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  • 摘要
  • 摘要
  • 研究方案
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

该视频应普及胶体考马斯亮蓝G - 250染色协议,根据康等。

摘要

考马斯亮蓝(CBB)是常用的SDS - PAGE分离蛋白的可视化,提供一个简单的染色程序和高定量的染料。此外,它是完全兼容与质谱蛋白质鉴定。但尽管有这些优势,CBB被认为是比银或荧光染色法和较不敏感,因此很少用于分析凝胶为基础的蛋白质组学方法检测蛋白质。

已作出了一些改进原来的考马斯协议 1增加CBB灵敏度。两个重大修改,以提高转换成胶体粒子的染料分子的低丰度蛋白质的检测:在1988年,Neuhoff和他的同事们应用到的CBB G - 250基于染色溶液2 20%甲醇和硫酸铵的浓度较高,和2004年Candiano等。建立了蓝银在硫酸铵和甲醇 3在场的CBB G - 250使用磷酸。然而,所有这些修改,只允许约10毫微克蛋白质的检测。一个广泛琐细的协议,胶体考马斯染色康有为等人在2002年发表了他们关于修改Neuhoff胶体CBB染色协议的络合物质。取而代之的硫酸铵,他们用硫酸铝和甲醇毒性较低的乙醇 4取代。的新型铝为基础的染色,在康有为的研究中表现出卓越的灵敏度,可检测低为1毫微克/乐队(磷酸二)与灵敏度变化不大,对蛋白质而定。

在这里,我们展示了康有为的快速和敏感的胶体考马斯亮蓝染色分析目的蛋白的协议的应用程序。我们将说明使用二维凝胶经常在我们的工作小组进行快速和容易的协议。

研究方案

第1部分:二维(2 - D)凝胶电泳,用杯装

  1. IPG -带补液等电聚焦(IEF)
    • 在125μL补液盐补充水分Immobiline DryStrip凝胶,pH值6-11(7厘米)[7 M尿素,硫脲2米,4%CHAPS,50毫米hydroxyethyldisulfide和2%IPG缓冲液的pH值6-11]采用Immobiline DryStrip Reswelling托盘至少10小时。
    • 在IEF样品缓冲液溶解沉淀蛋白质样品[7 M尿素,硫脲2米,2%CHAPS,2%的ASB - 14,50 mM的hydroxyethyldisulfide和2%IPG缓冲液的pH值6-11]对应60-100微克每100μL蛋白。
    • 增溶(在室温下至少30分钟)后,申请通过阳极使用样品杯的杯装的蛋白质样品。杯的体积为100μL(集成块杯允许多达150μL)。
      注意:您可以负荷较大的样品量,如果你插入一个低电压的一步,在开始聚焦协议和笔芯的杯子,而仍然是一个有在杯子里的液体膜!
    • 进行等电聚焦Multiphor II电泳单位在梯度模式为11.1 KVH。
  2. 平衡和SDS - PAGE电泳
    • IEF后,IPG胶条受到还原和烷基化,每次15分钟,在摇床,平衡的解决方案中使用1%和2.5%二硫苏糖醇碘乙酰胺[50毫米Tris-HCl/pH 8.8,6​​ M尿素,30%甘油和2%SDS]。
    • 与H 2 O冲洗平衡条和印迹上的Whatman纸,以除去多余的的平衡缓冲液。之后浸在SDS运行缓冲液(1X)条。
    • 第二个方面是通过SDS - PAGE垂直电泳系统与总丙烯酰胺浓度为12%。平衡IPG胶条被放置在分离胶的顶部,并用热的琼脂糖溶液[0.5%琼脂糖凝胶电泳缓冲液含有溴酚蓝]固定。
    • 蛋白分离为2.5小时,在15分钟为120伏,直到染料前沿到达凝胶盒底部的80 V开始。

第2部分:胶体考马斯亮CBB G - 250染色

1。染色解决方案
注:染色解决方案的编制,使用分析纯(PA)和高纯度的水,如高品质的微孔系统(Milli - Q水 )的化学品。

考马斯亮解决方案: 公元2000毫升H 2 O
0.02%(W ​​/ V) CBB摹- 250 0,4克
5%(W / V) 硫酸铝(14-18)水合物 100克
10%(V / V) 乙醇(96%) 200毫升
2%(V / V) 正磷酸(85%) 47毫升

注:编制染色液的组成部分,按照下列顺序连续此外,要保持:

  1. 首先在Milli - Q水溶解硫酸铝
  2. 其后添加乙醇,均质,混合CBB G - 250解决方案
  3. 最近的解决方案是完全溶解后,加磷酸(酸掺入酒精媒体允许进入其胶体状态的考马斯分子聚合)
  4. 终于填补了Milli - Q水

注:最终的染色解决方案有一个黑暗的绿色,蓝色的外观和充满游泳周围的粒子:

  • 不要滤液这个解决方案!
  • 如果您更改编制的顺序,你会得到一个紫蓝色的解决方案,是较不敏感。
脱色的解决方案: 公元2000毫升H 2 O
10%(V / V) 乙醇(96%) 200毫升
2%(V / V) 正磷酸(85%) 47毫升

2。染色过程

  • 第二维分离后,小心取出凝胶玻璃板,他们转移到Milli - Q水填补了染色菜。
  • 凝胶洗净Milli - Q水水平摇床(洗衣机不足,导致敏感性差,因为SDS凝胶其余扰乱边界的蛋白质染料)10分钟三次。
  • 摇动考马斯亮解决方案,使用前均匀分散的胶体颗粒。
  • 孵育与考马斯亮解决方案覆盖上一个摇床搅拌2-12小时的凝胶。这染色产生的边际的背景,所以你可以观察到染色之间的进展。
    注:10分钟后,你可以看到第一个蛋白质点出现在2个小时的孵化内,约80 %,染色,。完成的最高水平。近100%,染色,孵育过夜建议。在某些情况下,当被染色的蛋白质的数量是巨大的和解决方案变成为一个明亮的蓝色,刷新染色解决方案是必要的。
  • 经过染色过程中删除的考马斯解决方案和Milli - Q水冲洗两次凝胶。
    注意:只要您可以重复使用的染色溶液颗粒尚存,否则丢弃(请记住,您的实验室可能有特殊规定的废物处置)。
  • 删除坚持与无棉绒纸巾染色菜的染料颗粒destain为10 - 60分钟。
    注意:您还可以洗Milli - Q水凝胶,但是这一点,我们只推荐用于制备凝胶,因为将有最后对凝胶,在扫描过程中会出现一个不规则的,弱的考马斯电影。
  • 最后Milli - Q水冲洗两次凝胶:凝胶将达到原来的厚度(酒精酸性介质中,使凝胶萎缩)和中和在水中此外增强考马斯的颜色强度。

第3部分:代表结果

如果按照上述协议,您将获得2 - D凝胶独特的解决和染深蓝色的蛋白质斑点。甚至比2 - D凝胶,银染根据舍甫琴科等 。5,良好的灵敏度和兼容性与质谱的协议,声称,我们实现平等的染色效果。

figure-protocol-3052
图1:上述实验的最后结果。康有为的考马斯协议(一)执行强烈如银染, 舍甫琴科等 。(B)在检测后的2 - D凝胶电泳的蛋白质。

第4部分:技巧和窍门

  • 执行一些测试你自己的样品前处理染色法。无法解释的原因,我们有时一个感兴趣的蛋白质不能被检测到成功应用甚至当毫克。在这种情况下,我们建议准备一些系列稀释,检测灵敏度。
  • 如果你有低 - 凝胶检测的蛋白质(S)在一般情况下,堆放过程中的SDS - PAGE分离胶转移不成功的可能原因。您可以检查这些粘蛋白染色完整的凝胶,包括堆叠区。
  • 快速验证了您的等电聚焦结果,您可以直接染色IPG条,没有任何进一步的第二维分离。
  • 偶尔打开在染色过程中的凝胶,使他们双方染色均匀(如果你保持无动于衷凝胶,染料结合到凝胶的一面)。
  • 我们经验丰富的,存放在一个黑暗的瓶染色液的增加其生命周期(透明瓶至4月)。
  • 经过染色和记录,你可以保持几年的凝胶在冰箱中(如果您添加酸性溶液中避免由真菌污染)。
  • 脱色凝胶插头为胰蛋白酶消化,可以加速变暖块加热器。

讨论

创新或只是另一种考马斯亮协议?

目前存在与考马斯亮蓝染色程序的多个协议。他们大多导致轻微或重大修改Neuhoff和同事2最常用的协议之一。康有为的协议的基础上Neuhoff的公式。但它真的蛋白质组学研究的一个替代的考马斯染色的方法吗?我们将图片的两个主要问题,检测限和可用性,证据表明,它绝对是一个有益的染色协议相比其他考马斯亮协议,甚至银色和荧...

披露声明

我没有透露。

致谢

我们感谢为准备和染色1 - D凝胶Nicola博士Wiethölter。

这项工作是由来自德意志研究联合会(GRK 1089/project 5 ND和SM)的资助,由来自于尔根Manchot的研究奖学金基金会于Nd支持。

材料

产品名称 公司 目录号 评论
对于IEF和SDS - PAGE电泳:
Immobiline DryStrip凝胶 GE医疗集团 17-6001-94 甚至可以使用2年后到期日期。
Immobiline DryStrip Reswelling托盘 GE医疗集团 80-6371-84 不要用有机溶剂清洗。专为7-18厘米IPG条。
Immobiline DryStrip套件 GE医疗集团 18-1004-30 包括一个托盘,电极支架,阳极和阴极电极,对准和样品杯酒吧和样品杯。
每股盈利3501 XL电源 GE医疗集团 18-1130-05 供应电压高达3500 V。
Multiphor第二电泳单位 GE医疗集团 18-1018-06 移动电极使国际盛事基金在所有长度的IPG胶条(7-24厘米IPG胶条)
PerfectBlue凝胶体系双人小号 Peqlab 45 - 1010 - C SDS - PAGE电泳在10X10厘米的微型胶格式。凝胶室包括一个冷却系统。
胶体考马斯亮蓝G - 250染色:
染色与盖菜 VWR 216-3412 适合用于小型凝胶。摇床可堆叠。
硫酸铝- 18 -水合物默克公司 1.01102.5000 我们最好与默克公司的经验。刚上市的5公斤包装。
磷酸 Prolabo 20 624.295 玻璃瓶出售。

参考文献

  1. Fazekas de St Groth, S., Webster, S. R. G., Datyner, A. Two new staining procedures for quantitative estimation of proteins on electrophoretic strips. Biochim. Biophys. Acta. 71, 377-391 (1963).
  2. Neuhoff, V., Arold, N., Taube, D., Ehrhardt, W. Improved staining of proteins in polyacrylamide gels including isoelectric focusing gels with clear background at nanogram sensitivity using Coomassie Brilliant Blue G-250 and R-250. Electrophoresis. 9, 255-262 (1988).
  3. Candiano, G., Bruschi, M., Musante, L., Santucci, L., Ghiggeri, G. M., Carnemolla, B., Orecchia, P., Zardi, L., Rigetti, P. G. Blue Silver: A very sensitive colloidal Coomassie G-250 staining for proteome analysis. Electrophoresis. 25, 1327-1333 (2004).
  4. Kang, D., Gho, S. G., Suh, M., Kang, C. Highly Sensitive and Fast Protein Detection with Coomassie Brilliant Blue in Sodium Dodecyl Sulfate-Polyacrylamide Gel Electrophoresis. Bull. Korean Chem. Soc. 11, 1511-1512 (2002).
  5. Shevchenko, A., Wilm, M., Vorm, O., Mann, M. Mass spectrometric sequencing of proteins silver-stained polyacrylamide gels. Anal. Chem. 68, 850-858 (1996).

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