Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

تمثل محللات الصفائح الدموية أداة ناشئة لعلاج أمراض سطح العين. هنا ، نقترح طريقة لإعداد وتوزيع وتخزين وتوصيف محللات الصفائح الدموية التي تم جمعها من المتبرعين بالصفائح الدموية.

Abstract

يتم علاج أمراض سطح العين المختلفة بقطرات العين المشتقة من الدم. تم إدخال استخدامها في الممارسة السريرية بسبب محتواها من المستقلب وعامل النمو ، مما يعزز تجديد سطح العين. يمكن تحضير قطرات العين القائمة على الدم من مصادر مختلفة (أي التبرع بالدم الكامل أو فصادة الصفائح الدموية) ، وكذلك مع بروتوكولات مختلفة (على سبيل المثال ، التخفيفات المختلفة ودورات التجميد / الذوبان). هذا التباين يعوق توحيد البروتوكولات السريرية ، وبالتالي تقييم فعاليتها السريرية. وقد يسهم تفصيل الإجراءات المنهجية وتبادلها في تحديد مبادئ توجيهية مشتركة. على مدى السنوات الماضية ، تم نشر المنتجات الخيفية كبديل للعلاجات الذاتية لأنها تضمن معايير فعالية أعلى. من بينها ، يتم تحضير قطرات العين الغنية بالبلازما الغنية بالصفائح الدموية (PRP-L) بإجراءات تصنيع بسيطة. في وحدة طب نقل الدم في AUSL-IRCCS di Reggio Emilia ، إيطاليا ، يتم الحصول على PRP-L من التبرع بفصادة الصفائح الدموية. يتم تخفيف هذا المنتج في البداية إلى 0.3 × 10 9 صفائح دموية / مل (بدءا من متوسط تركيز 1 × 10 9 صفائح دموية / مل) في0.9٪ كلوريد الصوديوم. يتم تجميد / إذابة الصفائح الدموية المخففة ، وبالتالي يتم طردها بالطرد المركزي لإزالة الحطام. ينقسم الحجم النهائي إلى 1.45 مل من القسمة ويخزن عند -80 درجة مئوية. قبل صرفها للمرضى ، يتم اختبار قطرات العين للعقم. يمكن للمرضى تخزين محللات الصفائح الدموية في -15 درجة مئوية لمدة تصل إلى 1 شهر. يتم تقييم تكوين عامل النمو أيضا من القسمة المختارة عشوائيا ، ويتم الإبلاغ عن القيم المتوسطة هنا.

Introduction

تستخدم المنتجات المشتقة من الدم على نطاق واسع في العناية بالجروح1 ، وجراحة الوجه والفكين والعظام ، ولعلاج أمراض سطح العين المختلفة2 مثل مرض جفاف العين (DED) 3. في DED ، يضعف توازن الفيلم المسيل للدموع نتيجة للأداء غير الطبيعي للعوامل المختلفة المشاركة في إنتاج المسيل للدموع وسلامة سطح العين 4,5.

تتميز DED بعدم التجانس في الأسباب والشدة6،7،8 وقد تكون نتيجة لعوامل مختلفة مثل الشيخوخة أو الجنس9 أو العدسات اللاصقة أو الأدوية الموضعية أو الجهازية 10 أو الحالات الموجودة مسبقا مثل متلازمة سجوجرن10. على الرغم من وجود أعراض خفيفة ، تؤثر دائرة التنمية الاقتصادية على ملايين الأشخاص في جميع أنحاء العالم ، مما يؤثر على نوعية حياتهم والنظام الصحي أيضا6.

تم الإبلاغ عن العديد من العلاجات لهذا المرض ، ولكن لا يوجد حتى الآن توافق في الآراء حول الحل الأكثر فعالية12. حتى الآن ، الدموع الاصطناعية هي الخط الأول من العلاج الذي يهدف إلى استعادة التركيب المائي للفيلم المسيل للدموع ، وإن كانت هذه البدائل لا تحتوي على المواد المذابة النشطة بيولوجيا الرئيسية للدموع الطبيعية 6,11. تعتبر المنتجات القائمة على الصفائح الدموية بديلا صالحا12,13 للدموع الاصطناعية ، على الرغم من أن فعاليتها السريرية وتوصيات الاستخدام وطرق التحضير لا تزال موضع نقاش3.

تشترك المنتجات القائمة على الدم مع الدموع في تركيبة مماثلة من حيث المستقلبات14 والبروتينات والدهون والفيتامينات والأيونات وعوامل النمو (GFs) والمركبات المضادة للأكسدة 11 والأسمولية (300 mOsm / L)11. من خلال النشاط التآزري لمكوناتها ، فإنها تعزز تجديد ظهارة القرنية ، وتمنع إطلاق السيتوكينات الالتهابية ، وتزيد من عدد الخلايا الكأسية والتعبير عن الميوسين في الملتحمة 2,3.

حتى الآن ، تم توثيق عدم التجانس في المنتجات القائمة على الدم العينية في الأدبيات. يمكن تصنيف هذه المنتجات وفقا لأصل المتبرعين بالدم ، أي ذاتي أو خيفي ، وكذلك مصدر الدم ، أي الدم المحيطي أو دم الحبل السري أو المصل أو الصفائح الدموية.

على الرغم من أن المنتجات الذاتية كانت الأكثر انتشارا3 ، إلا أن المنتجات الخيفية أصبحت الآن الخيار المفضل ، لأنها تضمن معايير فعالية وسلامة أعلى 15 ، إلى جانب انخفاض كبير في التكاليف16,17. أثبتت الدراسات السابقة ، في الواقع ، أن المنتجات القائمة على الدم التي تم الحصول عليها من المرضى الذين يعانون من أمراض المناعة الذاتية و / أو الجهازية قد تظهر جودة ووظائف متغيرة6،16،17. على الرغم من حقيقة أن قطرات العين القائمة على المصل هي الأكثر انتشارا ، إلا أن المنتجات القائمة على الصفائح الدموية أصبحت مؤخرا مؤكدة كبديل صالح ، حيث يمكن تحضيرها بسهولة مع الحفاظ على مستويات كبيرة من الفعالية 3,11. يمكن تقسيم المنتجات القائمة على الصفائح الدموية المتاحة حاليا إلى بلازما غنية بالصفائح الدموية (PRP) ، ومحللة بلازما غنية بالصفائح الدموية (PRP-L) ، وبلازما غنية بعوامل النمو (PRGF)3.

من بينها ، يتمتع PRP-L بميزة كونه منتجا مجمدا طويل العمر. يمكن تحضير PRP-L من الفصادة أو المعاطف أو حتى من الصفائح الدموية منتهية الصلاحية (PLTs)18,19 ، مما يقلل من هدرها. يمكن تخزين القسمة لعدة أشهر في مراكز نقل الدم عند -80 درجة مئوية أو حتى في منازل المرضى عند -15 درجة مئوية لفترات أقصر.

PRP-L غني للغاية في GFs ، والتي ثبت أنها تحفز تجديد سطح العين12،20،21. ومع ذلك ، لا يوجد سوى عدد قليل من الدراسات السريرية المبلغ عنها في هذا المجال ، وكلها تستخدم مصادر ذاتية 3,22. لا يزال PRP-L بحاجة إلى مزيد من التحقق والتوصيف قبل أن يتم استخدامه بشكل روتيني لعلاج أمراض سطح العين ، حيث لا توجد إرشادات موحدة لإعداده وتوزيعه وتخزينه3.

هنا ، يتم مشاركة بروتوكول مفصل لإنتاج PRP-L المستخدم في وحدة طب نقل الدم في AUSL-IRCCS di Reggio Emilia ، إيطاليا ، والاستغناء عن المرضى الذين يعانون من DED. نهدف إلى مساعدة المجتمع العلمي على تطوير طرق قياسية للتحضير ، والتي قد تزيد من التجانس والاتساق في الدراسات والأساليب السريرية في جميع أنحاء العالم.

Protocol

تم جمع PRP-L المستخدم للتقييم الكمي لعوامل النمو ضمن دراسة أوسع حول توصيف منتجات PRP لأغراض التجديد ، والتي أجريت في AUSL-IRCCS di Reggio Emilia ووافقت عليها لجنة أخلاقيات المنطقة Vasta Emilia Nord في 10 يناير 2019 (رقم البروتوكول 2019/0003319). أعطى المانحون موافقتهم المستنيرة وفقا لإعلان هلسنكي. لم تكن الموافقة الأخلاقية ضرورية لجمع البيانات المجمعة والمجهولة لاستبيان مؤشر أمراض سطح العين (OSDI) ، والذي يستخدمه الأطباء بشكل روتيني لمراقبة أعراض متلازمة العين الجافة. يوضح الشكل 1 أ مخططا للبروتوكول المتبع ، بينما توضح الصور في الشكل 1 ب الخطوات الرئيسية للإجراء.

1. مجموعة البلازما الغنية بالصفائح الدموية (PRP)

  1. فصادة PRP
    1. بالنسبة لهذا البروتوكول ، حدد المتبرعين بالصفائح الدموية وفقا للقوانين الإيطالية: يجب أن يتراوح عمر المتبرعين بالصفائح الدموية بين 18 و 65 عاما ، مع الضغط الطبيعي ومعلمات تعداد الدم وعدد الصفائح الدموية لا يقل عن 180 × 109 صفائح دموية / لتر23. لا يمكن للمتبرعين المؤهلين تناول الأدوية المضادة للصفيحات أو مضادات التخثر في غضون 1 أسبوع قبل التبرع.
    2. إجراء فصادة البلازما والصفائح الدموية باستخدام نظام آلي لجمع الدم ، وفقا لتعليمات الشركات المصنعة والقوانين الوطنية23 ، للحصول على 1 وحدة من البلازما الغنية بالصفائح الدموية من متبرع واحد (PRP). جمع PRP في الأدينين سيترات سكر العنب الحل A (ACD-A) محلول مضاد للتخثر.
      ملاحظة: يتم إجراء فصادة الصفائح الدموية مع إجراء مستمر. يتراوح وقت التجميع بين 40 دقيقة و 90 دقيقة. تعتمد كمية ACD التي يتم تسليمها إلى المتبرعين ووقت الإجراءات على خصائص المتبرع ، على سبيل المثال ، مقياس الهيماتوكريت والإبرة.
  2. خصائص وحدات PRP
    ملاحظة: عادة ما يتم تنفيذ الخطوة التالية تلقائيا بواسطة نظام جمع الدم الآلي أثناء إجراء فصادة البلازما والصفائح الدموية. يرجى مراجعة دليل تعليمات الشركة المصنعة.
    1. إعادة تعليق وحدات PRP التي تم جمعها عن طريق الفصادة في كمية كافية من محلول حافظة مع الحد الأدنى من كمية البلازما المتبقية ، اللازمة للحفاظ على درجة الحموضة > 6.4 خلال فترة التخزين بأكملها ، إلى متوسط حجم نهائي يبلغ 180 مل صافي من المحلول المضاد للتخثر (حوالي 40 مل).
      ملاحظة: وفقا للقانون الإيطالي ، يجب أن تقيم ضوابط الجودة أن عدد الصفائح الدموية (PLTs) لا يقل عن 2.0 × 10 11 PLTs / وحدة ، في حين أن الكريات البيض المتبقية يجب أن تكون أقل من 1 ×10 6 خلايا / وحدة.
    2. قم بتخزين البلازما الغنية بالصفائح الدموية المشعة والمشعة لمدة أقصاها 5 أيام عند 22 درجة مئوية ± 2 درجة مئوية على شاكر الصفائح الدموية قبل مزيد من التلاعب23.
  3. تخفيف PRP
    1. مباشرة قبل بدء تخفيف PRP ، قم بإجراء عدد PLT باستخدام مقياس الدم باستخدام العينة التي تم جمعها من الكيس الرئيسي من خلال مسمار ثقب.
      ملاحظة: قم بتنفيذ الخطوات التالية في العقم تحت غطاء الخطر البيولوجي من الفئة الثانية. ارتد معدات الحماية الشخصية (معطف المختبر والقفازات والنظارات الواقية) أثناء العملية.
    2. تمييع PRP بكمية كافية من 0.9٪ كلوريد الصوديوم المعقم إلى تركيز نهائي قدره 0.32 × 10 9 ± 0.03 × 109 PLTs / مل ، والذي يحاكي متوسط تركيز PLT في الدم المحيطي.
    3. الاستفادة من ارتفاع ثقب لأكياس الدم ، قسم PRP المخفف إلى أكياس تجميع فارغة 300 مل للوصول إلى حجم صاف يبلغ 190 مل / كيس.
    4. استخدم حصة من PRP المخفف المتبقي (عادة 1 مل) لإجراء ضوابط الجودة لتقييم الملوثات الميكروبية المحتملة. قم بإجراء فحص العقم باتباع تعليمات الشركة المصنعة في مختبر الأحياء الدقيقة (انظر جدول المواد).
      ملاحظة: استخدم قوارير الاستزراع الخاصة بمزارع الدم الهوائية ، والتي تكون قادرة على إجراء الثقافة النوعية واستعادة الكائنات الحية الدقيقة الهوائية (البكتيريا والخميرة بشكل أساسي) من عينات الدم صغيرة الحجم.
    5. قم بتخزين أكياس PRP المخففة عند -80 درجة مئوية لمدة أقصاها 2 أشهر قبل الذوبان.

2. إعداد محللة البلازما الغنية بالصفائح الدموية (PRP-L)

  1. ذوبان الجليد
    1. قبل البدء في إجراء الإذابة ، تأكد من ضبط الحمام الدافئ على 37 درجة مئوية. ضع أكياس PRP في الحمام الدافئ وانتظر حتى تذوب تماما.
  2. مجموعة PRP-L
    1. أجهزة الطرد المركزي أكياس PRP في 3000 × غرام لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
      ملاحظة: يجب تنفيذ الخطوات التالية في العقم تحت غطاء الخطر البيولوجي من الفئة الثانية.
    2. استغلال السنبلة الخارقة لحقيبة النقل ، قم بتوصيل كيس الطرد المركزي بكيس نقل معقم فارغ سعة 300 مل. بعناية ، انقل طافي PRP-L ، مع تجنب الحطام ، إلى الكيس الجديد. عندما يكون ذلك ممكنا ، استخدم مكبس الأكياس.
    3. أغلق أنبوب التوصيل لوحدة PRP-L باستخدام كيس مانع السدادة.
  3. PRP-L aliquote
    ملاحظة: وحدة البدء التي تحتوي على 190 مل من PRP (انظر الخطوة 1.3.3.) كافية لملء مجموعتين من قطرات العين (للحصول على تفاصيل حول الأجهزة الطبية المحددة المستخدمة لتطبيق وحفظ قطرات العين من مكونات الدم ، انظر جدول المواد). يجب فتح مجموعات قطرات العين تحت غطاء من الفئة الثانية مع وضع قوارير السلسلة بأكملها فوق المحقنة المتصلة مسبقا والسهم المركزي لمحبس يشير إلى اليسار لاستبعاد المرشح المضاد للبكتيريا.
    1. اجمع 30-60 مل من PRP-L باستخدام حقنة معقمة واربط المحقنة بوصلة Luer / lock على خط التعبئة.
    2. وفقا لتعليمات الشركة الصانعة ، أدر المحبس بمقدار نصف دورة لفتح الخط الفاصل بين المحقنة المحتوية على PRP-L والمحقنة المتصلة مسبقا. املأ المحقنة المتصلة مسبقا ب PRP-L.
    3. افصل حقنة PRP-L ، وأغلق غطاء الأنبوب الخاص بوصلة luer / lock وقم بتدوير محبس إلى الموضع الأصلي. استخدم حقنة مجموعة قطرات العين لملء القوارير ب PRP-L.
    4. كرر الإجراء من الخطوات 2.3.1.-2.3.3. حتى يتم ملء جميع قوارير قضيب. تأكد من ملء كل قضيب بشكل صحيح ، ثم أغلقه بشكل فردي باستخدام كيس مانع التسرب.
    5. كرر الإجراء مع مجموعة قطرات العين الجديدة.
    6. استخدم حصة صغيرة من PRP-L المخفف المتبقي لتقييم التلوث الميكروبي المحتمل (انظر الخطوة 1.3.4).
      ملاحظة: إذا وصل السائل عن طريق الخطأ إلى المرشح المضاد للبكتيريا في نهاية الخيط ، فقد تقاوم حقنة الشفط المقاومة ، مما يعيق الحشوة. لمواصلة دورة التعبئة ، ارفع الجزء النهائي من السلسلة لحوالي 5/6 حصص من المرشح المضاد للبكتيريا الكارهة للماء في نهاية الخيط. في هذا الوضع ، استخدم حقنة معقمة جديدة (بحجم 30 مل) مملوءة بالفعل بالهواء. قم بتوصيل القفل الأنثوي للمرشح المضاد للبكتيريا واضغط بقوة وبشكل متكرر على مكبس المحقنة لإزالة جميع بقايا مكون الدم وجعل غشاء المرشح المضاد للبكتيريا خاليا من السائل. إزالة حقنة وملء قوارير المتبقية.
  4. تخزين PRP-L
    1. قم بتسمية كل قضيب بشكل صحيح وضعه في كيس بلاستيكي. قم بتسمية الكيس البلاستيكي أيضا ، مع الحرص على إبراز فصيلة دم المتبرع.
    2. يخزن في درجة حرارة -80 درجة مئوية لمدة أقصاها 24 شهرا قبل تعيين المريض ، وفقا للقانون الإيطالي23 والإرشادات24.

3. الاستغناء عن PRP-L

  1. أداء مهمة المريض ويفضل أن يكون ذلك عن طريق مطابقة فصيلة الدم PRP-L. قم بتوصيل قوارير قضيب PRP-L باستخدام صندوق بارد وتأكد من أن كل قارورة قضيب تحتوي على 1.45 مل من PRP-L ، وهو ما يعادل حوالي 45 نقطة. إرشاد المريض إلى أنه يمكن تخزين قوارير القضيب في منازل المرضى لمدة تصل إلى شهر واحد عند -15 درجة مئوية.

النتائج

يكمن الأساس المنطقي لاستخدام قطرات العين المشتقة من المصل (وهو المنتج القائم على الدم الأكثر استخداما لعلاج أمراض سطح العين) في محتواها من GFs ، والتي يتم اشتقاقها بالكامل تقريبا من الصفائح الدموية المتداولة. يحتوي PRP على عدد أكبر بكثير من الصفائح الدموية (وبالتالي ، من GFs المشتقة من الصفائح...

Discussion

في السنوات الأخيرة ، زاد الاستخدام السريري للمنتجات القائمة على الصفائح الدموية لأمراض سطح العين ، ولكن انتشارها يعوقه الافتقار إلى المتانة العلمية. ويعزى ذلك أساسا إلى عدم التجانس الواسع في مصادر المانحين وبروتوكولات الإعداد، التي غالبا ما لا يتم الكشف عنها بالكامل أو لا تصمم خصيصا للغ...

Disclosures

يعلن المؤلفون عدم وجود تضارب في المصالح.

Acknowledgements

يود المؤلفون أن يشكروا "Casa del Dono di Reggio Emilia" على توفير مركزات الصفائح الدموية المشتقة من المانحين.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Equipments
CompoSeal Mobilea IIFresenius Kabi, Germanybag sealer
HeraSafe hoodHeraeus Instruments, GermanyClass II biohazard hood
MCS+ 9000 Mobile Platelet Collection SystemHaemonetics, Italyautomated plasma and multicomponent collection equipment for donating platelet, red cell, plasma, or combination blood components
Platelet shaker, PF396iHelmer, USAPlatelet shaker
Raycell X-ray Blood IrradiatorMDS Nordion, CanadaX-ray Blood Irradiator
ROTIXA 50RSHettich Zentrifugen, GermanyHigh speed entrifuge
Sysmex XS-1000iSysmex Europe GMBH, Germanyhaemocytometer for platelet count
Warm bath, WB-M15Falc Instruments, ItalyWarm bath
Materials
ACD-A anticoagulant solution AFenwal Inc., USADIN 00788139anticoagulant solution for platelet apheresis (1000 ml)
BD BACTEC Peds Plus/F Culture vialsBD Biosciences, USABD 442020Sterility assay
BD BACTEC Peds Plus/F Culture vialsBD Biosciences, USA442020At least 2 vials for sterility assay
BD Luer Lok SyringeBD Plastipack, USA300865At least 4 sterile syringes (50 ml)
Bio-Plex Human Cancer Panel 1BioRad Laboratories, USA171AC500MStandard panel for PDGF isoforms assessment
Bio-Plex Human Cancer Panel 2BioRad Laboratories, USA171AC600MStandard panel for EGF assessment
Bio-Plex MAGPIX Multiplex ReaderBioRad Laboratories, USAMagpixThis instrument allows multiple immunoassays using functionalized magnetic beads.
Bio-Plex Pro TGF-b AssayBioRad Laboratories, USA10024984Set and standards for TGFb isoforms assessment
BioRetARIES s.r.l., ItalyA2DH0020At least 4 piercing spike for blood bags
Blood collection tubeBD Vacutainer, USA3678351 tube, necessary to perform platelet counts
Eye drops kit. COL Medical Device for the application and preservation of eye drops from haemocomponentsBiomed Device s.r.l., ItalyCOLC50Eye drops kit. At least 2 kits for each PRP unit collected
Human Cancer PDGF-AB/BB Set 1x96wellBioRad Laboratories, USA171BC511Set for PDGF isoforms assessment
Human Cancer2 EGF Set 1x96wellBioRad Laboratories, USA171BC603MSet for EGF assessment
NaCl 0.9% sterile solutionBaxter S.p.A., ItalyB05BB011000 ml
OSDI QuestionnaireAllergan Inc., USAOSDIOcular Surface Disease Index Questionnaire
Piercing spikeBioRet ARIES s.r.l., ItalyBS051004Spike
Platelet Additive Solution A+ T-PAS+TERUMO BCT Inc., Italy40842preservative solution for platelet concentrates (1000 ml)
Software ExcelMicrosoft, USAExcelData analysis software
Teruflex Transfer bag 1000 mlTERUMO BCT Inc., ItalyBB*T100BM1 for PRP dilution
Teruflex Transfer bag 300 mlTERUMO BCT Inc., ItalyBB*030CMAt least 6 for each PRP unit collected

References

  1. Everts, P. A., et al. Platelet-rich plasma and platelet gel: A review. The Journal of Extra-Corporeal Technology. 38 (2), 174 (2006).
  2. Giannaccare, G., et al. Blood derived eye drops for the treatment of cornea and ocular surface diseases. Transfusion and Apheresis Science. 56 (4), 595-604 (2017).
  3. Bernabei, F., et al. Blood-based treatments for severe dry eye disease: The need of a consensus. Journal of Clinical Medicine. 8 (9), 1478 (2019).
  4. Findlay, Q., Reid, K. Dry eye disease: When to treat and when to refer. Australian Prescriber. 41 (5), 160-163 (2018).
  5. Clayton, J. A. Dry eye. New England Journal of Medicine. 378 (23), 2212-2223 (2018).
  6. Jones, L., et al. TFOS DEWS II management and therapy report. The Ocular Surface. 15 (3), 575-628 (2017).
  7. Holland, E. J., Darvish, M., Nichols, K. K., Jones, L., Karpecki, P. M. Efficacy of topical ophthalmic drugs in the treatment of dry eye disease: A systematic literature review. The Ocular Surface. 17 (3), 412-423 (2019).
  8. Shih, K. C., Lun, C. N., Jhanji, V., Thong, B. Y. H., Tong, L. Systematic review of randomized controlled trials in the treatment of dry eye disease in Sjogren syndrome. Journal of Inflammation. 14, 26 (2017).
  9. Rusciano, D., et al. Age-related dry eye lactoferrin and lactobionic acid. Ophthalmic Research. 60 (2), 94-99 (2018).
  10. Craig, J. P., et al. TFOS DEWS II definition and classification report. The Ocular Surface. 15 (3), 276-283 (2017).
  11. Drew, V. J., Tseng, C. L., Seghatchian, J., Burnouf, T. Reflections on dry eye syndrome treatment: Therapeutic role of blood products. Frontiers in Medicine. 5, 33 (2018).
  12. Giannaccare, G., et al. Blood derived eye drops for the treatment of cornea and ocular surface diseases. Transfusion and Apheresis Science. 56 (4), 595-604 (2017).
  13. Acebes-Huerta, A., et al. Platelet-derived bio-products: Classification update, applications, concerns and new perspectives. Transfusion and Apheresis Science. 59 (1), 102716 (2020).
  14. Quartieri, E., et al. Metabolomics comparison of cord and peripheral blood-derived serum eye drops for the treatment of dry eye disease. Transfusion and Apheresis Science. 60 (4), 103155 (2021).
  15. Badami, K. G., McKellar, M. Allogeneic serum eye drops: Time these became the norm. British Journal of Ophthalmology. 96 (8), 1151-1152 (2012).
  16. Hwang, J., et al. Comparison of clinical efficacies of autologous serum eye drops in patients with primary and secondary Sjögren syndrome. Cornea. 33 (7), 663-667 (2014).
  17. Chiang, C. C., Lin, J. M., Chen, W. L., Tsai, Y. Y. Allogeneic serum eye drops for the treatment of severe dry eye in patients with chronic graft-versus-host disease. Cornea. 26 (7), 861-863 (2007).
  18. Jonsdottir-Buch, S. M., Lieder, R., Sigurjonsson, O. E. Platelet lysates produced from expired platelet concentrates support growth and osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells. PLoS One. 8 (7), 68984 (2013).
  19. Altaie, A., Owston, H., Jones, E. Use of platelet lysate for bone regeneration - Are we ready for clinical translation. World Journal of Stem Cells. 8 (2), 47-55 (2016).
  20. Vesaluoma, M., Teppo, A. M., Grönhagen-Riska, C., Tervo, T. Platelet-derived growth factor-BB (PDGF-BB) in tear fluid: A potential modulator of corneal wound healing following photorefractive keratectomy. Current Eye Research. 16 (8), 825-831 (1997).
  21. Zheng, X., et al. Evaluation of the transforming growth factor β activity in normal and dry eye human tears by CCL-185 cell bioassay. Cornea. 29 (9), 1048 (2010).
