية موضوعة فوق رأس القوارض.
      ملاحظة: هذا له تأثيران: 1) يحافظ على التردد المكاني الصحيح. إذا تم وضع العلامة النجمية بين الكتفين ، على سبيل المثال ، فسيكون التردد المكاني أقل وسيكون من الأسهل رؤية القضبان ، مما يؤدي إلى درجة عالية بشكل خاطئ. 2) بالنسبة للقوارض ذات حركات الرأس الطفيفة ، تسهل العلامة النجمية قياس ما إذا كان الرأس يتحرك بالفعل.
    5. راقب النظام ليقول "تم" عند الوصول إلى التردد المكاني للقوارض. لاحظ أن الزرين نعم ولا لن يكونا قابلين للنقر عليهما.
    6. انقر فوق علامة التبويب النتائج ، والتي ستعرض التردد المكاني للعين اليسرى والعين اليمنى والعينين المدمجتين.
      ملاحظة: في بعض الأحيان يتم تعيين البرنامج بحيث يتم قلب النتائج ، أي يتم الإبلاغ عن العين اليمنى كعين يسرى ويتم الإبلاغ عن العين اليسرى كعين أيمن. تم اكتشاف ذلك عند تقييم القوارض التي لديها آفة عين واحدة فقط في نموذج الجلوكوما.
  3. تقييم حساسية التباين
    ملاحظة: يمكن إجراء اختبار حساسية التباين مباشرة بعد خطوة قياس التردد المكاني أو من تلقاء نفسه في نفس اليوم أو في يوم مختلف إذا بدا القوارض متعبا بعد اختبار التردد المكاني (اتبع الخطوات من 1 إلى 2.2 إذا كان اختبار حساسية التباين فقط).
    1. انقر فوق علامة التبويب اختبار ثم فوق علامة التبويب الفيزياء النفسية . ضمن العتبة، حدد التباين (مفرد) لقياس حساسية التباين.
    2. أيضا باستخدام نموذج الدرج ، ابدأ الشبكات الشبكية بثابت SF في ذروة منحنى حساسية التباين (CS). للقيام بذلك ، انقر فوق علامة التبويب Stimulus ثم فوق علامة التبويب Gratings . في المربع التردد المكاني ، اكتب 0.064 للفئران و0.103 للفئران.
    3. ابدأ التباين بنسبة 100٪ وابحث عن نفس حركات الرأس الانعكاسية كما شوهدت أثناء اختبار التردد المكاني. لاحظ أن التباين سينخفض مع تقدم الاختبار حتى لا يكون لدى القوارض حركات رأس انعكاسية استجابة للحافز (الشكل 1E).
    4. راقب النظام ليقول "تم" ولم يعد الزران نعم ولا قابلين للنقر بمجرد أن لا يستجيب القوارض للتحفيز البصري ويتم الوصول إلى عتبة حساسية التباين. انقر فوق علامة التبويب النتائج ، حيث سيتم سرد حساسية التباين للعين اليسرى والعين اليمنى والعينين المدمجتين.
  4. إجراء تحليل ما بعد الاختبار
    1. بالنسبة لدراسات اعتلال الشبكية السكري، حيث من المتوقع أن تعاني كلتا العينين من عجز مماثل، استخدم النتيجة المجمعة (متوسط العينين اليمنى واليسرى) للتحليل. بالنسبة للنماذج التي تسبب أضرارا تفاضلية للعيون (أي إصابة الانفجار أو الجلوكوما)، أبق بيانات العين اليسرى واليمنى منفصلة.
    2. بالنسبة إلى التردد المكاني، استخدم الدرجات الأولية (البيانات من علامة التبويب النتائج ) للتحليل ومتوسط هذه الدرجات معا حسب المجموعة (أي مرضى السكري، والتحكم، وما إلى ذلك).
    3. بالنسبة إلى حساسية التباين، استخدم القيمة الأولية لحساب حساسية التباين المبلغ عنها بواسطة تباين Michelson من قياس سابق لسطوع الشاشة.

