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Questo protocollo descrive l'applicazione di un dominio di commutazione allosterica attivato dalla luce blu (LightR) ingegnerizzato per il controllo spaziotemporale reversibile dell'attività proteica. Utilizzando la tirosin-chinasi Src come modello, questo studio offre un protocollo elaborato per lo sviluppo e la caratterizzazione di Src regolata dalla luce (LightR-Src). Dimostra la versatilità di questo approccio in tutte le classi di enzimi.
L'optogenetica offre il potenziale per imitare il complesso controllo spazio-temporale dell'attività enzimatica fino a una risoluzione subcellulare. Tuttavia, la maggior parte degli approcci optogenetici spesso affronta sfide significative nell'integrazione di più capacità in un unico strumento applicabile a un'ampia gamma di proteine bersaglio. Ottenere un controllo preciso sulla cinetica ON/OFF, garantire la minima perdita al buio e dimostrare prestazioni efficienti nelle cellule di mammifero con precisione subcellulare sono alcune delle sfide più comuni affrontate in questo campo. Una soluzione promettente risiede nell'applicazione di domini sensibili alla luce progettati razionalmente per controllare allostericamente l'attività proteica. Utilizzando questa strategia, abbiamo generato un metodo optogenetico che combina tutte le caratteristiche desiderate. L'approccio prevede l'incorporazione del modulo di commutazione allosterica regolato dalla luce (LightR) nella proteina bersaglio per regolare l'attività enzimatica utilizzando la luce blu (465 nm). Il dominio LightR viene generato collegando due domini fotorecettori Vivid (VVD), creando un morsetto sensibile alla luce che può essere incorporato in un piccolo anello flessibile all'interno del dominio catalitico di un enzima. Nel suo stato di oscurità, il morsetto LightR è aperto, distorcendo così il dominio catalitico dell'enzima e inattivandolo. Dopo l'esposizione alla luce blu, il dominio LightR si chiude e ripristina la struttura del dominio catalitico e l'attività enzimatica. In questo manoscritto, discutiamo le strategie di progettazione per generare una proteina chinasi regolata dalla luce e dimostriamo il suo controllo attraverso la luce blu, la reversibilità, la cinetica e la regolazione precisa a livello subcellulare, consentendo una stretta precisione spaziotemporale. Utilizzando la tirosina chinasi Src come modello, mostriamo un protocollo per regolare efficacemente l'attività chinasica LightR-Src. Dimostriamo anche l'applicabilità di LightR in diverse classi di enzimi, ampliando l'utilità del sistema di strumenti nell'affrontare questioni meccanicistiche delle vie di segnalazione in diverse malattie.
La capacità della cellula di interpretare i segnali esterni e convertirli in risposte specifiche in contesti fisiologici o patologici è diretta da gruppi dedicati di proteine. Il contributo di qualsiasi proteina a tali risposte complesse è spesso definito dalla sua posizione subcellulare, dal livello di espressione e dalla tempistica dell'attivazione transitoria, sostenuta o oscillatoria. L'analisi del ruolo di questi singoli parametri nella regolazione del segnale richiede metodi in grado di replicare l'intricato controllo spazio-temporale dell'attività proteica a livello subcellulare. Le tecniche tradizionali come la manipolazione g....
1. Progettazione e sviluppo di LightR ( Figura 1)
Il LightR-Src è progettato e generato seguendo la strategia descritta in Figura 1A, B. L'analisi biochimica di LightR-Src accede alla fosforilazione di substrati endogeni noti di Src, p130Cas (Y249)22 e paxillina (Y118)23 in risposta alla luce blu a 60 minuti di illuminazione continua (Figura 2B). In particolare, non si osserva alcuna attivazione di fondo della ch.......
Il nostro studio presenta un approccio optogenetico per lo studio di diverse vie di segnalazione e dimostra la sua ampia applicabilità nell'affrontare diverse questioni biologiche. Il sistema di strumenti LightR offre diversi vantaggi essenziali: (1) Regolazione allosterica dell'attività proteica, (2) Stretto controllo temporale dell'attività che può essere regolato per ottenere diverse cinetiche di attivazione e inattivazione, (3) Risoluzione spaziale dell'attività a livello subcel.......
