登录

需要订阅 JoVE 才能查看此. 登录或开始免费试用。

本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

在这里,我们提出了一种通过在插入片段的 3' 末端引入合适的限制性位点来获得 pVAX1-PRRSV 表达载体的方案。我们可以通过同源重组技术将载体线性化,并将 DNA 片段一一连接到载体上。

摘要

基因表达载体的构建是实验生物学实验室工作的重要组成部分。随着 Gibson Assembly 等技术的进步,载体构建变得相对简单和高效。然而,当猪繁殖与呼吸综合征病毒 (PRRSV) 的全长基因组不能轻易地通过 cDNA 的单个聚合酶链反应 (PCR) 扩增,或者难以在 体外通过多个插入片段的同源重组获得全长基因表达载体时,目前的 Gibson Assembly 技术无法实现这一目标。

因此,我们的目标是将 PRRSV 基因组分成几个片段,并将适当的限制性位点引入反向引物以获得 PCR 扩增片段。通过同源重组技术将以前的 DNA 片段连接到载体中后,新载体获得了限制性内切酶切割位点。因此,我们可以使用新添加的酶切割位点对载体进行线性化,并在上游 DNA 片段的下游引入下一个 DNA 片段。

上游 DNA 片段 3' 端引入的限制性内切酶切割位点将被消除,新的切割位点将被引入下游 DNA 片段的 3' 端。通过这种方式,我们可以将 DNA 片段一一连接到载体上。该方法适用于成功构建 PRRSV 表达载体,是将大量片段组装到表达载体中的有效方法。

引言

分子克隆是构建基于 DNA 的原核细胞和真核细胞表达实验工具的重要技术,是实验生物学中非常重要的组成部分。分子克隆涉及四个过程:获取插入片段 DNA、将插入片段连接到适当的载体中、将重组载体转化成大肠杆菌大肠杆菌)以及鉴定阳性克隆1。到目前为止,已经采用了多种方法通过使用限制性内切酶 2,3 和 PCR 介导的重组 4,5,6 来连接 DNA 分子。同源重组,称为无缝克隆技术,是一组克隆方法,允许将一个或多个 DNA 片段不依赖于序列且无疤痕地插入载体中。该技术包括不依赖序列和连接的克隆 (SLIC)、无缝连接克隆提取物 (SLiCE)、In-Fusion 和 Gibson 组装。它采用核酸外切酶降解插入片段的一条链,利用载体生成内聚末端,并通过体内修复或体外重组通过形成磷酸二酯键将插入片段共价连接到载体上。将单个插入片段连接到任何序列的载体而没有任何疤痕的能力非常有吸引力。此外,该技术能够按预定顺序连接 5-10 个片段,而不受序列限制。

作为众多重组 DNA 技术之一,Gibson 组装技术是目前最有效的克隆方法 7,8,是一种强大而优雅的基于核酸外切酶的方法,可无缝组装一个或多个线性化 DNA 片段。Gibson 组装反应是在等温条件下使用三种酶的混合物进行的,即 5' 核酸外切酶、高保真聚合酶和热稳定 DNA 连接酶。由 5'-3' 核酸外切酶产生的单链 3' 突出端有助于在一端共享互补性的片段的退火。高保真聚合酶通过添加 dNTP 有效填充退火单链区域的间隙,热稳定的 DNA 连接酶密封缺口以形成关节 DNA 分子8。因此,该技术方法已被广泛用于基因表达载体的构建。

猪繁殖与呼吸综合征 (PRRS) 是一种病毒性疾病,可导致PRRSV 在任何 9 岁时引起猪的生殖障碍和呼吸衰竭。该综合征表现为发热、厌食、肺炎、嗜睡、抑郁和呼吸窘迫。此外,在一些流行病中观察到临床症状,包括耳朵的红色/蓝色变色。作为动脉病毒家族的一员,PRRSV 通过直接接触和交换液体(包括尿液、初乳和唾液)广泛传播到猪肉生产国。由于 PRRSV 在美国的传播,根据 580 万头母猪和 1.1 亿头猪的育种规模,猪肉行业的总经济损失估计约为每年 6.64 亿美元10,11。动植物卫生检验局报告显示,49.8% 的未接种疫苗的猪在血清12 中存在 PRRSV,受感染猪体内低水平的 PRRSV 通过唾液、鼻腔分泌物、尿液和粪便排泄13。已经实施了多种策略来控制 PRRSV 传播 14,15,16。除了消除程序以创建完全病毒阴性的群体或改善生物安全和管理外,接种疫苗是控制 PRRS 的有效手段。

PRRSV 是一种包膜、单链、正义 RNA 病毒,长度约为 15 kb。PRRSV 基因组由至少 10 个开放阅读框 (ORF)、一个短的 5' 非翻译区 (5' UTR) 和 3' 末端的 poly (A) 尾部组成(图 1A17。负链 RNA 病毒的基因组是非传染性的,而正链 RNA 病毒的基因组是传染性的。生成病毒后代18 的 RNA 和 DNA 转染有两种主要策略。然而,克隆与 RNA 基因组相对应的全长片段对于感染性克隆的构建至关重要。由于 PRRSV 基因组的长而复杂,无法通过 PCR 一次轻松获得全长基因组。此外,尽管人工合成 PRRSV 基因是一种有效的解决方案,但长片段的合成通常很昂贵。因此,为了获得 PRRSV 全长表达载体,我们尝试通过多个插入片段同源重组方法创建它19,20。不幸的是,我们无法获得全长基因表达载体。因此,在本研究中,我们在反向引物中添加了合适的限制性位点,并通过几轮同源重组反应成功获得了 pVAX1-PRRSV 表达载体。此外,该方法还可以实现靶基因的缺失或突变,并有效地将大量 DNA 片段连接到表达载体上。

研究方案

1. PRRSV 基因模板的制备

  1. 在 1 mL RNA 提取试剂中解冻病毒原液(参见 材料表)。
  2. 加入 0.2 mL 氯仿并充分混合。孵育 3 分钟。
  3. 在 4 °C 下以 12,000 × g 离心混合物 15 分钟。
    注:混合物分为三个相,即无色水相、间相和红色苯酚-氯仿相。
  4. 吸出无色水相并将其转移到新管中。
  5. 将水相与 0.5 mL 异丙醇充分混合,并在 4 °C 下孵育 10 分钟。
  6. 在 4 °C 下以 12,000 × g 离心 10 分钟。
    注:试管底部有白色 RNA 沉淀物。
  7. 使用微量移液器丢弃试管的上清液。
  8. 加入 1 mL 75% 乙醇以重悬沉淀并短暂涡旋。
  9. 在 4 °C 下以 7,500 × g 离心 5 分钟。 使用微量移液器丢弃试管的上清液。
  10. 将 RNA 干燥 5 分钟,加入 20-50 μL 不含 RNase 的水以重悬 RNA,并充分混合。
  11. 继续进行逆转录;设置反应以进行逆转录,如 表 1 所示。
    注:为确保逆转录成功,请使用高质量的 RNA 模板。
  12. 使用所得的 cDNA 进行 PCR 或将其储存在 -20 °C。

2. PCR 引物设计

  1. 设计正向引物
    1. 打开软件并选择 New DNA File(新建 DNA 文件)。
    2. 将 PRRSV 基因序列 (GenBank: FJ548852.1) 从 NCBI 粘贴到软件中。单击 OK 生成序列文件。
    3. 分析序列并标记片段连接。设计片段的正向特异性序列引物。在大多数情况下,优选的熔解温度 (Tm) 在 55 °C 和 62 °C 之间,GC 含量为 40-60%。
    4. 单击 Primers 并选择 Add Primer。
    5. 粘贴特异性序列,并将载体的重叠序列添加到特异性序列引物的前 5' 核苷酸中。在每个连接附近,选择 20-40 bp 作为两个相邻片段之间的重叠区域。
    6. 命名包含突出端和特定序列的正向引物(参见 补充图 S1)。
    7. 单击 Add Primer to Template(将引物添加到模板)。
  2. 设计反向引物
    1. 在软件中分析序列并标记片段连接。设计片段的反向特异性序列引物。
    2. 单击 Primers 并选择 Add Primer。
    3. 粘贴特异性序列,并将限制性位点添加到特异性序列引物的前 5' 核苷酸上。
      注:除多个克隆位点外,插入片段和载体中必须不存在添加的限制性位点。
    4. 将 20-40 bp 的载体突出端序列添加到限制性位点的前 5' 核苷酸中。
    5. 命名包含突出端和特定序列的反向引物(参见 补充图 S1)。
    6. 单击 Add Primer to Template(将引物添加到模板)。

3. PCR 扩增片段

  1. 设置六个单独的 PCR 反应(表 2):对于片段 1,使用引物 P1 和 P2(参见 补充图 S2);对于片段 2,使用引物 P3 和 P4(参见 补充图 S2);对于片段 3,使用引物 P5 和 P6(参见 补充图 S2);对于片段 4,使用引物 P7 和 P8(参见 补充图 S2);对于片段 5,使用引物 P9 和 P10;并使用引物 P11 和 P12 扩增片段 6(参见 补充图 S2)。
    注:使用前解冻、混合并短暂离心每种组分。
  2. 使用 表 2 中的三步方案运行 PCR。
  3. 向 5 μL PCR 产物中加入 1 μL 6x DNA 上样缓冲液,混合并短暂离心内容物。
  4. 使用 1% 琼脂糖凝胶电泳分析样品。

4. PCR 片段的纯化

注:使用凝胶提取试剂盒从凝胶中纯化 PCR 产物(参见 材料表)对于载体构建很重要。

  1. 向 45 μL PCR 产物中加入 9 μL 6x DNA 上样缓冲液,混合并短暂离心内容物。
  2. 进行 1% 琼脂糖凝胶/goldview 电泳以分离 DNA 片段。
    注:请勿重复使用 TAE 电泳缓冲液,因为其 pH 值会影响 DNA 片段的回收率。
  3. 条带充分分离后,使用锋利的手术刀小心地切除 DNA 条带。
    注:通过修剪掉多余的琼脂糖来最小化凝胶切片的大小。
  4. 在干净的 1.5 mL 微量离心管中称取凝胶切片,向凝胶切片中加入等体积的结合缓冲液(例如,0.3 mL 至 0.3 g 切片),并在 60 °C 下孵育 7 分钟。
  5. 将微型柱插入 2 mL 收集管中。将步骤 4.4 中的 700 μL DNA/琼脂糖溶液添加到迷你柱中。
  6. 在室温下以 10,000 × g 离心 1 分钟。丢弃滤液并重复使用收集管。
  7. 加入 300 μL 结合缓冲液,并在室温下以 13,000 × g 离心 1 分钟。丢弃滤液并重复使用收集管。
  8. 加入 700 μL 洗涤缓冲液,并在室温下以 13,000 × g 离心 1 分钟。丢弃滤液并重复使用收集管。
  9. 以最大速度旋转空迷你柱 2 分钟以干燥柱基质。将微型柱放入干净的 1.5 mL 微量离心管中。
  10. 将 20 μL 去离子水直接添加到柱膜中心,并在室温下静置 2 分钟。以 13,000 × g 的速度离心 1 分钟。
  11. 将 DNA 储存在 -20 °C。

5. 线性化向量的制备

注意:制备质粒后,可以使用选定的酶对其进行切割。长消化或双酶消化对于确保所有 DNA 的消化至关重要。这将减少后续实验中假阳性克隆的数量。

  1. pVAX1 线性化
    1. 在室温下按所示顺序制备反应混合物(表 3)。
      注:应添加水的体积以保持指示的总反应体积。在这里,用反应混合物中的酶消化 1 μg 质粒。根据质粒浓度,可以调节反应混合物中质粒的体积。
    2. 轻轻混合;然后向下旋转。在 37 °C 下在加热块或水恒温器中孵育 60 分钟。
    3. 使用凝胶提取试剂盒进行类似于第 4 节中 PCR 片段的纯化进行凝胶纯化(参见 材料表)。
  2. pVAX1-F1 线性化
    注:pVAX1-F1 是从第一轮 pVAX1(NdeI 和 HindIII)和片段 1 重组中获得的载体。pVAX1-F2 是从 pVAX1-F1 (NdeI) 和片段 2 重组的轮次中获得的载体。pVAX1-F3 是从 pVAX1-F2 (NdeI) 和片段 3 重组的轮次中获得的载体。pVAX1-F4 是从 pVAX1-F3 (NdeI) 和片段 4 重组的回合中获得的载体。pVAX1-F5 是从 pVAX1-F4 轮(EcoRV 和 NtoI)和片段 5 重组中获得的载体。
    1. 对于每种载体,按照所示顺序在室温下分别制备反应混合物(表 3)。
    2. 轻轻混合;然后向下旋转。在 37 °C 下在加热块或水恒温器中孵育 60 分钟。
    3. 使用凝胶提取试剂盒进行类似于第 4 节中 PCR 片段的纯化进行凝胶纯化(参见 材料表)。

6. 亚克隆到新载体

注:使用 50-200 ng 载体和插入片段时,可以获得良好的克隆效率。

  1. 设置 ExonArt 无缝克隆和组装反应(表 4)。使用灭菌的去离子 H2O 将总反应体积调节至 10 μL 并混合。
  2. 将反应物在热循环仪中于 50 °C 孵育 15-60 分钟。 将样品储存在冰上。
    注意:将孵育时间延长至 60 分钟可以提高组装效率。
  3. 在冰上解冻 DH5α 化学感受态细胞。
  4. 向感受态细胞中加入 10 μL 组装产物;然后,通过上下吹打轻轻混匀。
  5. 将混合物放在冰上 30 分钟。
  6. 在 45 °C 下热休克 45 秒,然后将试管转移到冰上 3 分钟。
  7. 向试管中加入 900 μL SOC 培养基。
  8. 在 37 °C 振荡培养箱中以 225 rpm 摇动试管 1 小时。
  9. 将转化反应物以 6,000 × g 离心 2 分钟。弃去上清液,将细胞重悬于 100 μL 新鲜 SOC 培养基中。
  10. 将转化的细胞悬液铺在含有 50 μg/mL 卡那霉素的单独 LB 板上。
  11. 将所有板在 37 °C 下孵育过夜。 从每个实验板中挑选单独的分离菌落。

7. 分析转化体

  1. 将 8 个菌落挑取到 20 μL 含有 50 μg/mL 卡那霉素的 LB 培养基中。
  2. 设置菌落 PCR 反应并运行 PCR(表 5)。
    注:对于片段 1 的菌落 PCR 反应,使用引物 P1 和 P2(参见 补充文件 1);对于片段 2,使用引物 P3 和 P4(参见 补充文件 1);对于片段 3,使用引物 P5 和 P6(参见 补充文件 1);对于片段 4,使用引物 P7 和 P8(参见 补充图 S2);对于片段 5,使用引物 P9 和 P10;并使用引物 P11 和 P12 检测片段 6(参见 补充图 S2)。
  3. 向 5 μL PCR 产物中加入 1 μL 6x DNA 上样缓冲液,混合并短暂离心内容物。
  4. 使用 1% 琼脂糖凝胶电泳分析结果。
  5. 在 5 mL 含有 50 μg/mL 卡那霉素的 LB 培养基中选择一个阳性菌落,并在 37 °C 下生长过夜。
  6. 根据制造商的说明,使用质粒 DNA 迷你试剂盒(参见 材料表)获得质粒。
  7. 使用 1% 琼脂糖凝胶电泳可视化结果。

结果

在本文中,我们提出了一种 体外 重组系统,该系统使用反向引物通过连续引入的限制性位点组装和修复重叠的 DNA 分子(图 1B)。该系统是一种简单高效的程序,包括制备线性载体和含有 PCR 引入的突出端的插入片段,引物具有适当的 5' 延伸序列和限制性位点; 体外 单一等温反应和重组产物向合适的宿主细菌的标准化学转化;以及选择阳性菌落并获得用于下一?...

讨论

Gibson 组装技术是一种基于 体外 重组的分子克隆方法,用于组装 DNA 片段8。该方法能够在单管等温反应中将多个 DNA 片段组装成一个环状质粒。然而,Gibson Assembly 技术的障碍之一是从 cDNA 获取长片段。由于多种原因,长片段难以准确扩增。例如,引物在长时间延伸时更容易错配,cDNA 质量可能不佳,或者富含 GC 的区域会阻止 DNA 聚合。当使用 PCR 无法从 cDNA 中轻易获得全长...

披露声明

作者声明没有利益冲突。

致谢

这项工作得到了西华师范大学提供的博士生科研启动基金(编号 20E059)的财政支持。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
1 kb plus DNA LadderTiangen Biochemical Technology (Beijing) Co., LtdMD113-02
2x Universal Green PCR Master MixRong Wei Gene Biotechnology Co., LtdA303-1
AgaroseSangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.9012-36-6
Benchtop MicrocentrifugeThermo Fisher Scientific  Co., LtdFRESCO17
Clean BenchSujing Antai Air Technology  Co., LtdVD-650-U
DNA Electrophoresis EquipmentCleaver Scientific  Co., Ltd170905117
DNA Loading Buffer (6x)Biosharp Biotechnology Co., LtdBL532A
E. Z. N. A. Gel Extraction kitOmega Bio-Tek Co., LtdD2500-01
E.Z.N.A. Plasmid DNA Mini Kit IOmega Bio-Tek Co., LtdD6943-01
Electro-heating Standing-temperature CultivatorShanghai Hengyi Scientific Instrument Co., LtdDHP-9082
ExonArt Seamless Cloning and Assembly kitRong Wei Gene Biotechnology Co., LtdA101-02
ExonScript RT SuperMix with dsDNaseRong Wei Gene Biotechnology Co., LtdA502-1
FastDigest Eco321 (EcoRV)Thermo Fisher Scientific  Co., LtdFD0303
FastDigest HindIIIThermo Fisher Scientific  Co., LtdFD0504
FastDigest NheIThermo Fisher Scientific  Co., LtdFD0974
FastDigest NotIThermo Fisher Scientific  Co., LtdFD0596
Gel Doc XRBio-Rad Laboratories Co., Ltd721BR07925
Goldview Nucleic Acid Gel StainShanghai Yubo Biotechnology Co., LtdYB10201ES03
Ice Maker MachineShanghai Bilang Instrument Manufacturing Co., LtdFMB100
Invitrogen Platinum SuperFi II DNA PolymeraseThermo Fisher Scientific  Co., Ltd12361010
LB Agar Plate (Kanamycin)Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.B530113-0010
LB sterile liquid medium (Kanamycin)Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.B540113-0001
MicropipettorsThermo Fisher Scientific  Co., Ltd
Microwave OvenPanasonic Electric (China) Co., LtdNN-GM333W
Orbital ShakersShanghai Zhicheng Analytical Instrument Manufacturing Co., LtdZHWY-2102C
PRRSV virusSichuan Agricultural University
SnapGeneGSL Biotech, LLCv5.1To design primers
T100 PCR Gradient Thermal CyclerBio-Rad Laboratories  Co., LtdT100 Thermal Cycler
TAE bufferSangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.B040123-0010
TRIzol ReagentThermo Fisher Scientific  Co., Ltd15596026RNA extraction reagent

参考文献

  1. Lessard, J. C. Molecular cloning. Methods Enzymol. 529, 85-98 (2013).
  2. Shetty, R. P., Endy, D., Knight, T. F. Engineering BioBrick vectors from BioBrick parts. J. Biol. Eng. 2, 5 (2008).
  3. Horton, R. M., Cai, Z. L., Ho, S. N., Pease, L. R. Gene splicing by overlap extension: tailor-made genes using the polymerase chain reaction. Biotechniques. 54 (3), 129-133 (2013).
  4. Horton, R. M. PCR-mediated recombination and mutagenesis. SOEing together tailor-made genes. Mol Biotechnol. 3 (2), 93-99 (1995).
  5. Bang, D., Church, G. M. Gene synthesis by circular assembly amplification. Nat. Methods. 5 (1), 37-39 (2008).
  6. Geu-Flores, F., Nour-Eldin, H. H., Nielsen, M. T., Halkier, B. A. USER fusion: a rapid and efficient method for simultaneous fusion and cloning of multiple PCR products. Nucleic Acids Res. 35 (7), e55 (2007).
  7. Gibson, D. G. Enzymatic assembly of overlapping DNA fragments. Methods Enzymol. 498, 349-361 (2011).
  8. Gibson, D. G., et al. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nat Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  9. Cho, J. G., Dee, S. A. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Theriogenology. 66 (3), 655-662 (2006).
  10. Holtkamp, D. J., et al. Assessment of the economic impact of porcine reproductive and respiratory syndrome virus on United States pork producers. J. Swine Health Prod. 21, 72-84 (2013).
  11. Thomann, B., Rushton, J., Schuepbach-Regula, G., Nathues, H. Modeling economic effects of vaccination against porcine reproductive and respiratory syndrome: Impact of vaccination effectiveness, vaccine price, and vaccination coverage. Front Vet Sci. 7, 500 (2020).
  12. Dwivedi, V., et al. Evaluation of immune responses to porcine reproductive and respiratory syndrome virus in pigs during early stage of infection under farm conditions. Virol J. 9, 45 (2012).
  13. Mengeling, W. L., Lager, K. M., Vorwald, A. C. Clinical consequences of exposing pregnant gilts to strains of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus isolated from field cases of "atypical" PRRS. Am. J. Vet. Res. 59 (12), 1540-1544 (1998).
  14. Dee, S. A., Joo, H. S. Prevention of the spread of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in endemically infected pig herds by nursery depopulation. Vet Rec. 135 (1), 6-9 (1994).
  15. Dee, S. A., Joo, H. Strategies to control PRRS: a summary of field and research experiences. Vet Microbiol. 55 (1-4), 347-343 (1997).
  16. Renukaradhya, G. J., Meng, X. J., Calvert, J. G., Roof, M., Lager, K. M. Live porcine reproductive and respiratory syndrome virus vaccines: Current status and future direction. Vaccine. 33 (33), 4069-4080 (2015).
  17. Conzelmann, K. K., Visser, N., Woensel, P. V., Thiel, H. J. Molecular characterization of porcine reproductive and respiratory syndrome virus, a member of the arterivirus group. Virology. 193 (1), 329-339 (1993).
  18. Han, M. Y., Yoo, D. W. Engineering the PRRS virus genome: Updates and perspectives. Vet Microbiol. 174 (3), 279-295 (2014).
  19. Bryksin, A. V., Matsumura, I. Overlap extension PCR cloning: a simple and reliable way to create recombinant plasmids. Biotechniques. 48 (6), 463-465 (2010).
  20. Wang, S., et al. Restriction-based multiple-fragment assembly strategy to avoid random mutation during long cDNA cloning. J Cancer. 6 (7), 632-635 (2015).
  21. Zhang, Z. D., et al. The economic impact of porcine reproductive and respiratory syndrome outbreak in four Chinese farms: Based on cost and revenue analysis. Front Vet Sci. 9, 1024720 (2022).
  22. Chen, N. H., et al. High genetic diversity of Chinese porcine reproductive and respiratory syndrome viruses from 2016 to 2019. Res Vet Sci. 131, 38-42 (2020).
  23. Wang, X. B., et al. Salidroside, a phenyl ethanol glycoside from Rhodiola crenulata, orchestrates hypoxic mitochondrial dynamics homeostasis by stimulating Sirt1/p53/Drp1 signaling. J Ethnopharmacol. 293, 115278 (2022).
  24. Hou, Y., et al. Salidroside intensifies mitochondrial function of CoCl2-damaged HT22 cells by stimulating PI3K-AKT-MAPK signaling pathway. Phytomedicine. 109, 154568 (2023).
  25. Zhang, S. R., et al. Generation of an infectious clone of HuN4-F112, an attenuated live vaccine strain of porcine reproductive and respiratory syndrome virus high copy plasmid. Virol J. 8, 410 (2011).
  26. Ni, Y. Y., Huang, Y. W., Cao, D. J., Opriessnig, T., Meng, X. J. Establishment of a DNA-launched infectious clone for a highly pneumovirulent strain of type 2 porcine reproductive and respiratory syndrome virus: identification and in vitro and in vivo characterization of a large spontaneous deletion in the nsp2 region. Virus Res. 160 (1-2), 264-273 (2011).

转载和许可

请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形

请求许可

探索更多文章

PRRSV Gibson PCR DNA

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

政策

使用条款

隐私

科研

教育

关于 JoVE

版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有,本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。