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本协议描述了一个简单而廉价的方式来量化的顺式调控元件的活动(即,增强/促销员)通过外植体电小鼠视网膜生活。 DNA的制备,视网膜剥离,电,视网膜外植体文化,和固定后的分析和定量描述。
在细胞基因网络转录因子控制的时空格局和它们的靶基因的表达水平 ,结合顺式调控元件(CRES),短(300-600 bp)的基因组DNA,可以躺在上游,下游延伸,或在他们所控制的基因的内含子。 CRES( 即 ,增强/促销员)通常由多个群集的结合位点的转录激活和阻遏 1-3 。他们作为转录输入的逻辑集成在spatiotemporally精确,定量准确的启动子活性的形式单一输出。大多数哺乳动物顺式调控的研究,依靠转基因小鼠化验 CRES 4-5增强剂功能的一种手段。这种技术是费时,昂贵,插入现场效果的帐户上,基本上不定量。另一方面,对哺乳动物的综合招聘考试功能的定量分析已开发的组织培养系统 (例如,双荧光素酶检测),但在体内的这些结果的相关性往往是不确定的的。
电穿孔技术提供了一个很好的替代传统的鼠标,因为它允许的顺式调控哺乳动物组织生活活动的时空和定量评估的转基因。此技术已在独联体调节中枢神经系统的分析,特别有用,尤其是在大脑皮层和视网膜 6-8 。虽然在体内和体外小鼠视网膜电,已开发和广泛松田和Cepko 6-7,9描述,我们最近开发出一种简单的方法来量化电穿孔小鼠视网膜10的感光特定CRES活动。由于进入视网膜,电引入的DNA的量可能有所不同,从实验到实验,这是必要的,包括共同电穿孔“内参”在所有的实验。在这方面,该技术是非常相似的双荧光素酶检测,用量化培养的细胞中启动子活性。
化验感光独联体监管活动时,电通常是在新生小鼠(出生后0天,P0),这是高峰棒生产11-12。一旦视网膜细胞类型,成为有丝分裂后,电要少得多有效。鉴于杆出生在新生小鼠和事实棒构成超过70%在成年鼠的视网膜细胞的高利率,多数是在P0电穿孔细胞棒。出于这个原因,棒感光器是最简单的视网膜细胞类型,研究通过电。我们在这里描述的技术主要是有用的量化感光CRES活动。
1。电室的建设
2。 DNA的制备
3。眼的集合
4。视网膜夹层
5。准备为电
6。电穿孔
7。配售视网膜上的文化过滤器
8。收获和flatmounting荧光视网膜植
9。 flatmount成像和荧光定量
10。代表性的成果:
一个良好的电结果在视网膜表面的DNA结构(S)( 图4A)跨越1 / 4到1 / 3的表达。由于在特别棒的光感受器有效地转,这种技术是理想的量化感光特定的启动子活性( 图 4B )。我们以前使用这种方法,量化杆特定的Rho和Gnat1 位点10启动子变异的范围。我们发现,这是可以量化的启动子活性,超过了近300倍的范围。
图5是从一个单一的电穿孔视网膜的样本数据集。在这个特殊的例子,在红色通道中的实验构建pNrl(1.1kb)- DsRed的测量和控制结构pNrl(3.2kb)- GFP的绿色通道。 6-9以这种方式测量的视网膜将包括一个完整的数据集的pNrl(1.1kb)- DsRed的构建,基于“DsRed的标准化绿色荧光蛋白”的价值观和标准差计算。例如,如果我们比较pNrl表达水平(1.1kb)- DsRed的,pNrl(0.8kb)- DsRed的,然后两个结构需要具有相同的GFP控制( 例如 ,pNrl(3.2kb)电穿孔- GFP)和成像在相同的曝光时间。这是可能池中的数据收集在不同的日子,如果一个标准DsRed的/ GFP电是每天进行(例如,pNrl(3.2kb)- DsRed的+ pNrl(3.2kb)- GFP)的。对于每个实验构造,随后将被归归DsRed的水平,以“标准”(pNrl(3.2kb)- DsRed的)DsRed的标准化水平。
我们在这里描述的是该技术主要用于量化活动感光CRES 10,13 。细胞类型特定的顺式调控的活动也可以被量化罕见的视网膜细胞类型,如双极细胞14,但是这通常需要在垂直的截面选择,而不是在flatmount筹备工作,是可以量化的地区利益。同样是真正的驱动器在多种细胞类型,如感光细胞和双极细胞表达的CRES。实验过程相似。
图1。视网膜植体电穿孔程序的概述。首先,整个眼睛是孤立的,从产后一天0鼠标幼仔和视网膜剥离(P1)。二,视网膜被放置在与DNA电穿孔(P2),充满商会。三,视网膜放置在过滤器和八天(P3),培养。第四,是固定的视网膜植,装在幻灯片上,和成像。 ImageJ软件(P4)的荧光强度测量。第五,ImageJ数据处理,电子表格程序来量化各发起人(P5)的活动的区别。
图2电盘建设。一)从哈佛器械,BTX模型453(产品编号45-0105)未修改的microslide室。 B)DREMEL工具是用来切断塑料管架处理。处理是切成长方形垫片的尺寸如下:长度0.8厘米,高度0.6厘米,宽度0.3厘米。三)塑胶垫片,装成在相同的时间间隔microslide室。水族馆密封剂注入垫片(未显示)之间的差距。 D)金属栏是放置在间隔。五)酒吧和垫片是长尾夹夹紧密封胶烘干举行一切都在一夜之间发生到幻灯片。 F)的垫片被删除,井进行测试,以确保它们是水密。 G)的成品幻灯片适合与毗邻的菜端的窗口的金属条的塑料盘。
图3图与视网膜电盘。该商会都充满了DNA的解决方案(一次最多五个不同的解决方案)。视网膜被放置在商会和导向,使镜片是靠在连接到正极的金属条;,将三个或四个视网膜适合在五个商会。电流会导致带负电荷的DNA分子转移到视网膜细胞。
图4。)ImageJ测量flatmount视网膜荧光水平。在DsRed的(实验)和绿色荧光蛋白(对照组)渠道ImageJ软件打开flatmount图像灰度;注意,这些图像已有色仅用于说明目的。 5个测量界(1到5)放置在均匀电穿孔的地区,避免边缘和镜头(虚线)。三个测量界(6至8)以外的视网膜,以确定背景荧光水平放置。二)高功率电穿孔在视网膜外植体的横截面图像。外植体在出生后8 cryoprotected在30%sucrose/1X PBS在4℃过夜,° C,在OCT包埋固定,并在12μm冷冻切片。外核层(ONL)感光细胞的荧光结构pNrl(1.1kb)- DsRed和pNrl(3.2kb)- GFP的表达。 INL,内核层;保利协鑫,神经节细胞层。
图5。使用Excel的荧光数据的处理。在第1步,平均每个测量圆的像素值复制到电子表格(单元格B3,维生素B12,F3 - F5 H3 - H5)。测量#1-5 DsRed的视网膜值和#6-8 DsRed的背景值,测量GFP视网膜值#9-13#14-16 GFP背景值。注意测量#1和#9,对应于相同的测量圈,因为这样做测量#2和#10,等等。在第2步,DsRed和GFP通道的平均背景值计算(细胞F6,H6)。在第3步,从每视网膜测量中减去平均背景(单元格C3 - C12)。在第4步,每一个背景减去DsRed的测量是归其相应的GFP测量(单元格D3 - D7)。
外植体电穿孔是一种简单的方法量化顺式调控活动在发展中国家的小鼠视网膜。通过鼠标转基因顺式调控分析相比,电便宜得多,需要唯一的新生小鼠的幼崽,DNA,解剖仪器,电/组织培养设备。这也是耗时更短的时间内:一个实验需要的准备时间只有几个小时,一个约八天的文化时期,和几个小时,成像和数据分析实验结束。植电也优于细胞培养为基础的顺式调控的分析,因为实际利用视网膜组织。视网膜的发展相当正常植文化,形成了三个不同的细胞层(外核层,内核层和神经节细胞层),虽然光感受器失败阐述外节。
另一个优点是,植体的电高度重复性。同样构造成不同的视网膜电穿孔,甚至在不同的日子,通常在相同的相对表达水平的结果。此外,因为电穿孔质粒被认为是保持在核episomally并没有纳入到染色体,他们不似乎是受同一个集成的现场效果,困扰在转基因小鼠进行的顺式调控分析。
植电确实有一些局限性。首先,仍然只在细胞周期中的细胞可以有效地转电 15 。在P0,棒和其他以后出生的视网膜细胞类型(双极细胞,无长突细胞,男LLER神经胶质细胞)的主要细胞,这种方法的目标人群。 P0电锥光感受器电穿孔已报告16,但效率低。第二个限制是,外植体文化,超过两个星期,结果在视网膜逐步畸形,因此不推荐。如果发起人量化晚的时间点, 然而,在体内电穿孔9可能被执行,视网膜剥离所需的时间点,平面安装的解剖视网膜,和定量分析,如第9条所述。第三个限制是,只有适度的高通量检测。与细胞培养为基础的分析,可以测试数以百计的结构在一次实验中,在本议定书中所描述的技术要求最低的每一个构造整个小鼠视网膜。因此,只有一对夫妇十几结构可以合理地在一天内被电。
使用本办法的启动子活性的定量方面的额外需要注意的是,有一个潜在的“出血”到GFP通道DsRed的荧光,尤其是当化验非常强的促销员。这样做的原因是发射光谱部分重叠DsRed的是绿色荧光蛋白。为了规避这个问题,优化排放过滤器应使用,最大限度地减少DsRed和GFP的光谱重叠。当这种优化的过滤器设置不到位,另一个潜在的解决方案是使用代替GFP的一个蓝移荧光蛋白(例如,BFP或CFP) 。
作者想感谢她的帮助下,劳伦斯的描述电室的建设卡伦。
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