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该协议描述了工程蓝光激活变构开关 (LightR) 结构域的应用,用于蛋白质活性的可逆时空控制。利用 Src 酪氨酸激酶作为模型,本研究为开发和表征光调节 Src (LightR-Src) 提供了一种详细的方案。它证明了这种方法跨酶类别的多功能性。
光遗传学提供了模拟酶活性的复杂时空控制直至亚细胞分辨率的潜力。然而,大多数光遗传学方法在将多种功能集成到适用于各种靶蛋白的单个工具中时通常面临重大挑战。实现对 ON/OFF 动力学的精确控制,确保在黑暗中将泄漏降至最低,并以亚细胞精度在哺乳动物细胞中展示高效性能,是该领域面临的一些最常见挑战。一个有前途的解决方案在于应用合理设计的光敏结构域来变构控制蛋白质活性。使用该策略,我们生成了一种结合了所有所需特征的光遗传学方法。该方法涉及将光调节变构开关模块 (LightR) 掺入靶蛋白中,以使用蓝光 (465 nm) 光调节酶活性。LightR 结构域是通过连接两个 Vivid (VVD) 感光结构域产生的,从而形成一个光敏夹,该夹可以掺入酶催化结构域内的一个小柔性环中。在黑暗状态下,LightR 夹是打开的,从而扭曲了酶的催化结构域并将其灭活。暴露在蓝光下时,LightR 结构域关闭并恢复催化结构域的结构和酶活性。在这份手稿中,我们讨论了产生光调节蛋白激酶的设计策略,并证明了其通过蓝光、可逆性、动力学和亚细胞水平的精确调节来控制,从而实现严格的时空精度。利用 Src 酪氨酸激酶作为模型,我们展示了一种有效调节 LightR-Src 激酶活性的方案。我们还证明了 LightR 在不同酶类别中的适用性,扩展了该工具系统在解决不同疾病中信号通路的机制问题方面的效用。
细胞解释外部信号并将其转化为生理或病理环境中特定反应的能力由专门的蛋白质组指导。任何蛋白质对此类复杂反应的贡献通常由其亚细胞位置、表达水平以及瞬时、持续或振荡激活的时间定义。剖析这些单个参数在信号调控中的作用需要能够在亚细胞水平上复制蛋白质活性的复杂时空控制的方法。基因作和小分子抑制剂等传统技术在这方面存在不足。相比之下,光遗传学技术有望通过纵或模拟生理和病理过程来解剖生物过程。然而,当前的工具通常缺乏广泛的适用性或亚细胞控制。几种现有的策略实现了对蛋白质定位和相互作用的严格调节;但缺乏对酶活性的直接控制 1,2,3,4。其他酶能够调节酶活性,但可能缺乏亚细胞控制或对不同酶类别的适用性有限 5,6,7,8,9。在这篇协议论文中,我们描述了一种新的蛋白质工程方法,该方法将光遗传学的优势结合到....
1. LightR 的设计与开发(图 1)
LightR-Src 是按照 图 1A、B 中描述的策略设计和生成的。LightR-Src 的生化分析在连续照明 60 分钟时响应蓝光,获得已知内源性 Src 底物 p130Cas (Y249)22 和 paxillin (Y118)23 的磷酸化(图 2B)。值得注意的是,当 LightR-Src 仅在转染后 16-18 小时内在黑暗中表达时,未观察到 Src 激酶的背.......
我们的研究提出了一种用于研究不同信号通路的光遗传学方法,并证明了其在解决不同生物学问题方面的广泛适用性。LightR 工具系统提供了几个基本优势:(1) 蛋白质活性的变构调节,(2) 对活性的严格时间控制,可以调整以实现不同的激活和失活动力学,(3) 亚细胞水平活性的空间分辨率,(4) 信号调节和生物活性的特异性,以及 (5) 对各种靶蛋白的广泛适用.......
作者没有什么可披露的。
作者感谢 Mark Shaaya 博士对 LightR 酶和相关方案开发的贡献。pCAG-iCre 是 Wilson Wong 的礼物(Addgene 质粒 #89573),pcDNA3.1 Floxed-STOP mCherry 是 Mositoshi Sato(Addgene 质粒 #122963)的礼物,携带 V600E 突变的 bRaf-Venus 构建体是 John O'Bryan 博士 (MUSC) 的礼物;将 pCEFL-ERK2 的 ERK2 基因(来自 UNC Channing Der 博士实验室的礼物)克隆到 mCherry-C1 骨架中,获得 mCherry-ERK2 质粒; pmiRFP670-N1 是 Vladislav Verkhusha (Addgene 质粒 # 79987) 的礼物。这项工作得到了 NIH 对 AK 的 R33CA258012、R35GM145318 和 P01HL151327 资助。这项工作得到了 NL T32HL144459 T32 VBST 培训奖学金的进一步支持。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
#1.5 Glass Coverslips 25 mm Round | Warner Instruments | 64-0715 | |
1.5 mL Tubes | USA Scientific | cc7682-3394 | |
2x Laemmli Buffer | For 500 mL: 5.18 g of Tris-HCL, 131.5 mL of glycerol, 52.5 mL of 20% SDS, 0.5 g of bromophenol blue, final pH 6.8 | ||
4-20% Mini-PROTEAN TGX Precast Gel | Biorad | 4561096 | |
5x Phusion Plus Buffer | Thermo Scientific | F538L | |
60 LED Microscope Ring Light | Boli Optics | ML46241324 | Blue LED, 60 mm diameter, 5 W |
Agarose | GoldBiotech | A-201 | |
Anti-Erk 1/2 Antibody | Cell Signaling | 9102 | |
Anti-GAPDH Antibody | invitrogen | AM4300 | |
Anti-GFP | Clontech | 632380 | |
Anti-mCherry Antibody | invitrogen | M11217 | |
Anti-MEK | Cell Signaling | 9122 | |
Anti-p130Cas | BD Biosciences | 610271 | |
Anti-paxillin | Cell Signaling | 2542 | |
Anti-phospho-Erk 1/2 T202/Y204 Antibody | Cell Signaling | 9101 | |
Anti-phospho-pY249 p130Cas | Cell Signaling | 4014 | |
Anti-phospho-Y118 Paxillin | Cell Signaling | 2541 | |
Anto-phospho-S217/221 MEK | Cell Signaling | 9121 | |
Arduino Compatable Power Supply | Corporate Computer | LJH -186 | |
Arduino Uno Rev3 | Arduino | A000066 | |
Attofluor Cell Chamber | invitrogen | A7816 | |
Benchmark Fetal Bovine Serum (FBS) | Gemini Bio-products | 100-106 | Heat Inactivated Triple 0.1 µm sterile-filtered |
bRaf-V600E-Venus | Gift from Dr. John O'Bryan, MUSC | ||
BSA | GoldBiotech | A-420 | |
Carbenicillin (Disodium) | Gold Biotechnology | C-103-25 | |
CellMask Deep Red plasma membrane dye | invitrogen | c10046 | |
Colony Screen MasterMix | Genesee | 42-138 | |
DH5a competent cells | NEB | C2987H | |
DMEM | Corning | 15-013-CV | |
DNA Ladder | GoldBio | D010-500 | |
dNTPs | NEB | N04475 | |
Dpn1 Enzyme | NEB | R01765 | |
DTT | GoldBio | DTT10 | DL-Dithiothreitol, Cleland's Reagents |
EGTA | Acros | 409910250 | |
FastLightR-bRaf-mVenus | Addgene | #162155 | |
Fibronectin from bovine plasma | Sigma | F1141 | |
FuGENE(R) 6 Transfection Reagent | Promega | E2692 | Transfection reagent |
Gel Green Nucleic Acid Stain | GoldBio | G-740-500 | |
Gel Loading Dye Purple 6x | NEB | B7024A | |
GeneJET Gel extraction Kit | Thermo Scientific | K0692 | Gel Extraction Kit |
GeneJET Plasmid Miniprep Kit | Thermo Scientific | K0502 | |
Glutamax | Gibco | 35050-061 | GlutaMAX-l (100x) 100 mL |
HEK 293T Cells | ATCC | CRL-11268 | |
HeLa Cells | ATCC | CRM-CCL-2 | |
HEPES | Fischer | BP310-500 | |
Iot Relay | Digital Loggers | DLI 705020645490 | AC/DC control relay for illumination |
Kanamycin Monosulfate | Gold Biotechnology | K-120-25 | |
KCl | Sigma | P-4504 | |
L-15 1x | Corning | 10-045-CV | |
LB Agar | Fisher | BP1425-2 | |
LED Grow Light System | HQRP | 884667106091218 | LED panel lamp system |
LightR-bRaf-mVenus | Addgene | #162154 | |
LightR-iCre-miRFP670 | Addgene | #162158 | |
MATLAB | Mathworks | R2024a | Software for running CellGEO Scripts |
Metamorph | Molecular Devices | Imaging Analysis Software | |
MgCl2 | Fisher Chemical | M33-500 | |
Mineral Oil | Sigma | M5310 | |
MiniPrep Kit | Gene Choice | 96-308 | |
Mini-PROTEAN TGX Precast Gels 12 well | Bio-Rad | 4561085 | |
Molecular Biology Grade Water | Corning | 46-000-CV | |
Multiband Polychroic Mirror | 89903BS | Chroma | |
NaCl | Fisher Chemical | S271-3 | |
PBS w/o Ca and Mg | Corning | 21-031-CV | |
pCAG-iCre | Addgene | #89573 | |
pcDNA3.1_Floxed-STOP mCherry | Addgene | #122963 | |
pCEFL-ERK2 | Gift from Dr. Channing Der's Lab, UNC | ||
PCR Tubes | labForce | 1149Z65 | 0.2 mL 8-Strip Tubes and Caps, Rigid Strip Individually Attached Dome Caps |
Phusion Plus DNA Polymerase | Thermo Scientific | F630S | |
pmiRFP670-N1 | Addgene | #79987 | |
Polygon 400 Patterned Illuminator | Mightex | DSI-G-00C | |
Primers | IDT | ||
PVDF Membranes | BioRad | 1620219 | Immun-Blot PVDF/Filter Paper Sandwiches |
T0.25% Trypsin, 2.21 mM, eDTA, 1x [-] sodium | Corning | 25-053-CI | |
Tris-Acetate-EDTA (TAE) 50x | Fischer | BP1332-1 | For electrophoresis |
UPlanSApo 40x Microscope Objective | Olympus | 1-U2B828 | |
USB TTL Box | National Instruments | 6501 | For TTL interface |
β-Mercaptoethanol | Fisher Chemical | O3446I-100 |
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