  22. Zamani, M., et al. Novel therapeutic approaches in utilizing platelet lysate in regenerative medicine: Are we ready for clinical use. Journal of Cellular Physiology. 234 (10), 17172-17186 (2019).
  23. Ministro della Salute. Disposizioni relative ai requisiti di qualità e sicurezza del sangue e degli emocomponenti. Italian Ministry of Health. , (2015).
  24. Aprili, G., et al. Raccomandazioni SIMTI sugli emocomponenti per uso non trasfusionale. Società Italiana di Medicina Trasfusionale e Immunoematologia. , (2012).
  25. Schiroli, D., et al. Comparison of two alternative procedures to obtain packed red blood cells for β-thalassemia major transfusion therapy. Biomolecules. 11 (11), 1638 (2021).
  26. Pulcini, S., et al. Apheresis platelet rich-plasma for regenerative medicine: An in vitro study on osteogenic potential. International Journal of Molecular Science. 22 (16), 8764 (2021).
  27. Ohashi, Y., et al. Presence of epidermal growth factor in human tears. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 30 (8), 1879-1882 (1989).
  28. Vitale, S., Goodman, L. A., Reed, G. F., Smith, J. A. Comparison of the NEI-VFQ and OSDI questionnaires in patients with Sjögren's syndrome-related dry eye. Health Quality of Life Outcomes. 2, 44 (2004).
  29. Schiffman, R. M., Christianson, M. D., Jacobsen, G., Hirsch, J. D., Reis, B. L. Reliability and validity of the Ocular Surface Disease Index. Archives of Ophthalmology. 118 (5), 615-621 (2000).
  30. Zhang, J., et al. Characteristics of platelet lysate compared to autologous and allogeneic serum eye drops. Translational Vision Science and Technology. 9 (4), 24 (2020).
  31. Henschler, R., Gabriel, C., Schallmoser, K., Burnouf, T., Koh, M. B. Human platelet lysate current standards and future developments. Transfusion. 59 (4), 1407-1413 (2019).
  32. Samarkanova, D., et al. Clinical evaluation of allogeneic eye drops from cord blood platelet lysate. Blood Transfusion. 19 (4), 347-356 (2021).
  33. Strunk, D., et al. International Forum on GMP-grade human platelet lysate for cell propagation: Summary. Vox Sanguinis. 113 (1), 80-87 (2018).
  34. Schiroli, D., et al. The impact of COVID-19 outbreak on the Transfusion Medicine Unit of a Northern Italy Hospital and Cancer Centre. Vox Sanguinis. 117 (2), 235-242 (2021).
  35. Klatte-Schulz, F., et al. Comparative analysis of different platelet lysates and platelet rich preparations to stimulate tendon cell biology: An in vitro study. International Journal of Molecular Science. 19 (1), 212 (2018).
  36. Fea, A. M., et al. The effect of autologous platelet lysate eye drops: An in vivo confocal microscopy study. BioMed Research International. 2016, 8406832 (2016).
  37. Abu-Ameerh, M. A., et al. Platelet lysate promotes re-epithelialization of persistent epithelial defects: A pilot study. International Ophthalmology. 39 (7), 1483-1490 (2019).
  38. Geremicca, W., Fonte, C., Vecchio, S. Blood components for topical use in tissue regeneration: evaluation of corneal lesions treated with platelet lysate and considerations on repair mechanisms. Blood Transfusion. 8 (2), 107-112 (2010).
  39. De Paiva, C. S., et al. Disruption of TGF-β signaling improves ocular surface epithelial disease in experimental autoimmune keratoconjunctivitis sicca. PLoS One. 6 (12), 29017 (2011).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

186

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved