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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 代表性结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

在这里,我们提出了一种协议,为大鼠模型提供快速,简单和可靠的血液采集替代方案。我们根据上下文描述了三种不同的血液采样方法:麻醉下或有意识的动物的尾静脉穿刺,以及麻醉下的背静脉穿刺。

摘要

大多数实验动物设计都需要血液样本来评估各种血液学参数。本文介绍了两种大鼠采血程序:侧尾静脉穿刺和背静脉穿刺,与其他先前描述的技术相比具有显着优势。该研究表明,这两种程序允许快速采样(10 分钟内)并为大多数测定(202 μL ± 67.7 μL)产生足够的血容量。背静脉穿刺必须在麻醉下进行,而侧尾静脉穿刺可以在有意识、约束的动物身上进行。

因此,交替使用这两种技术可以在任何情况下抽血。虽然始终建议在手术过程中协助操作员以确保动物福利,但这些技术只需要一名操作员,这与大多数需要两名血液采样方法不同。此外,虽然这些先前描述的方法(例如颈静脉棒,锁骨下静脉抽血)需要广泛的事先训练以避免动物的伤害或死亡,但尾静脉和背静脉穿刺很少是致命的。由于所有这些原因,并根据具体情况(例如,对于包括雄性大鼠的研究,在围手术期或术后立即,对于尾静脉细的动物),这两种技术可以交替使用以实现重复抽血。

引言

血液采样对于大多数动物研究都是必要的,无论是 体内 还是 体外。在大鼠中,由于血液采样的频率和数量可能很大,因此有不同的收集选择是有帮助的。在以前的研究中已经描述了各种方法。

最常用的技术是尾静脉穿刺和大隐静脉抽血。尾静脉取样适用于所有大鼠品系。通过适当的训练,该程序易于执行,并且对动物造成的痛苦最小1.同样,大隐静脉抽血,只要操作得当,也是一种快速简单的采集方法。这两种方法都不需要麻醉,并且都允许重复抽取少量血液。然而,大隐静脉穿刺通常产生较低的血容量1 ,并且需要两个人在场,留下一个后肢暴露进行穿刺2

如果需要从单个动物收集大量血液,可以使用心脏穿刺或腔静脉穿刺(可以从心脏穿刺的 150 g 大鼠中抽取多达 10 mL 的血液2)。这些技术需要麻醉,并且是终末程序。在这两种技术中的任何一种之后,动物都必须被安乐死2.颈静脉棒是一种替代方案,如果在尚未达到终点的研究中需要收集大量血液,可以使用。然而,这种技术还需要大量的技术技能来避免对动物造成伤害;因此,应限制其使用3

研究方案

该程序在3个月大的雄性刘易斯大鼠上进行,每只重300-400克。共纳入24只动物,具有3种穿刺条件:12只大鼠在无麻醉的情况下进行尾静脉穿刺(组TV无麻醉),另外12只大鼠被麻醉进行尾静脉穿刺(组TV麻醉)和静脉穿刺(组PV麻醉)。所有程序均已获得批准,并遵守机构动物护理和使用委员会(IACUC)的指导方针。所有动物在研究结束时(随访1个月后)通过二氧化碳过量被安乐死。有关与本协议中使用的所有材料和仪器有关的详细信息,请参阅 材料表

1. 一般准则

  1. 根据 IACUC 指南,确保每 2 周抽取的最大血容量不超过总血容量的 10%9。例如,一只 300 g 的大鼠的总血容量应约为 19.2 mL。对于仅在第一周(第 0 天、第 1 天、第 3 天、第 7 天)需要抽血四次的方案,请将每个样品的采集限制为最多 250 μL。
  2. 对于在麻醉下进行的手术,通过精密蒸发器 用异氟醚以麻醉动物。在剂量为3%-5%异氟醚的腔室中诱导麻醉5分钟,并在手术过程中通过鼻锥使用1%-3%异氟烷的剂量维持。根据呼吸频率的连续监测调整异氟烷水平。在开始手术之前,通过捏住脚趾来验证镇静是否足够。
  3. 在手术过程中或直到动物恢复足够的意识以维持胸骨卧位之前,不要让动物无人看管。
  4. 采血后,监测动物....

代表性结果

成功定义为抽血在 10 分钟内(从穿刺时间到采血结束)产生至少 100 μL 的血液,失败定义为抽血产生少于 100 μL 的血液或需要超过 10 分钟才能取回所需的血容量。每个样品最多允许 250 μL 血液。统计分析采用单因素方差分析检验进行多重比较和卡方检验。数据以平均值±标准差表示, p < 0.05 作为确定统计显著性的临界值。

比较成功率显示,清醒大鼠尾静脉穿刺(92%).......

讨论

尾静脉穿刺是从有意识的大鼠身上获取血液的有效方法。然而,当动物处于麻醉状态时,异氟醚的作用会导致血管痉挛,并使尾静脉穿刺不合适11。如本研究所示,在这种情况下的另一种选择是从静脉收集血液,这更成功,并且在更短的时间内产生显着更大的血液量。请务必记住,如果此方法在第一次尝试时失败,则后续尝试可能会失败。相比之下,尾静脉穿刺允许在第一次尝?.......

披露声明

作者均无任何利益冲突需要声明。

致谢

这项工作由Shriners Children's Boston(B. E. U., K.U., C.L.C.)资助。L.C.由“La Bourse des Gueules Cassées”,“La Bourse Année Recherche”和“La Bourse de l'Amicale des Anciens Internes des Hôpitaux de Paris”资助。Y.B.由“La Bourse des Gueules Cassées”资助。Y.B.和I.F.v.R.由Shriners儿童医院资助(奖学金ID分别为#84308-BOS-22 #84302-BOS-21)。本材料部分基于美国国家科学基金会根据资助号支持的工作。欧洲经济共同体1941543。非常感谢美国国立卫生研究院(R01EB028782、R56AI171958 和 R01DK114506)的部分支持。图 1 是使用 BioRender.com 创建的。

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材料

NameCompanyCatalog NumberComments
0.5 mL | 28 G ½  Insulin SyringesBD329424for tail vein puncture
0.5 mL | 30 G x 5/16 Insulin SyringesBD320468for penile vein puncture
250 L  Microtainer blood collection tubes with K2EDTABD365974
Gauze SpongesCurity6939
Isoflurane Auto-Flow Anesthesia MachineE-Z SystemsEZ-190Ffor penile vein puncture
Isoflurane, USPPatterson Veterinary1403-704-06for penile vein puncture
Nosecone for AnesthesiaWorld Precision InstrumentsEZ-112for penile vein puncture
Rodent Restraint ConeHarvard ApparatusST2 52-95-86for tail vein puncture
Small Animal Heated Operating Table (Adjustable)Peco Services Ltd69023
Webcol Alcohol prep padsSimply Medical5110

参考文献

  1. Lee, G., Goosens, K. A. Sampling blood from the lateral tail vein of the rat. Journal of Visualized Experiments. (99), e52766 (2015).
  2. Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. Drawing blood from rats through the saphenous vein and by c....

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