2. متاهة Y

  1. إعداد القوارض للاختبار
    1. تكييف القوارض إلى الغرفة لمدة 30 دقيقة قبل الاختبار.
      ملاحظة: يمكن للباحث البقاء في الغرفة مع إضاءة الأضواء ولكن يجب أن يظل صامتا خلال هذا الوقت.
    2. قم بتنظيف متاهة Y باستخدام محلول تعقيم آمن للحيوانات وامسح جميع حلول التعقيم بمناشف ورقية. تأكد من أن المتاهة جافة.
  2. إجراء متاهة Y
    1. قم بتسمية الذراع الأولي لمتاهة Y على أنها B والذراعين الآخرين على أنهما A و C (الشكل 2A). ضع أحد القوارض في الذراع الأقرب إلى الباحث (الذراع B) بالقرب من مركز متاهة Y. بمجرد وضع القوارض ، ابدأ تشغيل المؤقت (تفاصيل عن المتاهة والمؤقت في جدول المواد).
      1. اسمح لكل قوارض باستكشاف متاهة Y لمدة 8 دقائق. خذ التسجيلات خلال هذا الوقت ولاحظ أي ملاحظات. اجلس على بعد عدة أقدام من المتاهة مع إبقائها في الأفق وتجنب إصدار أي ضوضاء.
      2. سجل موقع البداية ك A ، وفي كل مرة يدخل فيها القوارض إلى ذراع جديدة ، سجل الموقع الجديد للقوارض (الشكل 2B). حدد الإدخال على أنه جميع الأطراف الأربعة للقوارض الموجودة في أحد الذراعين.
      3. راقب القوارض للاختباء والبقاء ثابتة في ذراع واحدة من المتاهة. إذا بقيت القوارض في نفس المكان لأكثر من 60 ثانية ولا يبدو أنها تظهر سلوكا استكشافيا ، فحرك القوارض نحو وسط متاهة Y ، واستمر في التجربة.
    2. بعد كل قوارض ، قم بإزالة أي براز وتنظيف المتاهة بمحلول التعقيم.
      1. تأكد من مسح جميع محلول التعقيم بالمناشف الورقية وأن المتاهة جافة تماما قبل وضع القوارض التالية في المتاهة.
  3. حساب التناوب التلقائي والسلوك الاستكشافي
    1. احسب السلوك الاستكشافي كإجمالي عدد الإدخالات التي تم إجراؤها خلال 8 دقائق.
    2. حساب الإدراك المكاني كما يقاس بالتناوب التلقائي:
      عدد البدائل الناجحة / (إجمالي عدد الإدخالات - 2)
      1. حدد التناوب الناجح عندما ينتقل القوارض إلى ثلاثة مواقع مختلفة بالتتابع (على سبيل المثال: ABC ، CAB ، BCA ، إلخ). لاحظ كل تناوب ناجح (الشكل 2B).
      2. إذا تم تسجيل الحركات على أنها ACABCABABCABC ، فتجاهل موقعي البدء الأوليين عند حساب التناوب التلقائي (بحيث يكون هناك 11 حركة في المقام). احسب عدد الحركات الدقيقة (الحركات الدقيقة = 8). احسب النسبة المئوية للدقة على النحو التالي: 8/(13 - 2) = 72.7٪.

النتائج

يعتبر OMR ناجحا إذا كان من الممكن الحصول على عتبات التردد المكاني وحساسية التباين من القوارض. هنا ، يتضح استخدام OMR لتقييم التردد المكاني في السيطرة الساذجة على الفئران براون النرويج ولونغ إيفانز ، وكلاهما شاب (3-6 أشهر) وعمره (9-12 شهرا). عادة ما تظهر الفئران البنية النرويجية ترددا مكانيا خطيا ?...

Discussion

يسمح OMR ومتاهة Y بالتقييم غير الغازي للوظيفة البصرية والعجز في الوظائف الإدراكية في القوارض بمرور الوقت. في هذا البروتوكول ، تم إثبات OMR ومتاهة Y لتتبع العجز البصري والمعرفي في نماذج القوارض من مرض السكري.

الخطوات الحاسمة في البروتوكول

ريال عماني

Disclosures

وليس لدى صاحبي البلاغ ما يكشفان عنه.

Acknowledgements

تم دعم هذا العمل من قبل جوائز التطوير الوظيفي لخدمة إعادة التأهيل وإعادة التأهيل التابعة لوزارة شؤون المحاربين القدامى (CDA-1, RX002111; CDA-2; RX002928) إلى RSA و (CDA-2 ، RX002342) إلى AJF والمعاهد الوطنية للصحة (NIH-NICHD F31 HD097918 إلى DACT و NIH-NIEHS T32 ES012870 إلى DACT) و NEI Core Grant P30EY006360.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
OptoMotry HDCerebralMechanics Inc.OMR apparatus & software
TimerThomas Scientific810029AR
Y-Maze apparatusSan Diego Instruments7001-043Available specifically for rats

References

  1. . International Diabetes Federation Diabetes Atlas, 9th edn Available from: https://diabetesatlas.org/upload/resources/material/20200302_133351_IDFATLAfinal-web.pdf (2019)
  2. Wang, W., Lo, A. C. Y. Diabetic retinopathy: pathophysiology and treatments. International Journal of Molecular Sciences. 19 (6), (2018).
  3. Akpek, E. K., Smith, R. A. Overview of age-related ocular conditions. The American Journal of Managed Care. 19 (5), 67-75 (2013).
  4. Urano, F. Wolfram syndrome: diagnosis, management, and treatment. Current Diabetes Reports. 16 (1), 6 (2016).
  5. Adeva-Andany, M. M., Funcasta-Calderón, R., Fernández-Fernández, C., Ameneiros-Rodríguez, E., Domínguez-Montero, A. Subclinical vascular disease in patients with diabetes is associated with insulin resistance. Diabetes & Metabolic Syndrome: Clinical Research & Reviews. 13 (3), 2198-2206 (2019).
  6. Chin, J. A., Sumpio, B. E. Diabetes mellitus and peripheral vascular disease: diagnosis and management. Clinics in Podiatric Medicine and Surgery. 31 (1), 11-26 (2014).
  7. Barber, A. J., Gardner, T. W., Abcouwer, S. F. The significance of vascular and neural apoptosis to the pathology of diabetic retinopathy. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (2), 1156-1163 (2011).
  8. Pardue, M. T., Allen, R. S. Neuroprotective strategies for retinal disease. Progress in Retinal and Eye Research. 65, 50-76 (2018).
  9. Aung, M. H., Kim, M. K., Olson, D. E., Thule, P. M., Pardue, M. T. Early visual deficits in streptozotocin-induced diabetic long evans rats. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 54 (2), 1370-1377 (2013).
  10. Antonetti, D. A., et al. Diabetic retinopathy: seeing beyond glucose-induced microvascular disease. Diabetes. 55 (9), 2401-2411 (2006).
  11. Logroscino, G., Kang, J. H., Grodstein, F. Prospective study of type 2 diabetes and cognitive decline in women aged 70-81 years. BMJ. 328 (7439), 548 (2004).
  12. London, A., Benhar, I., Schwartz, M. The retina as a window to the brain-from eye research to CNS disorders. Nature Reviews Neurology. 9 (1), 44-53 (2013).
  13. Archibald, N. K., Clarke, M. P., Mosimann, U. P., Burn, D. J. The retina in Parkinson's disease. Brain. 132 (5), 1128-1145 (2009).
  14. Sakai, R. E., Feller, D. J., Galetta, K. M., Galetta, S. L., Balcer, L. J. Vision in multiple sclerosis: the story, structure-function correlations, and models for neuroprotection. Journal of Neuroophthalmology. 31 (4), 362-373 (2011).
  15. Wong, T. Y., et al. Retinal microvascular abnormalities and incident stroke: the Atherosclerosis Risk in Communities Study. The Lancet. 358 (9288), 1134-1140 (2001).
  16. Marquié, M., et al. Association between retinal thickness and β-amyloid brain accumulation in individuals with subjective cognitive decline: Fundació ACE Healthy Brain Initiative. Alzheimer's Research & Therapy. 12 (1), 37 (2020).
  17. Thomas, B. B., Seiler, M. J., Sadda, S. R., Coffey, P. J., Aramant, R. B. Optokinetic test to evaluate visual acuity of each eye independently. Journal of Neuroscience Methods. 138 (1-2), 7-13 (2004).
  18. Prusky, G. T., Alam, N. M., Beekman, S., Douglas, R. M. Rapid quantification of adult and developing mouse spatial vision using a virtual optomotor system. Investigative Ophthalmology & Vision Science. 45 (12), 4611-4616 (2004).
  19. Maurice, T., et al. Behavioral evidence for a modulating role of σ ligands in memory processes. I. Attenuation of dizocilpine (MK-801)-induced amnesia. Brain Research. 647 (1), 44-56 (1994).
  20. Douglas, R. M., et al. Independent visual threshold measurements in the two eyes of freely moving rats and mice using a virtual-reality optokinetic system. Visual Neuroscience. 22 (5), 677-684 (2005).
  21. Feola, A. J., et al. Menopause exacerbates visual dysfunction in experimental glaucoma. Experimental Eye Research. 186, 107706 (2019).
  22. Allen, R. S., et al. TrkB signalling pathway mediates the protective effects of exercise in the diabetic rat retina. European Journal of Neuroscience. 47 (10), 1254-1265 (2018).
  23. Allen, R. S., et al. Retinal deficits precede cognitive and motor deficits in a rat model of type II diabetes. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (1), 123-133 (2019).
  24. Prusky, G. T., Harker, K. T., Douglas, R. M., Whishaw, I. Q. Variation in visual acuity within pigmented, and between pigmented and albino rat strains. Behavioural Brain Research. 136 (2), 339-348 (2002).
  25. Hwang, C. K., et al. Circadian rhythm of contrast sensitivity is regulated by a dopamine-neuronal PAS-domain protein 2-adenylyl cyclase 1 signaling pathway in retinal ganglion cells. Journal of Neuroscience. 33 (38), 14989-14997 (2013).
  26. Mui, A. M., et al. Daily visual stimulation in the critical period enhances multiple aspects of vision through BDNF-mediated pathways in the mouse retina. PLoS One. 13 (2), 0192435 (2018).
  27. Feola, A. J., et al. Menopause exacerbates visual dysfunction in experimental glaucoma. Experimental Eye Research. 186, 107706 (2019).
  28. Allen, R. S., et al. Long-term functional and structural consequences of primary blast overpressure to the eye. Journal of Neurotrauma. 35 (17), 2104-2116 (2018).
  29. Maaswinkel, H., Li, L. Spatio-temporal frequency characteristics of the optomotor response in zebrafish. Vision Research. 43 (1), 21-30 (2003).
  30. Benkner, B., Mutter, M., Ecke, G., Münch, T. A. Characterizing visual performance in mice: an objective and automated system based on the optokinetic reflex. Behavioral Neuroscience. 127 (5), 788-796 (2013).
  31. Lehmann, K., Schmidt, K. F., Löwel, S. Vision and visual plasticity in ageing mice. Restorative Neurology and Neuroscience. 30, 161-178 (2012).
  32. Leinonen, H., Tanila, H. Vision in laboratory rodents-tools to measure it and implications for behavioral research. Behavioral Brain Research. 352, 172-182 (2018).
  33. Spielmann, M., Schröger, E., Kotz, S. A., Pechmann, T., Bendixen, A. Using a staircase procedure for the objective measurement of auditory stream integration and segregation thresholds. Frontiers in Psychology. 4, 534 (2013).
  34. Shi, C., et al. Optimization of optomotor response-based visual function assessment in mice. Scientific Reports. 8 (1), 9708 (2018).
  35. You, M., Yamane, T., Tomita, H., Sugano, E., Akashi, T. A novel rat head gaze determination system based on optomotor responses. PLoS One. 12 (4), 0176633 (2017).
  36. Whyte, A. J., et al. Reward-related expectations trigger dendritic spine plasticity in the mouse ventrolateral orbitofrontal cortex. The Journal of Neuroscience. 39 (23), 4595-4605 (2019).

Erratum


Formal Correction: Erratum: Behavioral Assessment of Visual Function via Optomotor Response and Cognitive Function via Y-Maze in Diabetic Rats
Posted by JoVE Editors on 1/05/2022. Citeable Link.

An erratum was issued for: Behavioral Assessment of Visual Function via Optomotor Response and Cognitive Function via Y-Maze in Diabetic Rats. The author list was updated.

The author list was updated from:

Kaavya Gudapati*1,2, Anayesha Singh*1,3, Danielle Clarkson-Townsend1,4, Andrew J. Feola1,2, Rachael S. Allen1,2
1Center for Visual and Neurocognitive Rehabilitation, Atlanta VA Medical Center,
2Department of Biomedical Engineering, Georgia Institute of Technology,
3Department of Neuroscience, Emory University,
4Gangarosa Department of Environmental Health, Emory University
* These authors contributed equally

to:

Kaavya Gudapati*1,2, Anayesha Singh*1,3, Danielle Clarkson-Townsend1,4, Stephen Q. Phillips1, Amber Douglass1, Andrew J. Feola1,2, Rachael S. Allen1,2
1Center for Visual and Neurocognitive Rehabilitation, Atlanta VA Medical Center,
2Department of Biomedical Engineering, Georgia Institute of Technology,
3Department of Neuroscience, Emory University,
4Gangarosa Department of Environmental Health, Emory University
* These authors contributed equally

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

164 Y

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved