兔 vx2 模型在肝癌中的开发与应用

摘要

本文的目的是为 vx2 肝癌兔模型的开发和应用提供一个入门。

摘要

兔 vx2 肿瘤是介入放射学领域肝细胞癌 (hcc) 转化研究的常用动物模型。该模型采用了一种再生鳞状细胞癌, 该细胞癌在供体家兔的骨骼肌中容易和可靠地传播, 以便最终收获并同种异体移植植入天真受者的肝脏。这种肿瘤移植在受者兔的肝脏中迅速生长成血管造影可识别的肿瘤, 其特征是由一个可行的血管高血管囊包围的坏死核。兔子解剖的物理大小足以促进血管器械, 允许各种介入技术的应用和测试。尽管有这些好处, 但缺乏技术资源, 无法作为研究人员使用该模型的具体参考。在此, 我们提出了一个全面的视觉概述的技术方面的发展, 生长, 繁殖, 和血管造影利用的兔子 vx2 肿瘤模型, 供新手和有经验的研究人员使用。

引言

兔 vx2 肿瘤模型自 1935年 1^,2发展以来, 在实验肿瘤学中发挥了重要作用。该肿瘤是一种病毒引起的再生鳞状细胞癌, 其特征是血管增生、生长快、在骨骼肌中容易繁殖 3^,4。而兔 vx2 肿瘤模型已被用来研究多种癌症^5,6,7,8;本文的重点是肝癌⁹。

所述方法的目的是提出一个模型的原发性肝癌, 或肝细胞癌 (hcc), 可用于介入放射科医生的翻译研究。它可用于药代动力学研究、治疗调查和消融方法检测^{10,11,12,13,14},^15.

与老鼠、老鼠、土木等老鼠模型或灵长类动物 1 6号等较大模型等其他模型相比, 本文详细介绍的方法具有多重优势.主要好处之一是肿瘤生长迅速可靠, 这使得研究人员能够在第一次后肢繁殖后一个月内建立活跃的肿瘤线.此外, 这种肿瘤有直接的超声表现可见性和高血管的外围, 这允许跨动脉局部治疗和消融治疗。最后, 也是最重要的, 兔子血管的大小允许可行和技术上容易利用血管器械 18.

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研究方案

以下协议遵循伊利诺伊大学芝加哥分校规定的所有要求和准则。它在执行前经过了当地动物护理和使用机构委员会的审查和批准。

1. vx2 hind 肢体肿瘤的发展

1. 从国家癌症研究所癌症治疗诊断和治疗肿瘤细胞系存储库中获得 vx2 肿瘤细胞系。
   注意: 此时, 订单目录可在以下链接中找到: https://dtp.cancer.gov/repositories/。
2. 准备注射用细胞悬浮液, 将冷冻的 vx2 样品和甲基纤维素培养基放入温水中, 直到它们解冻。
   1. 将解冻的细胞悬浮液和同等数量的解冻甲基纤维素培养基吸血到5毫升注射器中。
      注意: 它可能有助于使用21或 22 g 针吸气细胞悬浮液和一个更大的规格针吸气甲基纤维素培养基。将注射器放在冰上。
3. 为细胞悬浮液的接种准备后肢肿瘤供体兔, 从肌内注射的 1 mg kg 环丙嗪和 0.02 mg/kg 丁丙诺非开始。剃光部位 (后肢) 用剪子和清洁剃光的是以酒精或碘为基础的药物。
   注: 美洛昔康可在皮下0.2 mg* 千克的剂量下给予镇痛。兔子的皮毛很难刮胡子。建议研究人员进行多次传球, 首先重点清理大部分皮草, 然后将剪子按在皮肤上, 与谷物对着干。
4. 将 16 g 针连接到含有细胞悬浮液的5-ml 注射器上, 并将1毫升的悬浮液注射到供体兔后肢肌肉的腹部, 深度约1厘米。一定要保护坐骨神经沿着股骨在一个明显的沟槽内运行。
   注: 新鲜 vx2 成功接种88% 的对象, 而冷冻和解冻 vx2 只有33% 的时间¹⁹成功。
   注意: vx2 肿瘤会迅速生长。随着肿瘤的进展, 可能会注意到副作用是: 呼吸速率增加, 嗜睡, 警觉性下降, 和/或行为变化 (例如, 异常的攻击性)。因此, 建议密切监测动物, 并计划在接种后两周内收获肿瘤。

2. vx2 hind 肢体肿瘤生长和收获

注: 假设接种成功, 在2周内, 注射部位应出现明显 (3\u20124 厘米) 肿瘤结节。通常情况下, 这个结节将在1周左右明显;然而, 最好是让肿瘤生长, 以便有足够的组织收集。通常情况下, 这个结节将是坚定的, 缩进, 并高于肌肉的水平。如果

1. 在接种后2周将接种区域等同起来。如果在2周内没有检测到肿瘤生长, 请再次执行步骤1。请参见图 1。
   注意: 肿瘤的存在也可以通过超声波进行评估。虽然目前还没有研究来评估从冷冻股票传播时肿瘤生长指标与新鲜库存的差异, 但我们的经验是, 冷冻股票肿瘤生长速度稍慢, 在新鲜库存之后就会被检测到反部分。无论如何, 这两种方法都应该在2周内产生可收获的肿瘤。
2. 准备后肢肿瘤供体进行肿瘤收获。用 45 mg kg 的氯胺酮和 5 mg/kg 的木胺对兔子进行麻醉。静脉注射 (iv) 剂量的戊巴比妥钠的安乐死超过 390 mggskg。
3. 一旦兔子被安乐死, 开始收获肿瘤, 通过删除皮肤和皮下组织覆盖肿瘤结节使用手术刀与刀与研究人员认为合适的刀片。请参见图 2。
4. 一旦在后肢肌肉中发现肿瘤结节, 使用宽曲线边缘整体切除肿瘤。为此, 切断肌肉近端和远端的肌腱附着点, 然后沿着下骨追踪手术刀刀片。将被转移的标本暴露在肿瘤胶囊和坏死的情况下。请参见图 3。
   注: vx2 肿瘤有高度坏死的核心。在收获肿瘤时, 一定要使用适当的眼睛保护和其他个人防护设备, 因为对肿瘤胶囊的任何损害都会导致坏死碎片的高压喷射。
5. 用钝器 (如钳子、止血器) 轻轻刮伤坏死的核心, 以清洁肿瘤。这应该可以更好地可视化肿瘤胶囊和胶囊与周围肌肉之间的过渡点。请参见图 4。
6. 从这个样本中, 收获几块大约 1\ u20122 毫米³肿瘤, 并立即将它们储存在一个装有室温无菌盐水的杯子中。
   注: 这些肿瘤样本将用于随后的肝内植入。
7. 将剩余的肿瘤放入无菌培养皿中, 用杜尔贝克的改良鹰培养基 (dmem) 沐浴。如果这个标本在冰上保持低温, 可以在 2\ u20123 h 后保存。

3. 通过腹腔切开术进行肝脏肿瘤植入术

1. 准备接受的兔进行剖腹手术。使用 45 mg/kg 的氯胺酮和 5 mgkg xylazine 对受赠者的兔子进行诱导, 然后根据需要用 1%-3% 的异氟醚插管和维护。当兔子被麻醉时, 使用剪发器刮掉手术部位。用 betadine 磨砂、70% 乙醇溶液和 betadine 溶液清洗切口区域, 并以无菌手术方式覆盖腹部。
2. 使用 #15 刀片, 通过从星形过程开始, 通过兔子的皮肤做一个小的向下垂直中线切口, 开始开腹手术。这应该很容易触诊, 而且往往大约是美国一分钱的大小。请参见图 5。
3. 反射皮肤, 识别白纹。这应该是一个反射白带的组织在中线下低行。使用钝性解剖穿过白纹, 露出腹膜。请参见图 6。
   注意: 腹膜很容易识别, 因为它将直接覆盖肠道, 可以看到呼吸运动。
   注意: 由于表面张力, 腹膜往往附着在肠底。使用钝性创伤来解剖白纹有助于降低潜在肠道穿孔的风险。
4. 一旦腹膜暴露出来, 仔细解剖, 进入腹腔。现在可以确定肝脏了。为了更好地导航腹部空间, 将中线切口 1\ 20122 厘米的下路延伸到皮肤、肌肉和腹膜。
   注意: 通过小心地将弯曲的止血器插入腹膜空间, 弯曲的尖端朝腹膜表面朝外, 可以很容易、安全地完成中线切口。然后稍微打开止血器, 用刀片来可爱的组织之间的两个手臂的止血。
5. 识别肝脏的左叶, 以便选择肿瘤植入的部位。左叶是内侧的内侧叶, 位于中线。
6. 在试图将肝脏从腹膜空间中抽出来之前, 先在切口的下侧放置一块干纱布。
   注意: 纱布将提供一个粘附表面, 使肝脏上的奠定, 以防止它收回回腹部。
7. 使用手指上的耳垂或一块湿纱布 , 通过切口小心地将肝脏的左叶从腹部 , 并将其放置在较早放置的干纱布上。请参见图 7。
   注意: 肝胶囊敏感, 容易破裂。它是至关重要的是要温柔, 当处理这个器官, 以防止胶囊出血, 肝擦伤, 和/或最终的腹腔。
   注意: 通常情况下, 肝脏在进入腹膜空间时会在视觉上声明自己;然而, 如果兔子的胃扩张, 肝脏可以被推得离视线之外。如果是这种情况, 使用钝器探头轻轻抬起腹壁。在这种情况下, 肝脏倾向于坚持到腹侧的隔膜方面, 由于表面张力如此仔细地分离肝脏使用钝探针, 它应该分离。然后用阿图玛性钳把肝脏。
8. 在这一点上, 准备植入肿瘤组织, 并在肝脏上放置一块湿纱布, 以保护它。
9. 选择在第2.6 步中产生的 1\ u20122 毫米³块肿瘤组织, 用于植入肝脏。请参见图 8。
10. 使用 #11 刀片, 在45°角刺穿肝脏组织, 使0.5 厘米深的口袋, 注意不要穿透肝脏囊的背侧。刺穿后, 把刀片留在原地。请参见图 9。
11. 轻轻地将刀片朝腹侧抬起, 在肝脏床上创建一个小口袋。用钳子取肿瘤片, 将肿瘤片放在这个口袋里, 然后取出刀片。
    注意: 刀片可以在插入肿瘤块之前取出, 但是, 肝脏会流血, 这可能会掩盖穿刺部位, 使其难以识别。
    注意: 确保尽量减少肿瘤与任何其他结构的接触, 以防止无意的肿瘤播种。这也可以通过留出任何工具来帮助植入之后, 也可以避免。
12. 此时, 在肿瘤口袋上放置一块止血剂, 如凝胶泡沫, 以促进止血, 防止肿瘤片被弹射。
13. 一旦止血得到确认, 肝脏就会返回腹部。
14. 用简单的连续针在锥形针上用3-0 多氧酮缝合关闭腹壁, 用4-0 多眼肌锡910缝合线关闭皮肤, 用连续的下角质层缝合切割针。
    注意: 关闭腹壁时, 注意不要损坏缝合投掷中的大肠或其他肠结构。
    注意: 虽然这个肿瘤将需要至少2周的明确的影像学识别, 它达到 1.5 \ 20122 厘米的大小直径在3周的生长。注意不要让肝脏肿瘤在 3.5 \ u20120124周后生长, 因为肿瘤会形成外生肿块, 并在当地积极扩散。

4. vx2 肿瘤悬浮液的制备

1. 将40μm 过滤器放入50毫升锥形丙烯管的嘴中。使用2.7 步的肿瘤, 用 #15 刀片刮伤肿瘤表面, 收集可行的肿瘤, 并将这些刮伤放入过滤器中。
2. 用 dmem 清洗活的肿瘤刮擦, 然后在 1600 rpm 离心丙烯管8分钟。
3. 离心机完成后, 取出上清液并将其丢弃。然后以1:1 的体积比将甲基纤维素添加到剩余的细胞块中。
4. 按照步骤 1.3 \ u20121.4 将此悬浮液注入后肢供体兔体内。将剩余的悬浮液放入1毫升的低温管中, 并将其冷冻在液氮中, 供以后使用。

5. vx2 肝肿瘤的血管造影利用

1. 按照步骤3.1 中的说明准备兔子。
2. 在腹股沟的股骨槽上触诊。当凹槽已被识别, 做一个 2\ u20123 沿凹槽的线性切口。请参见图 10。
3. 采用钝性解剖, 定位和分离包含股静脉、动脉和神经的股骨束。请参见图 11。
4. 再次, 使用钝性解剖将股动脉与束中的其他结构分离, 并将手术刀柄上的动脉隔离开来。请参见图 12。
5. 使用 3-法语介绍套件, 利用 seldinger 技术获得访问与针。插入导丝并取出针头, 将 3-法国护套推进到容器中。请参见图 13。
   注意: 避免在推进 3-法国护套时过度使用力, 因为这会导致股动脉横断。
6. 在透视引导下, 使用导管、导丝和 iohexol 造影剂, 选择腹腔主干 (通常位于 t12 级), 然后通过普通肝和适当的肝脏将导管推进到左肝动脉。
7. 此时, 通过导管管理所选择的代理。一旦给药, 取出导管。
8. 采用3-0 丝缝合线, 将股动脉近端和远端连接到鞘的插入点。一定要拧紧靠近鞘的结, 因为它是提取, 以防止出血。
9. 用切割针的4-0 聚近肌蛋白910缝合用硬皮下的针脚缝合腹股沟切口。
10. 保持标准的术后护理, 并监测动物的恢复情况。根据需要使用标准技术进行安乐死和尸检。

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结果

当看图 1, 很明显, 兔子的四头肌扩大。此外, 多个小的离散结节, 通常与肿瘤生长通过筋膜相关, 是可见的。触诊时, 注射肢体应出现比非注射肢体。如果研究人员需要更明确的肿瘤存在保证, 超声成像可以用来识别嵌入肌肉中的肿瘤。如果没有检测到肿瘤, 后肢应重新注射肿瘤细胞悬浮液。

为了确认成功?...

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讨论

vx2 肿瘤方法的第一个关键步骤是成功地在供体兔的后肢传播肿瘤。有关此步骤的详细信息, 请参阅 "代表性结果" 部分的第一段。

下一个关键步骤是确保正确识别可行的肿瘤胶囊。这不仅对肿瘤悬浮液的制备是必要的, 对肝植入的肿瘤碎片的选择和产生也很重要。图 4对活肿瘤和周围肌肉组织之间的界限进行了注释。如果在悬浮液制备过程中刮伤不正确的...

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材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
MethoCult (Methycellulose)	Stemcell Technologies	M3134
VX2 Cell Line	NCI	VX-2
5 mL Syringe	BD	309646
16 G Needle	BD	305197
22 G Needle	BD	305155
Hair Clippers	Wahl	41870-0438
Foam Insulated Box	Mr. Box Online	10 x 10 x 4
Acepromazine	Henry Schein	003845
Buprenorphine	Par	42023-179-05
Meloxicam	Henry Schein	049755
Alcohol Pads	Covidien	5033
Ketamine	Henry Schein	056344
Xylazine	Akorn	59399-110-20
Pentobarbital (Fatal-Plus)	Vortech	9373
Sterile Petri Dish	Thermo Fisher	172931
DMEM	Gibco	11965092
Saline	Baxter	2F7124
15-Blade	Steris	02-050-015
Scalpel Handle x 2	Steris	22-2381
Curved Hemostat	WPI	501288
Atraumatic Forceps	Sklar	52-5077
Gauze	Medline	NON21430LF
11-Blade	Steris	02-050-011
Surgicel	Ethicon	1951
3-0 PDS / Taper	Ethicon	Z305H
4 - 0 Vicryl / Cutting	Ethicon	J392H
40 μm strainer	BD	352340
50 mL conical tube	Thermo Fisher	339652
plastic pipette	Thomas Scientific	HS206371B
Centrifuge	Sorvall	75004240
1.40 mL Tubes (Internal Thread)	Micronic	MP32131-Z20
3-F VSI Micro-HV Introducer Kit	Vascular Solutions	Custom Order (P15180391)
.018 45° angle glidewire	Terumo	RG*GA1818SA
Direxion bern-shape microcatheter	Boston Scientific	M001195230
Omnipaque	GE	Y510