A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

نقدم هنا بروتوكولا لتصور انتقال أحادي الكربوكسيل والجلوكوز و ATP في الخلايا الدبقية والخلايا العصبية باستخدام مستشعرات نقل طاقة الرنين Förster المشفرة وراثيا في تحضير دماغ يرقات ذبابة الفاكهة خارج الجسم الحي .

Abstract

تعد متطلبات الطاقة العالية للأدمغة بسبب النشاط الكهربائي واحدة من أكثر سماتها المميزة. يتم تلبية هذه المتطلبات من خلال إنتاج ATP من الجلوكوز ومستقلباته ، مثل أحادي الكربوكسيل اللاكتات والبيروفات. لا يزال من غير الواضح كيف يتم تنظيم هذه العملية أو من هم اللاعبون الرئيسيون ، لا سيما في ذبابة الفاكهة.

باستخدام مستشعرات نقل طاقة الرنين Förster المشفرة وراثيا ، نقدم طريقة بسيطة لقياس انتقال أحادي الكربوكسيلات والجلوكوز في الخلايا الدبقية والخلايا العصبية في تحضير يرقات ذبابة الفاكهة خارج الجسم الحي . يصف البروتوكول كيفية تشريح ولصق دماغ اليرقات الذي يعبر عن أحد المستشعرات إلى غطاء زجاجي.

نقدم نتائج تجربة كاملة تم فيها قياس نقل اللاكتات في أدمغة اليرقات عن طريق هدم ناقلات الكربوكسيل أحادية الكربوكسيل التي تم تحديدها سابقا في الخلايا الدبقية. علاوة على ذلك ، نوضح كيفية زيادة النشاط العصبي بسرعة وتتبع تغيرات الأيض في الدماغ النشط. يمكن استخدام الطريقة الموصوفة ، والتي توفر جميع المعلومات اللازمة ، لتحليل الأنسجة الحية الأخرى في ذبابة الفاكهة .

Introduction

الدماغ لديه متطلبات طاقة عالية بسبب التكلفة العالية لاستعادة التدرجات الأيونية في الخلايا العصبية الناتجة عن توليد الإشارات الكهربائية العصبية ونقلها ، وكذلك النقل المشبكي 1,2. يعتقد منذ فترة طويلة أن هذا الطلب المرتفع على الطاقة يتم تلبيته من خلال الأكسدة المستمرة للجلوكوز لإنتاج ATP3. تنقل ناقلات محددة عند الحاجز الدموي الدماغي الجلوكوز في الدم إلى الدماغ. تضمن مستويات نسبة السكر في الدم الثابتة أن يتلقى الدماغ إمدادات ثابتة من الجلوكوز4. ومن المثير للاهتمام ، أن الأدلة التجريبية المتزايدة تشير إلى أن الجزيئات المشتقة من استقلاب الجلوكوز ، مثل اللاكتات والبيروف....

Protocol

1. صيانة سلالة الذباب وتزامن اليرقات

  1. لإجراء هذه التجارب ، استخدم مزارع الذباب التي يتم تربيتها عند 25 درجة مئوية على طعام ذبابة الفاكهة القياسي المكون من 10٪ خميرة ، 8٪ جلوكوز ، 5٪ دقيق قمح ، 1.1٪ أجار ، 0.6٪ حمض البروبيونيك ، و 1.5٪ ميثيل بارابين.
  2. لاتباع هذا البروتوكول ، استخدم الأسطر التالية: w1118 (خلفية التحكم التجريبي) ، OK6-GAL4 (برنامج تشغيل الخلايا العصبية الحركية) ، repo-GAL4 (برنامج تشغيل لجميع الخلايا الدبقية) ، CG-GAL4 (سائق الأجسام الدهنية) ، UAS-Pyronic (مستشعر البيروفات) ، UAS-FLII12Pglu700μδ6 (مستشعر الجلوكوز) ، UAS-Laconic (مستشعر اللاكتات) ، UAS-GCaMP6f (مستشعر الكالسيوم) ، ....

النتائج

لمدة تصل إلى 1 ساعة ، يسمح هذا الإجراء بقياس سهل للتغيرات داخل الخلايا في مضان مستشعرات أحادي الكربوكسيل والجلوكوز. كما هو موضح في الشكل 4 ، تستجيب المستشعرات المقتضبة في كل من الخلايا الدبقية والخلايا العصبية الحركية لاكتات 1 mM بمعدل مماثل في بداية النبضة ، لكن الخلايا الع?.......

Discussion

يعد استخدام نموذج ذبابة الفاكهة لدراسة استقلاب الدماغ جديدا نسبيا26 ، وقد ثبت أنه يشترك في خصائص أكثر مع استقلاب الثدييات مما كان متوقعا ، والذي تمت دراسته بشكل أساسي في المختبر في مزارع الخلايا العصبية الأولية أو شرائح الدماغ. تتفوق ذبابة الفاكهة في التجارب ?.......

Disclosures

لا يعلن المؤلفون عن أي مصالح منافسة أو مالية.

Acknowledgements

نشكر جميع أعضاء مختبر سييرالتا. وحظي هذا العمل بدعم من 11200477 المؤسسة الوطنية للإحصاء (إلى AGG) و FONDECYT 1210586 العادية (إلى JS). تم التبرع ب UAS-FLII12Pglu700μδ6 (مستشعر الجلوكوز) من قبل بيير إيف بلاسايس وتوماس بريات ، CNRS-Paris.

....

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
AgaroseSigmaA9539
CaCl2SigmaC3881
CCD Camera ORCA-R2Hamamatsu-
Cell-R SoftwareOlympus-
CG-GAL4Bloomington Drosophila Stock Center7011Fat body driver
Dumont # 5 ForcepsFine Science Tools11252-30
DV2-emission splitting systemPhotometrics-
Glass coverslips (25 mm diameter)Marienfeld111650Germany
GlucoseSigmaG8270
GraphPad PrismGraphPad SoftwareVersion 8,0,2
HEPESSigmaH3375
ImageJ softwareNational Institues of HealthVersion 1,53t
KClSigmaP9541
LUMPlanFl 40x/0.8 water immersion objectiveOlympus-
MethylparabenSigmaH5501
MgCl2SigmaM1028
NaClSigmaS7653
OK6-GAL4Bloomington Drosophila Stock CenterMotor neuron driver
PicrotoxinSigmaP1675SCAUTION-Fatal if swallowed
Poly-L-lysineSigmaP4707
Propionic AcidSigmaP1386
Repo-GAL4Bloomington Drosophila Stock Center7415Glial cell driver (all)
Sodium LactateSigma71718
Sodium pyruvateSigmaP2256
Spinning Disk fluorescence Microscope BX61WIOlympus-
SucroseSigmaS0389
TrehaloseUS BiologicalT8270
UAS-AT1.03NL Kyoto Drosophila Stock Center117012ATP sensor
UAS-Chk RNAi GD1829Vienna Drosophila Resource Centerv37139Chk RNAi line
UAS-FLII12Pglu700md6 Bloomington Drosophila Stock Center93452Glucose sensor
UAS-GCaMP6f Bloomington Drosophila Stock Center42747Calcium sensor
UAS-LaconicSierralta Lab-Lactate sensor
UAS-PyronicPierre Yves Placais/Thomas Preat-CNRS-Paris
UMPlanFl 20x/0.5 water immersion objectiveOlympus-

References

  1. Vergara, R. C., et al. The energy homeostasis principle: neuronal energy regulation drives local network dynamics generating behavior. Frontiers in Computational Neuroscience. 13 (49), 1-18 (2019).
  2. Pulido, C., Ryan, T. A.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

JoVE 200 ATP F rster

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved