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Method Article
在这段视频中,我们展示了用于制造兼容,细胞外基质(ECM)适用于细胞培养镀膜基片的实验技术,适合牵引力显微镜观察细胞的行为流脑刚度的影响。
调节细胞粘附到细胞外基质(ECM)是细胞迁移和ECM重构是必要的。粘着斑大分子集会,情侣收缩的F -肌动蛋白细胞骨架的ECM。此连接可以穿过细胞膜,细胞内的机械力的传输底层基板。最近的工作表明ECM的力学性能调节粘着和F -肌动蛋白的形态以及众多的生理过程,包括细胞分化,分裂,增殖和迁移。因此,细胞培养基质的使用,已成为越来越普遍的方法,能够精确地控制和调节ECM的力学性能。
为了量化在粘着斑贴壁细胞的牵引力量,兼容基板结合高分辨率成像和计算技术中的一个方法被称为牵引力显微镜(TFM)。这种技术依赖于当地的基板变形诱发细胞收缩幅度和方向的测量。高分辨率荧光显微镜观察荧光标记的蛋白质相结合,这是可能的关联骨架组织和重塑与牵引力。
在这里,我们提出了一个详细的实验方案编制二维的兼容矩阵,为创造一个良好的特点,可调谐的机械刚度,这是适合测量细胞收缩的细胞培养基材的目的。这些协议包括聚丙烯酰胺凝胶的制备,ECM蛋白等凝胶涂料,电镀细胞凝胶,和高分辨率的共聚焦显微镜使用灌注室。此外,我们提供了一个代表性的样本数据表明使用列举的水杉协议的蜂窝力量的位置和震级。
1。激活盖玻片表面
2。制备聚丙烯酰胺(PAA)凝胶
3。 PAA凝胶耦合细胞外基质(ECM)的蛋白质
三种不同的方法可用于附加的ECM蛋白的PAA凝胶的顶部表面(3.1和3.2),或含有凝胶体积(3.3)内的ECM蛋白。在这里,我们讨论PAA凝胶纤维连接蛋白的耦合,导致孵化后玻璃上的1小时10微克/毫升纤维连接蛋白溶液吸附量相当于一个表面配基密度。选择方法的注意事项有详细的讨论。
这些步骤进行后,细胞已被允许传播ECM涂层凝胶基片(约6-12小时)。要组装的共焦成像室(RC - 30WA),它是有用的咨询指导华纳仪器网站。
代表性的成果:
上述协议描述为准备符合PAA凝胶研究细胞收缩的实验过程,如图1所示。与本协议获得的凝胶表面相对平整,光滑,嵌入式均匀的荧光珠(图2A)。
如果在粘着斑的位置,细胞成像(图3A)和凝胶表面(图3B)测量凝胶收缩应该做的共焦光学平面粘着斑。凝胶的收缩,可在凝胶表面的可视化,当细胞贴壁(紧张)与分离(非应变)嵌入式荧光灯珠的位移(图3B)。计算算法的使用,可以产生与凝胶珠的位移和相应的弹性模量(图3C和3D)(Sabass等,2008 )的牵引强调。如果成像发生在凝胶深,然后将珠的位移较小,不粘着斑产生的牵引力量的代表。
图1实验装置示意图。此过程的总体目标是创建兼容的矩阵为研究细胞收缩的目的。实验过程的第一步是激活amino-silane/glutaraldehyde治疗为目的的锚固聚合凝胶的盖玻片。第二步是聚合聚丙烯酰胺凝胶,含有荧光珠,到激活盖玻片。第三步涉及的化学交叉连接胞外配体的聚丙烯酰胺凝胶表面,使用第3步中列出的三个耦合技术之一。细胞,然后镀上凝胶,坚持和传播。根据活跃的细胞收缩,嵌入在凝胶珠取代。
图2。PAA凝胶的顶部表面的光学共焦片,可视化(A)内凝胶荧光的40nm嵌入式珠和纤维连接蛋白(B)免疫。
图3。牵引力实验代表性的结果。 (A)在人成骨肉瘤U2OS细胞的粘着斑是Marked GFP - Paxillin的嵌入在PAA底层紧张(绿色)和非应变(红色)的重点粘连凝胶的荧光珠(二)岗位。箭头指示珠位移的例子。 (三)牵引应力向量和(四)相应的热规模牵引地图强调来自凝胶收缩,采用计算算法(Sabass 等 ,2008)。比例尺= 5微米。
表1:
范例股票和工作的临机解决方案(表1中的数据是首次获得杨等人。,并独立在我们的实验室证实。)
股票临时机场管理局的解决方案 | ||||
剪切模量(PA)的PAA凝胶 | 230 | 2833 | 8640 | 16344 |
40%丙烯酰胺(毫升) | 1.25 | 3.12 | 2.34 | 2.50 |
2%双丙烯酰胺(毫升) | 0.50 | 0.83 | 1.88 | 0.60 |
水(毫升) | 3.25 | 1.04 | 0.78 | 1。 90 |
总体积(ml): | 5 | 5 | 5 | 5 |
工作临机解决方案 | ||||
联合解决方案中使用(PA) | 230 | 2833 | 8640 | 16344 |
股票溶液的体积(微升) | 150 | 150 | 200 | 300 |
水(微升) | 341.75 | 341.75 | 291.75 | 191.75 |
珠(微升) | 5 | 5 | 5 | 5 |
TEMED(微升) | 0.75 | 0.75 | 0.75 | 0.75 |
10%的APS(微升) | 2.5 | 2.5 | 2.5 | 2.5 |
总体积(μL): | 500 | 500 | 500 | 500 |
最后丙烯酰胺% | 3 | 7.5 | 7.5 | 12 |
最终双丙烯酰胺% | 0.06 | 0.1 | 0.3 | 0.15 |
表2:
剪切模量的PAA基板的各种最终丙烯酰胺和双丙烯酰胺的百分比
12%丙烯酰胺 | 7.5%丙烯酰胺 | |||
%双丙烯酰胺 | 剪切模量(PA) | %双丙烯酰胺 | 剪切模量(PA) | |
0.145 | 16344 | 0.01 | 689 | |
0.28 | 30067 | 0.03 | 1535 | |
0.45 | 34263 | 0.05 | 2286 | |
0.55 | 42375 | 0.075 | 2833 | |
0.575 | 50873 | 0.1 | 4069 | |
0.6 | 55293 | 0.2 | 5356 | |
0.3 | 8640 | |||
5%丙烯酰胺 | 3%丙烯酰胺 | |||
%双丙烯酰胺 | 剪切模量(PA) | %双丙烯酰胺 | 剪切模量(PA) | |
0.05 | 430 | 0.02 | 1.3 | |
0.075 | 600 | 0.04 | 54 | |
0.1 | 1431 |
这里描述的步骤设置牵引力显微镜(TFM)实验,计算跟踪程序的实施等,2008)(Sabass,可量化与微米级的空间分辨率的细胞力量。为了优化实验方案,关键是形成一个纯粹的和统一的凝胶基板与ECM的配体的镀层均匀。我们将讨论下面潜在的隐患:
非均匀的凝胶表面或眼泪:
在我们的经验,有几个步骤,似乎形成了一个漂亮的制服凝胶的关键。如果?...
我们感谢乌尔里希施瓦茨实验室用于蜂窝牵引力(Sabass 等 ,2008)的量化的计算跟踪软件。这项工作是由宝来惠康事业奖和美国国立卫生研究院主任的先锋奖(DP10D00354)ML Gardel和医学科学家的国家研究服务奖(5 T32 GM07281)到SP冬季的支持。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
3-aminopropyltrimethyoxysilane | Aldrich | 28, 177-8 | |
40% Acrylamide | Bio-Rad | 161-0140 | |
2% Bis-acrylamide | Fisher Scientific | BP1404 | |
TEMED | Fisher Scientific | BP 150-20 | |
Ammonium persulfate | Fisher Scientific | BP179 | |
40nm fluorescent micro-spheres | Invitrogen | F8789 | |
Sulfo-SANPAH | Pierce, Thermo Scientific | 22589 | |
Confocal imaging chamber (RC-30) | Warner Instruments | 64-0320 | |
Coverslip spinner | Home made | NA | |
Ultraviolet lamp CL1000 | UVP Inc. | 95-0228-01 | |
Stainless steel rack | Electron Microscopy Sciences | 72239-04 | |
acryloyl-X, SE (6-((acryloyl)amino)hexanoic acid) | Invitrogen | A-20770 | |
Hydrazine hydrate | Sigma-Aldrich | 225819 | |
Sodium meta-periodate | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 20504 | |
Isopropanol | Fisher Scientific | A416-4 | |
Fibronectin | Sigma-Aldrich | F2006 | |
Collagen | BD Biosciences | 354236 | |
Coverslips (#1.5) | Corning | 2940‐224 | |
Glutaraldehyde | Electron Microscopy Sciences | 16120 | |
Rain-X | SOPUS Products | www.rainx.com | |
Acetic Acid | Acros Organics | 64-19-7 |
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