وأيد هذا العمل في جزء منها عن طريق منحة من المعاهد الوطنية للصحة (RO1 HL098228) لCKB.

ملاحظة: تمت الموافقة على جميع الإجراءات الحيوانية من قبل لجنة مستشفى المؤسسي رعاية الحيوان واستخدام البلاد للطفولة. 1. الكسب غير المشروع تصنيع <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل الحل ε-caprolactone وL-lactide كوبوليمر P (LA / CL) وذلك بإضافة 100MG P (LA / CL) في 2 مل ديوكسان تحت غطاء الدخان. وضع الحل على دوامة وخلط مستمر لمدة 1-1.5 ساعة لتذوب تماما. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في هذه الأثناء، وإزالة ورقة من حمض polyglycolic (PGA) ورأى من الفريزر وقطع العديد 5 × 8 أقسام ملم. أيضا بقطع غيض من ماصة ميكرولتر ،1-10 فقط فوق تصفية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدراج 19 G إبرة (1.5 طول) في نهاية البعيدة من طرف الماصة والتفاف شعر PGA حول إبرة باستخدام ملقط الجزئي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> دفع بعناية اللباد إلى نهاية البعيدة للطرف الماصة، حيث التجويف هو استقامة من الجزء القريب، وذلك باستخدام إبرة حادة 18 G، في حين يتم إدخال إبرة G 19 في ذلك. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ماصة40 ميكرولتر P (CL / LA) حل في تلميح ماصة من أعلى. تشبع PGA شعرت مع الحل. ثم دفع فقاعات الهواء خارج باستخدام موزع ماصة. تكرار هذه العملية إذا لزم الأمر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المكان الطعوم في أنبوب 50 مل ووضعه في الفريزر -80 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة. تأكد من أن رئيس الإبر مواجهة الهبوط. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقل أنبوب إلى مجفاد وفراغ لمدة 24 ساعة. تأكد من فتح غطاء أنبوب أن يكون تدفق الهواء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> اخراج الطعوم وإزالتها من الإبر. قطع طرفي الكسب غير المشروع ترك ملم القسم ~ 5 ووضعها مرة أخرى على الإبر للحفاظ على شكلها. إبقاء الطعوم في مجفف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع السقالة تحت ضوء الأشعة فوق البنفسجية في مجال السلامة الأحيائية هود O / N قبل البذر الخلية. </li></ol> 2. نخاع العظم وحيدات النوى حصاد الخليوي والعزلة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الموت ببطء الفئران مع جرعة زائدة من الكيتامين / زيلازين (الكيتامين، 200 ملغ / كغ وزيلازين، 20 ملغ / كلغ). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة العظام (عظام الفخذ ود tibias) من 3 الفئران لمدة 10 زرع الكسب غير المشروع ووضعه في طبق بتري مع 10 سم مكعب RPMI. قطع طرفي العظام ونخاع العظام دافق باستخدام حقنة مع إبرة G 25 في طبق بتري جديدة مع 3 سم مكعب RPMI. جمع نخاع العظام وحل RPMI في 15 سم مكعب وأنبوب غسل طبق بتري مع إضافية RPMI 2 سم مكعب لجمع ما تبقى من BM. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تأخذ عينة (5-10 ميكرولتر) وعدد الخلايا باستخدام خلية مكافحة الآلي أو عدادة الكريات. سجل النتيجة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع 5 سم مكعب Ficoll في أنبوب الطرد المركزي 15 سم مكعب وإضافة نخاع العظم وحل RPMI. إضافة الحل بلطف شديد لمنعها من الاختلاط مع Ficoll. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أجهزة الطرد المركزي في 528 x ج لمدة 30 دقيقة مع &quot;NO الفرامل&quot; في 24 درجة مئوية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة الطبقة العليا وردي. جمع الوسط واضحة طبقة الشكل 1، والتي هي طبقة MNC، وتمييع مع PBS 1:1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أجهزة الطرد المركزي في محلول مخفف MNC في 528 x ج لمدة 10 دقيقة في 24 درجة مئوية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة طاف وديالعود بيليه مع 5 مل PBS. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أجهزة الطرد المركزي في حل بيليه في 528 x ج لمدة 10 دقيقة في 24 درجة مئوية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة طاف. تمييع بيليه مع حجم مناسب من RPMI (~ 200 ميكرولتر). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أخذ عينة ميكرولتر 5-10 وتعول الخلايا باستخدام عداد الخلية الآلي أو عدادة الكريات. سجل النتيجة. تكرار الخلية عد واحد مزيد من الوقت وحساب متوسط ​​عدد الخلايا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تمييع تركيز الخلية إلى 1،000،000 cells/10 ميكرولتر باستخدام RPMI. </li></ol> 3. البذر الخليوي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سقالة Prewet بإضافة 5 ميكرولتر RPMI luminally لمدة 5 دقائق، ثم إزالة RPMI. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة 10 ميكرولتر نخاع العظام المستمدة الخلايا أحادية النووية في RPMI من الخطوة 2.12 إلى التجويف السقالة والانتظار لمدة 10 دقيقة للسماح للخلايا لنعلق على السقالة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خفض إبرة 19 G إلى 1 سم طول ووضع الإبرة في التجويف من السقالة للحفاظ على شكل السقالة. وضع العينة في 24 لوحة جيدا. &lt;/ لى&gt; <li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة ميكرولتر 1،000 RPMI إلى كل بئر واحتضان O / N في حاضنة. </li></ol> 4. زرع الكسب غير المشروع <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الأوتوكلاف جميع الأدوات الجراحية قبل الجراحة: 1x أخرى مقص غرامة، وملقط الدقيقة 3X، والمشابك الأوعية الدموية الصغيرة 2X، 1X المشبك ملقط تطبيق، 1x أداة حامل الإبرة الصغيرة، مقص الربيع 1X، 1X ضام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 6-8 أسابيع من العمر الإناث تستخدم C57BL / 6 كما الأنسجة المهندسة المتلقين الكسب غير المشروع الأوعية الدموية. إزالة الماوس من قفصه وتزن عليه، ثم تخدير عن طريق حقن داخل الصفاق في الربع السفلي الأيمن من البطن مع كوكتيل الكيتامين / زيلازين (الكيتامين، 100 ملغ / كغ وزيلازين، 10 ملغ / كلغ). يستخدم كيتوبروفين (5 ملغ / كغ، IP) كمسكن ما قبل التخدير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> فحص مستوى التخدير بواسطة معسر حكاية، ثم مقطع الشعر في البطن. تليين العينين مع مرهم للعين معقمة، ووضع الماوس في وضع رقود ظهري على وسادة. تطهير البطن مع بتدين والكحول منصات. شاركVER الماوس مع ثنى العقيمة وفضح منطقة شق فقط. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل خط الوسط شق البطن من تحت سيفي الشكل إلى منطقة فوق العانة، وإدراج ضام الذاتي الاحتفاظ. التفاف الأمعاء في المياه المالحة الشاش المبلل. تحدد بصراحة الشريان الأورطي infrarenal والوريد الأجوف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع اثنين من المشابك الأوعية الدموية الصغيرة على حد سواء القريبة والبعيدة الجانبين من الشريان الأبهر والوريد الأجوف ثم فصل بصراحة الشريان الأورطي من الوريد الأجوف إقطع الوريد الأجوف. إذا لزم الأمر، ligate فروع الأبهر البطني مع 10-0 الغرز حيدة على الإبر مدبب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> زرع على الوريد الأجوف السفلي مداخلة الكسب غير المشروع مع نهاية الداني القاصي وإنهاء anastomoses باستخدام العقيمة 10-0 خياطة. تقليم الكسب غير المشروع، عادة 1-2 مم، يعتمد على التشريح من الفأرة. تأمين الكسب غير المشروع مع غرزة واحدة على كلا طرفي القاصي والداني والبدء في خياطة باستمرار مع 4-5 غرز من الجانب الآخر من الكسب غير المشروع. بعد الانتهاء من الجانب الأمامي، والوجه المشابك والطعومإلى الجانب الآخر وخياطة الجانب الخلفي من الكسب غير المشروع. خلال زرع، تدفق الكسب غير المشروع مع الحل الهيبارين في كثير من الأحيان لمنع تجلط الدم الحاد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة المشبك الداني والسيطرة على النزيف من خلال تطبيق موضعي للامتصاص وكيل مرقئ العقيمة. عندما يتوقف النزيف تماما، وإزالة المشبك القاصي والسيطرة على النزيف بنفس الطريقة. جعل تدفقات الدم تأكد من خلال الكسب غير المشروع. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إغلاق عضلات البطن والجلد في طبقتين باستخدام مادة البولي أميد 6-0 سوداء خياطة حيدة مع إبرة شملت مترابطة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حقن 0.5 مل تحت الجلد المالحة ووضع الماوس في قفص الانتعاش على وسادة الاحترار حتى الماوس النقالة بشكل كامل. بعد شفائهم، والعودة الماوس لقفص جديد مع الفراش ورقة. إعطاء مسكنات للألم (ايبوبروفين، 30 مغ / كغ، ومياه الشرب) لمدة 48 ساعة. </li></ol>

<ol>
	<li>Heart Association, A. m. e. r. i. c. a. n. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+Disease+and+Stroke+Statistics&#8212;2012+Update.">Heart Disease and Stroke Statistics&#8212;2012 Update.</a> Circulation. 125, (2012).</li><li>Shinoka, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Creation+Of+Viable+Pulmonary+Artery+Autografts+Through+Tissue+Engineering.">Creation Of Viable Pulmonary Artery Autografts Through Tissue Engineering.</a> The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 115, 536-546 (1998).</li><li>Hibino, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Late-term+results+of+tissue-engineered+vascular+grafts+in+humans.">Late-term results of tissue-engineered vascular grafts in humans.</a> The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 139, 431-436 (2010).</li><li>Shin'oka, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Midterm+clinical+result+of+tissue-engineered+vascular+autografts+seeded+with+autologous+bone+marrow+cells.">Midterm clinical result of tissue-engineered vascular autografts seeded with autologous bone marrow cells.</a> The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 129, 1330-1338 (2005).</li><li>Brennan, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-engineered+vascular+grafts+demonstrate+evidence+of+growth+and+development+when+implanted+in+a+juvenile+animal+model.">Tissue-engineered vascular grafts demonstrate evidence of growth and development when implanted in a juvenile animal model.</a> Ann Surg. 248, 370-377 (2008).</li><li>Roh, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Construction+of+an+autologous+tissue-engineered+venous+conduit+from+bone+marrow-derived+vascular+cells:+optimization+of+cell+harvest+and+seeding+techniques.">Construction of an autologous tissue-engineered venous conduit from bone marrow-derived vascular cells: optimization of cell harvest and seeding techniques.</a> Journal of Pediatric Surgery. 42, 198-202 (2007).</li><li>Hibino, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-engineered+vascular+grafts+form+neovessels+that+arise+from+regeneration+of+the+adjacent+blood+vessel.">Tissue-engineered vascular grafts form neovessels that arise from regeneration of the adjacent blood vessel.</a> The FASEB Journal. 25, 2731-2739 (2011).</li><li>Hibino, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+critical+role+for+macrophages+in+neovessel+formation+and+the+development+of+stenosis+in+tissue-engineered+vascular+grafts.">A critical role for macrophages in neovessel formation and the development of stenosis in tissue-engineered vascular grafts.</a> The FASEB Journal. 25, 4253-4263 (2011).</li><li>Naito, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+the+Natural+History+of+Extracellular+Matrix+Production+in+Tissue-Engineered+Vascular+Grafts+during+Neovessel+Formation.">Characterization of the Natural History of Extracellular Matrix Production in Tissue-Engineered Vascular Grafts during Neovessel Formation.</a> Cells Tissues Organs. 195, 60-72 (2012).</li><li>Naito, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Beyond+Burst+Pressure:+Initial+Evaluation+of+the+Natural+History+of+the+Biaxial+Mechanical+Properties+of+Tissue+Engineered+Vascular+Grafts+in+the+Venous+Circulation+Using+a+Murine+Model.">Beyond Burst Pressure: Initial Evaluation of the Natural History of the Biaxial Mechanical Properties of Tissue Engineered Vascular Grafts in the Venous Circulation Using a Murine Model.</a> Tissue Eng. Part A. 20, (2013).</li><li>Mirensky, T. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-engineered+vascular+grafts:+does+cell+seeding+matter.">Tissue-engineered vascular grafts: does cell seeding matter.</a> Journal of Pediatric Surgery. 45, 1299-1305 (2010).</li><li>Roh, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-engineered+vascular+grafts+transform+into+mature+blood+vessels+via+an+inflammation-mediated+process+of+vascular+remodeling.">Tissue-engineered vascular grafts transform into mature blood vessels via an inflammation-mediated process of vascular remodeling.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 107, 4669-4674 (2010).</li><li>Mirensky, T. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-engineered+arterial+grafts:+long-term+results+after+implantation+in+a+small+animal+model.">Tissue-engineered arterial grafts: long-term results after implantation in a small animal model.</a> Journal of Pediatric Surgery. 44, 1127-1133 (2009).</li><li>Lee, Y. U., Naito, Y., Kurobe, H., Breuer, C. K., Humphrey, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biaxial+mechanical+properties+of+the+inferior+vena+cava+in+C57BL/6+and+CB-17+SCID/bg+mice.">Biaxial mechanical properties of the inferior vena cava in C57BL/6 and CB-17 SCID/bg mice.</a> Journal of Biomechanics. 46, 2277-2282 (2013).</li></ol>

والكتاب ليس لديهم ما يكشف.

نموذج الفأر من TEVG هو أداة قيمة لدراسة الآليات الخلوية والجزيئية لتشكيل neotissue وتطوير تضيق. وقد أظهرت المصنف BM-MNC في كل من الصور النسيجية ووزارة شؤون المرأة من الخلايا المصنفة على الكسب غير المشروع 11. وقد أظهرت كفاءة البذر الخلية أيضا باستخدام فحص الحمض النووي 7...

عيوب القلب الخلقية هي الظروف الخطيرة التي تؤثر على ما يقرب من 8٪ من الولادات الحية في الولايات المتحدة. ما يقرب من 25٪ من الرضع الذين يعانون من عيوب خلقية في القلب أو 2.4 لكل 1،000 ولادة حية، تتطلب العلاج الغازية في السنة الأولى من حياتهم 1. العلاج الأكثر فعالية لأمراض القلب الخلقية هو الجراحة الترميمية. للأسف، والمضاعفات الناجمة عن استخدام القنوات المتاحة حاليا الأوعية الدموية هي السبب الأكثر أهمية للمراضة والوفيات بعد الجراحة. لمعالجة هذه المشكلة، قمنا بتطوير أول الأنسجة المهندسة وترقيع الأوعية الدموية (TEVGs) للاستخدام السريري 2. شيدت TEVGs من أنابيب البوليستر القابلة للتحلل المصنف مع نخاع العظم ذاتي الخلايا المستمدة من وحيدات النوى (BM-الشركات المتعددة الجنسيات) وزرع كقنوات الوريدي لجراحة القلب الخلقية. أظهرت النتائج معدلات ممتازة في المباح 1-3 سنوات من المتابعة، ولكن مع انتشار كبير من تضيق <sتصل&gt; 3،4. كان من الواضح أن هناك حاجة إلى فهم أفضل لتشكيل neotissue الأوعية الدموية والآلية الكامنة وراء تطوير TEVG تضيق. من أجل فهم أفضل للتنمية TEVGs وآلية التنمية تضيق، تم إنشاء نموذج الأغنام 5،6. في هذا النموذج، وTEVGs تحولت بنجاح في السفن الذين يعيشون وكانت مشابهة في كل من التشكل وظيفة الأوردة الأصلية. كان هذا الاستخدام نموذج الحيوانات الكبيرة خطوة أولى جيدة في توفير معلومات ما قبل السريرية الهامة التي ساعدت الاستخدام السريري للTEVGs. ومع ذلك، فهم كامل من الآليات الخلوية والجزيئية لتشكيل neotissue الأوعية الدموية في TEVGs باستخدام نماذج حيوانية كبيرة محدودة بسبب القيود في التوصيف الجزيئي للخلية الظواهر الأوعية الدموية بسبب نقص أنواع الأدوات الجزيئية محددة. للتغلب على أوجه القصور هذه، تم تطوير نموذج الفئران من TEVGs بسبب التقدم السريع في علم الوراثة والبيولوجيا الماوس الخاصة بهم واسعةص توصيف مع ميزة إضافية تتمثل في مقياس زمني تقصير. في الفئران IVC نموذج مداخلة لخص بإخلاص عملية neovessel التشكيلة التي تحدث في الحيوانات الكبيرة والبشر، ولكن مع مرور دورة زمنية أقصر بكثير 6-9. هنا، بروتوكول مفصلة لتصنيع الكسب غير المشروع على نطاق ضيق باستخدام السقالات القابلة للتحلل، وصفت حصاد BM-MNC والعزلة، BM-MNC البذر على السقالة، وزرع الفساد في نموذج الفئران.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:616px;" width="615">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">Name</td>
			<td style="width:139px;">Company</td>
			<td style="width:133px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:168px;">Comments</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">polyglycolic acid (PGA) felt</td>
			<td>Biomedical Structures</td>
			<td></td>
			<td>Custome ordered</td>
		</tr>
		<tr height="45">
			<td height="45" style="height:45px;width:176px;">&#603;-caprolactone and L- 
			lactide copolymer P(LA/CL)&#160;</td>
			<td>Gunze Inc.</td>
			<td></td>
			<td>Custome ordered</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Pipet tip, 0.1-10 &#956;l&#160;</td>
			<td>Fisher Sientific</td>
			<td>02-707-456</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Lyophilizer&#160;</td>
			<td>Labconco</td>
			<td>7070020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">RPMI medium 1604</td>
			<td>gibco</td>
			<td>11875-093</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">Petri dish</td>
			<td>BD</td>
			<td>353003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:176px;">24 well plate</td>
			<td>Corning</td>
			<td>3526</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">15cc tube&#160;</td>
			<td>BD</td>
			<td>352096</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">Ficoll</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>10831-100ml</td>
			<td>Also called &#39;Histopaque&#39;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">DPBS</td>
			<td>gibco</td>
			<td>14190-144</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="39">
			<td height="39" style="height:39px;width:176px;">Littauer Bone Cutter 4.5&#34; Straight</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-8480</td>
			<td>For BM harvesting</td>
		</tr>
		<tr height="27">
			<td height="27" style="height:27px;width:176px;">Forceps 4.5&#34;</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-8120</td>
			<td>For BM harvesting</td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:176px;">Scissors 4.5&#34;</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-5912</td>
			<td>For BM harvesting</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:176px;">Microscope</td>
			<td style="width:139px;">Leica</td>
			<td style="width:133px;">M80</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;width:176px;">C57BL/6J (H-2b), Female</td>
			<td style="width:139px;">Jackson Laboratories&#160;</td>
			<td style="width:133px;">664</td>
			<td style="width:168px;">8-12 weeks</td>
		</tr>
		<tr height="39">
			<td height="39" style="height:39px;width:176px;">Ketamine Hydrochloride Injection</td>
			<td style="width:139px;">Hospira Inc.</td>
			<td style="width:133px;">NDC 0409-2053</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:176px;">Xylazine Sterile Solution</td>
			<td style="width:139px;">Akorn Inc.</td>
			<td style="width:133px;">NADA# 139-236</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;width:176px;">ketoprofen</td>
			<td style="width:139px;">Fort Dodge Animal Health</td>
			<td style="width:133px;">NDC 0856-4396-01</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;width:176px;">Ibuprofen</td>
			<td style="width:139px;">PrecisionDose</td>
			<td style="width:133px;">NDC 68094-494-59</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="37">
			<td height="37" style="height:37px;width:176px;">Heparin Sodium</td>
			<td style="width:139px;">Sagent Pharmaceticals</td>
			<td style="width:133px;">NDC 25021-400</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="39">
			<td height="39" style="height:39px;width:176px;">Saline solution (Sterile 0.9% Sodium Chloride)</td>
			<td style="width:139px;">Hospira Inc.</td>
			<td style="width:133px;">NDC 0409-0138-22</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="39">
			<td height="39" style="height:39px;width:176px;">0.9% Sodium Chloride Injection</td>
			<td style="width:139px;">Hospira Inc.</td>
			<td style="width:133px;">NDC 0409-4888-10</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:176px;">Petrolatum Ophthalmic Ointment</td>
			<td style="width:139px;">Dechra Veterinary Products</td>
			<td style="width:133px;">NDC 17033-211-38</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:176px;">Iodine Prep Pads</td>
			<td style="width:139px;">Triad Disposables, Inc.</td>
			<td style="width:133px;">NDC 50730-3201-1</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:176px;">Alcohol Prep Pads</td>
			<td style="width:139px;">McKesson Corp.</td>
			<td style="width:133px;">NDC 68599-5805-1</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:176px;">Cotton tipped applicators</td>
			<td style="width:139px;">Fisher Sientific</td>
			<td style="width:133px;">23-400-118</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:176px;">Fine Scissor</td>
			<td style="width:139px;">FST</td>
			<td style="width:133px;">14028-10</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:176px;">Micro-Adson Forcep</td>
			<td style="width:139px;">FST</td>
			<td style="width:133px;">11018-12</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:176px;">Clamp Applying Forcep</td>
			<td style="width:139px;">FST</td>
			<td style="width:133px;">00072-14</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:176px;">S&#38;T Vascular Clamp</td>
			<td style="width:139px;">FST</td>
			<td style="width:133px;">00396-01</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:176px;">Spring Scissors</td>
			<td style="width:139px;">FST</td>
			<td style="width:133px;">15008-08</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">Colibri Retractors</td>
			<td style="width:139px;">FST</td>
			<td style="width:133px;">17000-04</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">Dumont #5 Forcep</td>
			<td style="width:139px;">FST</td>
			<td style="width:133px;">11251-20&#160;</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">Dumont #7 - Fine Forceps</td>
			<td style="width:139px;">FST</td>
			<td style="width:133px;">11274-20</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">Dumont #5/45 Forceps</td>
			<td style="width:139px;">FST</td>
			<td style="width:133px;">11251-35</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">Tish Needle Holder/Forceps</td>
			<td style="width:139px;">Micrins</td>
			<td style="width:133px;">MI1540</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="38">
			<td height="38" style="height:38px;width:176px;">Black Polyamide Monofilament Suture, 10-0</td>
			<td style="width:139px;">AROSurgical Instruments Corporation</td>
			<td style="width:133px;">TI638402</td>
			<td style="width:168px;">For sutureing the graft</td>
		</tr>
		<tr height="37">
			<td height="37" style="height:37px;width:176px;">Black Polyamide Monofilament Suture, 6-0</td>
			<td style="width:139px;">AROSurgical Instruments&#160;</td>
			<td style="width:133px;">SN-1956</td>
			<td style="width:168px;">For musculature and skin closure</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">Non-Woven Songes</td>
			<td style="width:139px;">McKesson Corp.</td>
			<td style="width:133px;">94442000</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">Absorbable hemostat</td>
			<td style="width:139px;">Ethicon</td>
			<td style="width:133px;">1961</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:176px;">1 ml Syringe</td>
			<td style="width:139px;">BD</td>
			<td style="width:133px;">309659</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:176px;">3 ml Syringe</td>
			<td style="width:139px;">BD</td>
			<td style="width:133px;">309657</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:176px;">10 ml Syringe</td>
			<td style="width:139px;">BD</td>
			<td style="width:133px;">309604</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">18G 1 1/2 in, Needle</td>
			<td style="width:139px;">BD</td>
			<td style="width:133px;">305190</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">25G 1 in., Needle</td>
			<td style="width:139px;">BD</td>
			<td style="width:133px;">305125</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">30G 1 in., Needle</td>
			<td style="width:139px;">BD</td>
			<td style="width:133px;">305106</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:176px;">Warm Water Recircultor</td>
			<td style="width:139px;">Gaymar</td>
			<td style="width:133px;">TP-700</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;width:176px;">Warming Pad</td>
			<td style="width:139px;">Gaymar</td>
			<td style="width:133px;">TP-22G</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:176px;">Trimmer</td>
			<td style="width:139px;">Wahl</td>
			<td style="width:133px;">9854-500</td>
			<td style="width:168px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

implantation of inferior vena cava interposition graft in mouse model

وغالبا ما تستخدم السقالات المصنفة قابلة للتحلل مع خلايا نخاع العظام وحيدات النوى (خلايا نخاع العظم) لجراحة لعلاج التشوهات الخلقية في القلب. أظهرت النتائج السريرية طويلة المدى في أسعار المباح ممتازة، ولكن، مع انتشار كبير لتضيق. للتحقيق في الآليات الخلوية والجزيئية لتشكيل neotissue الأوعية الدموية ومنع التنمية تضيق في الأنسجة المهندسة وترقيع الأوعية الدموية (TEVGs)، قمنا بتطوير نموذج الفأر من الكسب غير المشروع مع ما يقرب من 1 مم القطر الداخلي. الأولى، تم تجميعها TEVGs من السقالات الأنبوبية القابلة للتحلل ملفقة من محبوكة حمض polyglycolic شعرت شبكة المغلفة مع ε-caprolactone وL-lactide من البوليمرات. والسقالات ثم توضع في مجفاد، بالمكنسة الكهربائية لمدة 24 ساعة، وتخزينها في مجفف حتى بذر الخلية. الثانية، وقد تم جمع نخاع العظم من فئران المانحة وتم عزل الخلايا وحيدات النوى من قبل التدرج الكثافة الطرد المركزي. الثالث، كان ما يقرب من مليون خليةالمصنفة على السقالة وحضنت O / N. أخيرا، تم السقالات المصنف ثم زرعها كما infrarenal ترقيع الوريد الأجوف مداخلة في C57BL / 6 الفئران. أظهرت ترقيع مزروع المباح ممتاز (&gt; 90٪) دون وجود أدلة حدوث مضاعفات الانسداد التجلطي أو تشكيل أمدمي. وهذا نموذج الفئران تساعدنا في فهم وقياس الآليات الخلوية والجزيئية لتشكيل neotissue في TEVG.

ويرد التخطيطي TEVG غرس في الشكل 1. كان حصادها نخاع العظم من الماوس المانحة وتم عزل الخلايا أحادية النووي باستخدام كثافة الطرد المركزي ثم المصنف على سقالة قابلة للتحلل. حضنت السقالات المصنفة O / N وزرعها لماوس المتلقي باعتبارها الوريد الأجوف السفلي مداخلة الكسب ...

Watch this Scientific Journal Video about Implantation of Inferior Vena Cava Interposition Graft in Mouse Model at JoVE.com

Implantation of Inferior Vena Cava Interposition Graft in Mouse Model

لتحسين معرفتنا تشكيل neotissue الخلوية والجزيئية، تم تطوير نموذج الفئران من TEVG مؤخرا. تم زرع الطعوم كما infrarenal ترقيع الوريد الأجوف مداخلة في C57BL / 6 الفئران. هذا النموذج يحقق نتائج مماثلة لتلك التي تحققت في التحقيق السريرية لدينا، ولكن على مدى تقصير حتى الوقت بالطبع.

زرع الوريد الأجوف السفلي مداخلة الكسب غير المشروع في نموذج الفأر

Biodegradable scaffolds seeded with bone marrow mononuclear cells (BMCs) are often used for reconstructive surgery to treat congenital cardiac anomalies. ...

implantation-of-inferior-vena-cava-interposition-graft-in-mouse-model

Research

JoVE Journal

Medicine

11.7K Views.  Nationwide Children's Hospital.  لتحسين معرفتنا تشكيل neotissue الخلوية والجزيئية، تم تطوير نموذج الفئران من TEVG مؤخرا. تم زرع الطعوم كما infrarenal ترقيع الوريد الأجوف مداخلة في C57BL / 6 الفئران. هذا النموذج يحقق نتائج مماثلة لتلك التي تحققت في التحقيق السريرية لدينا، ولكن على مدى تق?...

Video: Implantation of Inferior Vena Cava Interposition Graft in Mouse Model

Electrolytic Inferior Vena Cava Model (EIM) of Venous Thrombosis

Animal models serve a vital role in deep venous thrombosis (DVT) research in order to study thrombus formation, thrombus resolution and to test potential therapeutic compounds (1). New compounds to be utilized in the treatment and prevention of DVT are currently being developed. The delivery of potential therapeutic antagonist compounds to an affected thrombosed vein has been problematic. In the context of therapeutic applications, a model that uses partial stasis and consistently generates thrombi within a major vein has been recently established. The Electrolytic Inferior vena cava Model (EIM) is mouse model of DVT that permits thrombus formation in the presence of continuous blood flow. This model allows therapeutic agents to be in contact with the thrombus in a dynamic fashion, and is more sensitive than other models of DVT (1). In addition, this thrombosis model closely simulates clinical situations of thrombus formation and is ideal to study venous endothelial cell activation, leukocyte migration, venous thrombogenesis, and to test therapeutic applications (1). The EIM model is technically simple, easily reproducible, creates consistent thrombi sizes and allows for a large sample (i.e. thrombus and vein wall) which is required for analytical purposes.

Electrolytic Inferior Vena Cava Model EIM of Venous Thrombosis

The electrolytic induction of endothelial activation to the internal surface of the Inferior Vena Cava results in venous type thrombus formation due to endothelial activation and partial blood stasis, two components of Virchow's triad.

كهربائيا الوريد الأجوف السفلي النموذجي (EIM) من التخثر الوريدي

Animal models serve a vital role in deep venous thrombosis (DVT) research in order to study thrombus formation, thrombus resolution and to test potential ...

Mouse Complete Stasis Model of Inferior Vena Cava Thrombosis

Venous thromboembolism (VTE) includes both deep vein thrombosis (DVT) and pulmonary embolism (PE). In the United States (U.S.), the high morbidity and mortality rates make VTE a serious health concern 1-2. After heart disease and stroke, VTE is the third most common vascular disease 3. In the U.S. alone, there is an estimated 900,000 people affected each year, with 300,000 deaths occurring annually 3. A reliable in vivo animal model to study the mechanisms of this disease is necessary.
The advantages of using the mouse complete stasis model of inferior vena cava thrombosis are several. The mouse model allows for the administration of very small volumes of limited availability test agents, reducing costs dramatically. Most promising is the potential for mice with gene knockouts that allow specific inflammatory and coagulation factor functions to be delineated. Current molecular assays allow for the quantitation of vein wall, thrombus, whole blood, and plasma for assays. However, a major concern involving this model is the operative size constraints and the friability of the vessels. Also, due to the small IVC sample weight (mean 0.005 grams) it is necessary to increase animal numbers for accurate statistical analysis for tissue, thrombus, and blood assays such as real-time polymerase chain reaction (RT-PCR), western blot, enzyme-linked immunosorbent (ELISA), zymography, vein wall and thrombus cellular analysis, and whole blood and plasma assays 4-8.
The major disadvantage with the stasis model is that the lack of blood flow inhibits the maximal effect of administered systemic therapeutic agents on the thrombus and vein wall.

The mouse complete stasis model of inferior vena cava thrombosis yields quantifiable amounts of vein wall tissue and thrombus. It has proven useful for evaluating interactions between the vein wall and the occlusive thrombus and in assessing the progression from acute to chronic inflammation.

الفأرة النموذجي ركود كاملة من الوريد الأجوف السفلي التخثر

Venous thromboembolism (VTE) includes both deep vein thrombosis (DVT) and pulmonary embolism (PE).  In the United States (U.S.), the high morbidity and ...

Training a Sophisticated Microsurgical Technique: Interposition of External Jugular Vein Graft in the Common Carotid Artery in Rats

Neointimal hyperplasia is one the primary causes of stenosis in arterialized veins that are of great importance in arterial coronary bypass surgery, in peripheral arterial bypass surgery as well as in arteriovenous fistulas.1-5 The experimental procedure of vein graft interposition in the common carotid artery by using the cuff-technique has been applied in several research projects to examine the aetiology of neointimal hyperplasia and therapeutic options to address it. 6-8 The cuff prevents vessel anastomotic remodeling and induces turbulence within the graft and thereby the development of neointimal hyperplasia.
Using the superior caval vein graft is an established small-animal model for venous arterialization experiment.9-11 This current protocol refers to an established jugular vein graft interposition technique first described by Zou et al., 9 as well as others.12-14 Nevertheless, these cited small animal protocols are complicated.
To simplify the procedure and to minimize the number of experimental animals needed, a detailed operation protocol by video training is presented. This video should help the novice surgeon to learn both the cuff-technique and the vein graft interposition. Hereby, the right external jugular vein was grafted in cuff-technique in the common carotid artery of 21 female Sprague Dawley rats categorized in three equal groups that were sacrificed on day 21, 42 and 84, respectively. Notably, no donor animals were needed, because auto-transplantations were performed. The survival rate was 100 % at the time point of sacrifice. In addition, the graft patency rate was 60 % for the first 10 operated animals and 82 % for the remaining 11 animals. The blood flow at the time of sacrifice was 8&plusmn;3 ml/min. In conclusion, this surgical protocol considerably simplifies, optimizes and standardizes this complicated procedure. It gives novice surgeons easy, step-by-step instruction, explaining possible pitfalls, thereby helping them to gain expertise fast and avoid useless sacrifice of experimental animals.

Neointimal hyperplasia is the primary cause of stenosis in arterialized veins. We propose a new protocol whereby the right external jugular vein is grafted using the cuff technique in the common carotid artery of Sprague Dawley rats. The survival rate was 100 % at the time point of sacrifice.

تدريب تقنية متطورة المجهرية: مداخلة من حبل الوريد الخارجية الكسب غير المشروع في الشريان السباتي المشترك في الجرذان

Neointimal hyperplasia is one the primary causes of stenosis in arterialized veins that are of great importance in arterial coronary bypass surgery, in ...

Vein Interposition Model: A Suitable Model to Study Bypass Graft Patency

Bypass grafting is an established treatment method for coronary artery disease. Graft patency continues to be the Achilles heel of saphenous vein grafts. Research models for bypass graft failure are essential for a better understanding of pathobiological and pathophysiological processes during graft patency loss. Large animal models, such as pigs or sheep, resemble human anatomical structures but require special facilities and equipment. This video describes a rat vein interposition model to investigate vein graft patency loss. Rats are inexpensive and easy to handle. Compared to mouse models, the convenient size of rats permits better operability and enables a sufficient amount of material to be obtained for further diverse analysis. In brief, the inferior epigastric vein of a donor rat is harvested and used to replace a segment of the femoral artery. Anastomosis is conducted via single stitches and sealed with fibrin glue. Graft patency can be monitored non-invasively using duplex sonography. Myointimal hyperplasia, which is the main cause for graft patency loss, develops progressively over time and can be calculated from histological cross sections.

This video demonstrates a model to study the development of myointimal hyperplasia after venous interposition surgery in rats.

الوريد الإعتراض نموذج: نموذج مناسب لدراسة الالتفافية الكسب غير المشروع الإنفتاح

Bypass grafting is an established treatment method for coronary artery disease. Graft patency continues to be the Achilles heel of saphenous vein grafts. ...

Patch Angioplasty in the Rat Aorta or Inferior Vena Cava

Pericardial patches are commonly used in vascular surgery to close vessels. To facilitate studies of the neointimal hyperplasia that forms on the patch, we developed a rat model of patch angioplasty that can be used in either a vein or an artery, creating a patch venoplasty or a patch arterioplasty, respectively. Technical aspects of this model are discussed. The infra-renal IVC or aorta are dissected and then clamped proximally and distally. A 3 mm venotomy or arteriotomy is performed in the infrarenal inferior vena cava or aorta of 6 to 8 week-old Wistar rats. A bovine pericardial patch (3 mm x 1.5 mm x 0.6 mm) is then used to close the site using a 10-0 nylon suture. Compared to arterial patches, venous patches show increased neointimal thickness on postoperative day 7. This novel model of pericardial patch angioplasty can be used to examine neointimal hyperplasia on vascular biomaterials, as well as to compare the differences between the arterial and venous environments.

We have established a model of pericardial patch angioplasty that can be used in either small-diameter veins or arteries. This model can be used to compare venous and arterial neointimal hyperplasia formation.

تصحيح القسطرة في الشريان الأورطي الجرذ أو الوريد الأجوف السفلي

Pericardial patches are commonly used in vascular surgery to close vessels. To facilitate studies of the neointimal hyperplasia that forms on the patch, ...

A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep learning curve. The introduction of the cuff technique for anastomosis of the portal vein (PV) and infrahepatic vena cava (IHVC) has significantly simplified the transplant procedure in rats. However, due to the short anterior wall of the recipients' suprahepatic vena cava (SHVC), the cuff technique is very difficult to use for the reconstruction of the SHVC. Most researchers in this field still use the hand-suture technique for SHVC reconstruction, which makes it the bottleneck step in rat orthotopic liver transplantation. The magnetic anastomosis technique (i.e., magnamosis) is a method of connecting two vessels using the attractive force between two magnets. Our recent study has shown that the magnetic anastomosis technique is superior to the hand-suture technique for SHVC reconstruction in rats. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using the novel magnetic anastomosis technique. In this model, the reconstruction of the PV and IHVC was performed by the standard cuff technique, while the reconstruction of the bile duct (BD) was performed by a stent technique. The hepatic re-arterialization was not performed. The magnetic anastomosis technique made SHVC reconstruction much easier and significantly shortened the anphepatic phase. After a reasonable learning curve, even researchers without advanced microsurgical skills can produce reliable and reproducible results using this rat model of OLT.

The reconstruction of the suprahepatic vena cava (SHVC) remains a difficult step in rat orthotopic liver transplantation. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using a novel magnetic anastomosis technique.

نموذج الفئران من أورثوتوبيك زرع الكبد استخدام تقنية رواية ملامسة مغناطيسي للتعمير الوريد الأجوف سوبراهيباتيك

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep ...

Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and drugs. It is widely used in many studies on the physiological functions of vascular smooth muscle, the pathogenesis of vascular diseases such as hypertension, and the development of smooth muscle relaxant drugs. The mouse is a widely used model animal with a large pool of disease models and genetically modified strains. We introduced this method to measure the isometric contraction of mouse mesenteric artery in detail. A 1.4-mm segment of mouse mesenteric resistance artery was isolated and mounted on a myograph chamber by passing two steel wires through its lumen. After equilibration and normalization steps, the vessel segment was potentiated by a high-K+ solution twice prior to the contraction assay. As an example of the application of this method in drug development, we measured the relaxant effect of a novel natural substance, neoliensinine, isolated from a Chinese herb, embryos of the lotus seed (Nelumbo nucifera Gaertn.) on mouse mesenteric arteries. The vessel segments mounted on the myograph chamber were stimulated with a high-K+ solution. When the force tension reached a stable sustained phase, cumulative doses of neoliensinine were added to the chamber. We found that neoliensinine had a dose-dependent relaxant effect on smooth muscle contraction, thus suggesting that it bears potential activity against hypertension. In addition, as the vessel segment can survive at least 4 hours after mounting and maintain contractility induced by the high-K+ solution for many times, we suggest that the wire myograph system may be used for the time-consuming process of drug screening.

The wire myograph technique is used to investigate vascular smooth muscle functions and screen new drugs. We report a detailed protocol for measuring the isometric contractility of the mouse mesenteric artery and for screening new relaxants of vascular smooth muscle.

متساوي القياس كونتراكتيليتي القياس الشريان المساريقي العلوي الماوس باستخدام أسلاك ميوجرافي

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and ...

A Rodent Model of The Ross Operation: Syngeneic Pulmonary Artery Graft Implantation in A Systemic Position

The Ross operation for aortic valve disease has regained new interest due to its outstanding long-term results. Nonetheless, when employed as freestanding root replacement, the possible dilation of the pulmonary autograft and subsequent aortic regurgitation is described. Several animal models have been proposed. However, these are usually limited to ex-vivo models or in-vivo experiments with relatively expensive large animal models. In this study, we sought to establish a rodent model of pulmonary artery graft (PAG) implantation in a systemic position. A total of 39 adult Lewis rats were included. Immediately after euthanasia, the pulmonary root was harvested from a donor animal (n=17). Syngeneic recipient (n=17) and sham-operated (n=5) rats were sedated and ventilated. In the recipient group, the PAG was implanted with an end-to-end anastomosis in infra-renal abdominal aortic position. Sham-operated rats underwent only transection and re-anastomosis of the aorta. Animals were followed with serial ultrasound studies for two months and post-mortem histological analysis. The median PAG diameter in the native position was 3.20 mm (IQR=3.18-3.23). At follow-up, the median diameter of the PAG was 4.03 mm (IQR=3.74-4.13) at 1 week, 4.07 mm (IQR=3.80-4.28) at 1 month, and 4.27 mm (IQR=3.90-4.35) at 2 months (p&lt;0.01). Peak systolic velocity was 220.07 mm/s (IQR=210.43-246.41) at 1 week, 430.88 mm/s (IQR=375.28-495.56) at 1 month, and 373.68 mm/s (IQR=305.78-429.81) at 2 months (p=0.02) and did not differ from the sham-operated group at the end of the experiment (p=0.5). Histological analysis did not show any sign of endothelial thrombosis. This study showed that rodent models may allow for the evaluation of the long-term adaptation of the pulmonary root to a high-pressure system. A systemically placed syngeneic PAG implantation represents a simple and feasible platform for the development and evaluation of novel surgical techniques and drug therapies to further improve the outcomes of the Ross operation.

We demonstrate how to establish a murine model of pulmonary root implantation into the descending aorta to simulate the Ross procedure. This model enables the medium/long-term evaluation of pulmonary autograft remodeling in a systemic position, representing the basis of developing therapeutic strategies to promote its adaptation.

نموذج القوارض لعملية روس: زرع الطعم الشرياني الرئوي المتلازمين في وضع نظامي

The Ross operation for aortic valve disease has regained new interest due to its outstanding long-term results. Nonetheless, when employed as freestanding ...

Image Acquisition Method for the Sonographic Assessment of the Inferior Vena Cava

Over the past several decades, clinicians have incorporated several applications of diagnostic point-of-care ultrasound (POCUS) into medical decision-making. Among the applications of POCUS, imaging the inferior vena cava (IVC) is practiced by a wide variety of specialties, such as nephrology, emergency medicine, internal medicine, critical care, anesthesiology, pulmonology, and cardiology. Although each specialty uses IVC data in slightly different ways, most medical specialties, at minimum, attempt to use IVC data to make predictions about intravascular volume status. While the relationship between IVC sonographic data and intravascular volume status is complex and highly context-dependent, all clinicians should collect the sonographic data in standardized ways to ensure repeatability. This paper describes standardized IVC image acquisition including patient positioning, transducer selection, probe placement, image optimization, and the pitfalls and limitations of IVC sonographic imaging.&#160;This paper also describes the commonly performed anterior IVC long-axis view and three other views of the IVC that can each provide helpful diagnostic information when the anterior long-axis view is difficult to obtain or interpret.

Point-of-care ultrasound evaluation of the inferior vena cava (IVC) is commonly utilized to identify, among other things, the volume status. Imaging should be performed systematically to ensure repeatability. This manuscript reviews the methods and pitfalls of sonographic IVC examination.

طريقة الحصول على الصور للتقييم بالموجات فوق الصوتية للوريد الأجوف السفلي

Over the past several decades, clinicians have incorporated several applications of diagnostic point-of-care ultrasound (POCUS) into medical ...

استراتيجيات لمفاغرة الأوعية الدموية الفعالة في زراعة كبد الفأر

Vascular Reconstruction with the Cuff Technique in Mouse Orthotopic Liver Transplantation

Mouse orthotopic liver transplantation is an effective methodology for investigating the underlying mechanisms of liver ischemia and reperfusion injury. However, the technical challenges pose a barrier to utilizing this valuable experimental model and passing on these skills to the next generation. The most challenging aspect of this procedure is vascular reconstruction, including the portal vein (PV), infrahepatic inferior vena cava (IHIVC), and suprahepatic inferior vena cava. The use of plastic cuffs, rather than sutures, allows for smoother PV and IHIVC reconstruction. Vessels are reconstructed by attaching a cuff made from an intravenous catheter to the tip of the graft vessel and interposing the cuff into the recipient vessel. The two most crucial aspects are properly visualizing the inner lumen of the vessel and avoiding the use of excessive force. Our aim is to provide a technical overview of vascular reconstructions using the cuff technique in recipient surgery. These technical tips for the cuff technique are expected to help microsurgeons facilitate vascular reconstruction and advance their research.

تسليط الضوء على المؤلف: استكشاف نقص التروية الباردة وإصابة إعادة التروية الدافئة في زراعة الكبد الدهني

This protocol provides technical information for vessel reconstruction using the cuff technique in mouse orthotopic liver transplantation.

إعادة بناء الأوعية الدموية بتقنية الكفة في زراعة الكبد التقويمية للفأر

Mouse orthotopic liver transplantation is an effective methodology for investigating the underlying mechanisms of liver ischemia and reperfusion injury. ...