A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
* These authors contributed equally
يعد استخدام نموذج الورم الأصلي المختص بالمناعة والمدفوع بطفرات المريض الشائعة للاختبار قبل السريري أمرا بالغ الأهمية لاختبارات العلاج المناعي. يصف هذا البروتوكول طريقة لتوليد نماذج فأر ورم في المخ باستخدام التوصيل القائم على التثقيب الكهربائي للحمض النووي البلازميد الذي يمثل طفرات المريض الشائعة ، وبالتالي توفير نموذج فأر دقيق وقابل للتكرار ومتسقة.
تعد نماذج الأورام ضرورية للاختبار قبل السريري لأورام الدماغ من حيث استكشاف علاجات جديدة أكثر فعالية. مع الاهتمام الكبير بالعلاج المناعي ، من الأهمية بمكان أن يكون لديك نموذج فأر متسق ووثيق الصلة سريريا ومختص بالمناعة لفحص الورم ومجموعات الخلايا المناعية في الدماغ واستجابتها للعلاج. في حين أن معظم النماذج قبل السريرية تستخدم زرع تقويم العظام لخطوط الخلايا السرطانية المنشأة ، فإن نظام النمذجة المقدم هنا يسمح بتمثيل "شخصي" لطفرات الورم الخاصة بالمريض في تطور تدريجي ولكنه فعال من تركيبات الحمض النووي التي يتم إدخالها في خلايا السلائف العصبية المنقسمة (NPCs) في الجسم الحي. تتميز تركيبات الحمض النووي بتحليل الفسيفساء باستخدام طريقة تبادل الكاسيت المزدوج بوساطة إعادة التركيب (MADR) ، مما يسمح بطفرات جسدية أحادية النسخة لطفرات المحرك. باستخدام صغار الفئران حديثي الولادة بين الولادة وعمر 3 أيام ، يتم استهداف الشخصيات غير القابلة للعب من خلال الاستفادة من هذه الخلايا المنقسمة التي تبطن البطينين الجانبيين. الحقن المجهري لبلازميدات الحمض النووي (على سبيل المثال ، مشتقة من MADR ، ترانسبوزونات ، sgRNA الموجهة لكريسبر) في البطينين يتبعها التثقيب الكهربائي باستخدام المجاذيف التي تحيط بمنطقة المنقار في الرأس. عند التحفيز الكهربائي ، يتم امتصاص الحمض النووي في الخلايا المنقسمة ، مع إمكانية الاندماج في الجينوم. تم إثبات استخدام هذه الطريقة بنجاح في تطوير كل من أورام الدماغ لدى الأطفال والبالغين ، بما في ذلك ورم الدماغ الخبيث الأكثر شيوعا ، الورم الأرومي الدبقي. تناقش هذه المقالة وتوضح الخطوات المختلفة لتطوير نموذج ورم في المخ باستخدام هذه التقنية ، بما في ذلك إجراء تخدير صغار الفئران ، إلى الحقن المجهري لمزيج البلازميد ، متبوعا بالتثقيب الكهربائي. مع هذا النموذج الأصلي للفأر المناعي ، سيكون لدى الباحثين القدرة على توسيع مناهج النمذجة قبل السريرية ، في محاولة لتحسين وفحص علاج السرطان الفعال.
تعد نماذج أورام دماغ الفئران ضرورية لفهم آليات تكوين ورم الدماغ وعلاجه. تتضمن النماذج الحالية عادة عمليات زرع تحت الجلد أو تقويم العظام سريعة الإنتاج لخطوط الخلايا السرطانية شائعة الاستخدام ، بناء على عدد محدود من الطفرات الدافعة أو نماذج xenograft المشتقة من المريض ، باستخدام الفئران التي تعاني من نقص المناعة والتي تعيق دراسات العلاج المناعي المناسبة1،2،3،4. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن أن تؤدي هذه النتائج قبل السريرية إلى إيجابيات كاذبة ، حيث يمكن أن تظهر هذه النماذج تأثيرات علاجية دراماتيكية في كثير من الأحيان استجابة للعلاج ، ولكن هذا لا يترج....
تمت الموافقة على جميع الإجراءات في هذا البروتوكول من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام في مركز سيدارز سيناء الطبي (IACUC). تم تربية الفئران mTmG متماثلة الزيجوت مع الفئران C57BL / 6J للحصول على فضلات من الفئران mTmG مختلطة الجنس وغير متجانسة الزيجوت لاستخدامها في البروتوكول التالي. تم الحصول على من مصدر تجاري (انظر جدول المواد). تم تكهرب الفئران بين أيام ما بعد الولادة 0 و 3 (P0-P3).
1. الإعداد الجراحي
تم استخدام البروتوكول الموصوف أعلاه لتطوير نماذج فأر أورام الدماغ للأطفال والبالغين بنجاح ، مع نشر الأول بتفصيل واسع في Kim et al.8. مع التقنية المناسبة والتخطيط الدقيق لتصميم البلازميد ، يكون نجاح تطوير EP للأورام عادة 100٪. علم الأنسجة هو أسرع وأسهل طريقة للتحقق من نجاح إدخال بلاز.......
يسمح توصيل الحمض النووي البلازميد القائم على التثقيب الكهربائي باستخدام البيولوجيا الجزيئية في الجسم الحي ، على غرار تلك المستخدمة في نماذج الفئران المعدلة وراثيا ، ولكن مع سرعة وتوطين وكفاءة نقل الفيروس8،13،14. ومع ذلك ، مع هذا الأخ?.......
ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.
نشكر Gi Bum Kim على التلوين المناعي والصور. كما نشكر إميلي هاتاناكا ونعومي كوبريتز وبول لينيش على النصائح المفيدة بشأن البروتوكول.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.1-2.5 µL 1-channel pipette | Eppendorf | 3123000012 | |
2 µL pipette tips | Fisher Scientific | 02-707-442 | |
20 µL pipette tips | Fisher Scientific | 02-707-432 | |
2-20 µL 1-channel pipette | Eppendorf | 3123000098 | |
DNAZap PCR DNA Degradation Solutions | Fisher Scientific | AM9890 | |
ECM 830 Square Porator Electroporator | BTX | 45-0662 | |
Electrode Gel | Parker Labs | PLI152CSZ | |
Fast Green Dye | Sigma-Aldrich | F7258-25G | |
Helping Hands Soldering Aid | Pro'sKit | 900-015 | |
Micro Dissecting Scissors, 4.5" Straight Sharp | Roboz | RS-5916 | |
Mouse Strain: C57BL/6J | The Jackson Laboratory | JAX: 000664 | |
Mouse Strain: Gt(ROSA)26Sortm4(ACTB-tdTomato,-EGFP)Luo/J | The Jackson Laboratory | JAX: 007676 | |
Parafilm | Grainger | 16Y894 | |
Plasmid: pCag-FlpO-2A-Cre EV | Addgene | 129419 | |
Platinum Tweezertrode, 7 mm Diameter | BTX | 45-0488 | |
Sharps container, 1-quart | Uline | S-15307 | |
Standard Glass Capillaries, 4 in, 1 mm OD, 0.58 mm ID | World Precision Instruments | 1B100F-4 | Capillary pipettes need to be pulled - see reference 10 for details. |
Vertical Micropipette Puller | Sutter Instruments | P-30 | Heat settings: Heat #1 at 880, Heat #2 at 680; pull at 800. See reference 10 for more details on pulling. |
Vimoba Tablet Solution | Quip Laboratories | VIMTAB | |
XenoWorks Digital Microinjector | Sutter Instruments | BRE | |
XenoWorks Micropipette Holder | Sutter Instruments | BR-MH |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionExplore More Articles
This article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved