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本方案为利用功能化磁珠有效分离尿细胞外囊泡提供了详细的描述。此外,它还包括后续分析,包括蛋白质印迹、蛋白质组学和磷酸化蛋白质组学。
来自生物流体的细胞外囊泡 (EV) 最近在液体活检领域引起了极大的关注。它们由几乎所有类型的细胞释放,提供宿主细胞的实时快照,并包含丰富的分子信息,包括蛋白质,特别是那些具有翻译后修饰 (PTM) 的蛋白质,如磷酸化,作为细胞功能和疾病发生和进展的主要参与者。然而,由于当前 EV 分离方法的产量和杂质低,从生物流体中分离 EV 仍然具有挑战性,这使得 EV 货物(如 EV 磷蛋白)的下游分析变得困难。在这里,我们描述了一种基于功能化磁珠的快速有效的 EV 分离方法,用于从生物流体(如人尿液)中分离 EV 和 EV 分离后的下游蛋白质组学和磷酸化蛋白质组学分析。该方案实现了尿 EV 的高回收率以及 EV 蛋白质组和磷酸化蛋白质组的敏感谱。此外,本文还讨论了该协议的多功能性和相关技术考虑因素。
细胞外囊泡 (EV) 是由所有类型的细胞分泌的膜包膜纳米颗粒,存在于血液、尿液、唾液等生物流体中1,2,3,4。EV 携带多种生物活性分子,这些分子反映了宿主细胞的生理和病理状态,因此是疾病进展的关键因素 4,5,6。此外,广泛的研究已经确定,基于 EV 的疾病标志物可以在症状出现或肿瘤生理检测之前被识别出来 5,6,7。
磷酸化是细胞信号传导和调节的关键机制。因此,磷蛋白为生物标志物的发现提供了有价值的来源,因为异常的磷酸化事件与失调的细胞信号通路和转移性疾病的发展(如癌症)有关8,9,10。
所有尿液样本均在知情同意后从健康个体中收集。这些实验符合涉及人体样本的所有伦理标准,并符合普渡大学人类研究保护计划的指导方针。
1. 样品采集
2. 使用EVtrap方法进行EV隔离
该协议展示了从EV分离到下游蛋白质组学和磷酸化蛋白质组学分析的综合工作流程(图1)。对一式三份的尿液样本进行EV分离。分离的 EV 通过蛋白质印迹进行表征,随后进行基于质谱的蛋白质组学样品制备,包括蛋白质提取、酶消化和肽纯化。对于磷酸化蛋白质组学分析,基于金属离子功能化的可溶性纳米聚合物进一步富集了磷酸肽。多肽和磷酸肽样品均在数据无关模式下?.......
有效的EV分离是检测EV中低丰度蛋白质和磷蛋白的重要先决条件。尽管开发了许多方法来满足这一需求,但大多数方法仍然存在局限性,例如恢复率差或可重复性低,这阻碍了它们在大规模研究和常规临床环境中的使用。DUC 通常被认为是最常见的 EV 隔离方法,通常应用额外的洗涤步骤来帮助提高目标 EV 的纯度27,28。此过程会导致更繁琐和耗时的 DUC 过程.......
作者宣布了相互竞争的经济利益。Anton Iliuk 和 W. Andy Tao 是 Tymora Analytical Operations 的联合创始人,该公司开发了 EVtrap 微珠并商业化了 PolyMAC 磷酸肽富集试剂盒。
这项工作部分由 NIH 赠款 3RF1AG064250 和 R44CA239845资助。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL microcentrifuge tube | Life Science Products | M-1700C-LB | |
1.5 mL tube magnetic separator rack | Sergi Lab Supplies | 1005 | |
15 mL conical centrifuge tube | Corning | 352097 | |
15 mL tube magnetic separator rack | Sergi Lab Supplies | 1002 | |
Anti-rabbit IgG, HRP-linked Antibody | Cell Signaling Technology | 7074P2 | |
Benchtop incubated shaker | Bioer | DIS-87999-3367802 | Bioer Thermocell Mixing Block MB-101 |
CD9 (D3H4P) Rabbit mAb | Cell Signaling Technology | 13403S | |
Chloroacetamide | Sigma -Aldrich | C0267-100G | Used for alkylation of reduced sulfide groups. Freshly prepare 400 mM in water as stock solution. |
Ethyl acetate | Fisher Scientific | E145-4 | Precipitates detergents |
Evosep One | Evosep | Liquid chromatography system | |
Evotips | Evosep | EV2013 | Sample loading for Evosep One system |
EVtrap | Tymora Analytical | Functionalized magnetic beads, loading buffer, and washing buffer | |
Immobilon-FL PVDF Membrane | Sigma -Aldrich | IPFL00010 | Blotting membrane |
NuPAGE 4-12% Bis-Tris Gel | Invitrogen | NP0322BOX | Invitrogen NuPAGE 4 to 12%, Bis-Tris, 1.0 mm, Mini Protein Gel, 12-well |
NuPAGE LDS Sample Buffer (4X) | Invitrogen | NP0007 | |
PBS | ThermoFisher | 10010023 | |
Pepsep C18 15 x 75 x 1.9 | Bruker | 1893473 | Separation column |
Phosphatase Inhibitor Cocktail 2 | Sigma -Aldrich | P5726-5ML | 100X, Phosphotase inhibitor. |
Phosphatase Inhibitor Cocktail 3 | Sigma -Aldrich | P0044-1ML | 100X, Phosphotase inhibitor. |
Pierce BCA Protein Assay Kit | ThermoFisher | 23225 | |
Pierce ECL Western Blotting Substrate | ThermoFisher | 32106 | HRP substrate |
PolyMAC phosphopeptide enrichment kit | Tymora Analytical | Polymer-based metal ion affinity capture (PolyMAC) for phosphopeptide enrichment | |
Sodium deoxycholate | Sigma -Aldrich | D6750-10G | Detergent for lysis buffer. Prepare 120 mM in water as stock solution. |
Sodium lauroyl sarcosinate | Sigma -Aldrich | L9150-50G | Detergent for lysis buffer. Prepare 120 mM in water as stock solution. |
timsTOF HT | Bruker | Trapped ion-mobility time-of-flight mass spectrometry | |
TopTip C-18 (10-200 μL) tips | Glygen | TT2C18.96 | Desalting method |
Triethylamine | Sigma -Aldrich | 471283-100ML | For EV elution. |
Triethylammonium bicabonate buffer | Sigma -Aldrich | T7408-100ML | 1 M |
Trifluoroacetic acid | Sigma -Aldrich | 302031-100ML | |
Tris-(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride | Sigma -Aldrich | C4706 | Used for reducion of disulfide bonds. Prepare 200 mM in water as stock solution. Aliquot the stock solution into small volume and store it in at-20°C (avoid multiple freeze-thaw cycles). |
Trypsin/Lys-C MIX | ThermoFisher | PIA41007 |
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