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Gli autori ringraziano il Dr. Mark Shaaya per il suo contributo allo sviluppo degli enzimi LightR e dei protocolli associati. pCAG-iCre è stato un dono di Wilson Wong (Addgene plasmid #89573), pcDNA3.1 Floxed-STOP mCherry è stato un dono di Mositoshi Sato (Addgene plasmid #122963), bRaf-Venus construct con mutazione V600E è stato un dono del Dr. John O'Bryan (MUSC); Il gene ERK2 da pCEFL-ERK2 (un dono del laboratorio del Dr. Channing Der, UNC) è stato clonato nella spina dorsale mCherry-C1 per ottenere il plasmide mCherry-ERK2; e pmiRFP670-N1 è stato un dono di Vladislav Verkhusha (Addgene plasmid # 79987). Il lavoro ....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
#1.5 Glass Coverslips 25 mm Round | Warner Instruments | 64-0715 | |
1.5 mL Tubes | USA Scientific | cc7682-3394 | |
2x Laemmli Buffer | For 500 mL: 5.18 g of Tris-HCL, 131.5 mL of glycerol, 52.5 mL of 20% SDS, 0.5 g of bromophenol blue, final pH 6.8 | ||
4-20% Mini-PROTEAN TGX Precast Gel | Biorad | 4561096 | |
5x Phusion Plus Buffer | Thermo Scientific | F538L | |
60 LED Microscope Ring Light | Boli Optics | ML46241324 | Blue LED, 60 mm diameter, 5 W |
Agarose | GoldBiotech | A-201 | |
Anti-Erk 1/2 Antibody | Cell Signaling | 9102 | |
Anti-GAPDH Antibody | invitrogen | AM4300 | |
Anti-GFP | Clontech | 632380 | |
Anti-mCherry Antibody | invitrogen | M11217 | |
Anti-MEK | Cell Signaling | 9122 | |
Anti-p130Cas | BD Biosciences | 610271 | |
Anti-paxillin | Cell Signaling | 2542 | |
Anti-phospho-Erk 1/2 T202/Y204 Antibody | Cell Signaling | 9101 | |
Anti-phospho-pY249 p130Cas | Cell Signaling | 4014 | |
Anti-phospho-Y118 Paxillin | Cell Signaling | 2541 | |
Anto-phospho-S217/221 MEK | Cell Signaling | 9121 | |
Arduino Compatable Power Supply | Corporate Computer | LJH -186 | |
Arduino Uno Rev3 | Arduino | A000066 | |
Attofluor Cell Chamber | invitrogen | A7816 | |
Benchmark Fetal Bovine Serum (FBS) | Gemini Bio-products | 100-106 | Heat Inactivated Triple 0.1 µm sterile-filtered |
bRaf-V600E-Venus | Gift from Dr. John O'Bryan, MUSC | ||
BSA | GoldBiotech | A-420 | |
Carbenicillin (Disodium) | Gold Biotechnology | C-103-25 | |
CellMask Deep Red plasma membrane dye | invitrogen | c10046 | |
Colony Screen MasterMix | Genesee | 42-138 | |
DH5a competent cells | NEB | C2987H | |
DMEM | Corning | 15-013-CV | |
DNA Ladder | GoldBio | D010-500 | |
dNTPs | NEB | N04475 | |
Dpn1 Enzyme | NEB | R01765 | |
DTT | GoldBio | DTT10 | DL-Dithiothreitol, Cleland's Reagents |
EGTA | Acros | 409910250 | |
FastLightR-bRaf-mVenus | Addgene | #162155 | |
Fibronectin from bovine plasma | Sigma | F1141 | |
FuGENE(R) 6 Transfection Reagent | Promega | E2692 | Transfection reagent |
Gel Green Nucleic Acid Stain | GoldBio | G-740-500 | |
Gel Loading Dye Purple 6x | NEB | B7024A | |
GeneJET Gel extraction Kit | Thermo Scientific | K0692 | Gel Extraction Kit |
GeneJET Plasmid Miniprep Kit | Thermo Scientific | K0502 | |
Glutamax | Gibco | 35050-061 | GlutaMAX-l (100x) 100 mL |
HEK 293T Cells | ATCC | CRL-11268 | |
HeLa Cells | ATCC | CRM-CCL-2 | |
HEPES | Fischer | BP310-500 | |
Iot Relay | Digital Loggers | DLI 705020645490 | AC/DC control relay for illumination |
Kanamycin Monosulfate | Gold Biotechnology | K-120-25 | |
KCl | Sigma | P-4504 | |
L-15 1x | Corning | 10-045-CV | |
LB Agar | Fisher | BP1425-2 | |
LED Grow Light System | HQRP | 884667106091218 | LED panel lamp system |
LightR-bRaf-mVenus | Addgene | #162154 | |
LightR-iCre-miRFP670 | Addgene | #162158 | |
MATLAB | Mathworks | R2024a | Software for running CellGEO Scripts |
Metamorph | Molecular Devices | Imaging Analysis Software | |
MgCl2 | Fisher Chemical | M33-500 | |
Mineral Oil | Sigma | M5310 | |
MiniPrep Kit | Gene Choice | 96-308 | |
Mini-PROTEAN TGX Precast Gels 12 well | Bio-Rad | 4561085 | |
Molecular Biology Grade Water | Corning | 46-000-CV | |
Multiband Polychroic Mirror | 89903BS | Chroma | |
NaCl | Fisher Chemical | S271-3 | |
PBS w/o Ca and Mg | Corning | 21-031-CV | |
pCAG-iCre | Addgene | #89573 | |
pcDNA3.1_Floxed-STOP mCherry | Addgene | #122963 | |
pCEFL-ERK2 | Gift from Dr. Channing Der's Lab, UNC | ||
PCR Tubes | labForce | 1149Z65 | 0.2 mL 8-Strip Tubes and Caps, Rigid Strip Individually Attached Dome Caps |
Phusion Plus DNA Polymerase | Thermo Scientific | F630S | |
pmiRFP670-N1 | Addgene | #79987 | |
Polygon 400 Patterned Illuminator | Mightex | DSI-G-00C | |
Primers | IDT | ||
PVDF Membranes | BioRad | 1620219 | Immun-Blot PVDF/Filter Paper Sandwiches |
T0.25% Trypsin, 2.21 mM, eDTA, 1x [-] sodium | Corning | 25-053-CI | |
Tris-Acetate-EDTA (TAE) 50x | Fischer | BP1332-1 | For electrophoresis |
UPlanSApo 40x Microscope Objective | Olympus | 1-U2B828 | |
USB TTL Box | National Instruments | 6501 | For TTL interface |
β-Mercaptoethanol | Fisher Chemical | O3446I-100 |
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