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Method Article
本方案描述了一种基于墨水染色的实验模型,该模型可用于 体外 植入物表面净化和粗糙度研究,以促进临床决策。
已经提出了各种机械方法来净化牙科植入物表面,但成功率各不相同。这项 体外 研究使用扫描电子显微镜 (SEM) 评估了使用赤藓糖醇粉末、聚醚醚酮 (PEEK) 超声尖端和钛刮擦 (TIT) 的空气磨损 (AA) 系统的净化效率及其对植入物表面形貌的影响。总共 60 个种植体用永久性红色墨水染色,并放置在 3D 打印的 1A 类和 1B 类种植体周围炎缺损中,根据缺损类型和治疗方案形成六组 (每组 n=10)。此外,还使用了 1 例阳性和 1 例阴性对照植入物。赤藓糖醇粉末、PEEK 超声尖端和钛刮刀在 1A 类缺陷中应用 2 分钟,在 1B 类缺陷中应用 3 分钟。使用数字软件量化残留的红色墨水区域,并使用 SEM 和 EDS 分析种植体表面变化。没有一种方法能实现完全净化。然而,赤藓糖醇粉末显然是最有效的,残留墨水率为 24% ± 6% (p < 0.001)。PEEK 超声波尖端导致 41% ± 4% 的残留墨水,而钛刮匙留下 55% ± 3%。在所有方法之间观察到显著差异。在 1A 类和 1B 类缺陷之间未发现净化效果的显著差异。SEM 分析显示赤藓糖醇粉末和 PEEK 尖端的表面损伤最小,而钛刮刀会造成中度至重度损伤。基于去污效率和表面保护,赤藓糖醇粉末和 PEEK 尖端是种植体周围炎治疗的安全有效选择,而钛刮擦效果较差,会造成相当大的表面损伤。这些发现可能有助于临床医生制定种植体周围炎的治疗计划。
种植牙治疗是全球最常见和首选的替换缺失牙齿的方案。长期随访研究表明,使用种植体支持的修复体治疗完全或部分无牙颌可提供可预测的结果和高生存成功率。然而,在手术放置和修复植入物1 后可能会出现影响硬组织和软组织的各种并发症。2017 年,牙周和种植体周围疾病和病症分类世界研讨会引入了影响种植体周围组织的疾病的定义和鉴别诊断2。根据这一定义,种植体周围炎是一种不可逆的病理状况,其特征是炎症的临床体征,包括探诊和/或化脓出血、探诊深度增加和/或种植体周围粘膜粘膜边缘退缩,以及支撑骨的影像学丢失2。种植体周围疾病的病因是多因素的,有些人比其他人更容易患上这种疾病。个体的特定易感性可能会增加种植体周围疾病发展的风险,这可能导致种植体损失。在种植体周围疾病病因中起作用的其他因素是患者相关因素(吸烟、全身性疾病、牙周病史、口腔卫生);角化粘膜的状况,植入部位骨骼和软组织的数量和质量;对植入物和周围组织的力;植入物植入过程中遇到的并发症;以及进行外科和修复治疗的医生的经验和技能2.此外,最近还引入了一种新的风险评估和治疗概念,即种植体疾病风险评估工具 (IDRA)3。该工具被开发为一个功能图,由八个参数组成,每个参数都与种植体周围炎有记录的关联。八边形的向量是牙周炎病史、探诊出血 (BoP) 的种植体和牙齿部位的百分比、探诊袋深度≥ 5 毫米的牙齿/种植体数量、牙周骨丢失率(与患者年龄相关的 X 光片)、牙周炎的易感性、支持性牙周治疗 (SPT) 的频率和修复体的设计。
最近的系统评价表明,患者层面种植体周围炎的患病率为 19.53%,种植体层面为 12.53%3。全球每年放置的种植体大约超过 500 万例,市场规模超过 40 亿美元,种植体周围炎是人口的主要健康问题。如果不及时治疗,种植体周围炎会导致受影响的种植体和种植体支撑的修复体丢失,给牙医和患者带来巨大的痛苦。
种植体周围疾病的治疗可分为非手术和手术两种方法。尽管对终点治疗牙周炎的成功有合理的预期4,但治疗种植体周围炎的可比证据仍然很少。因此,种植体周围炎的分期方法和非手术治疗的基本原理是在增加治疗侵袭性之前尝试用相对简单的方法控制生物膜和炎症,并在实现更好的生物膜和危险因素控制时进行手术步骤。这包括 OH 指导和动机、风险因素控制、生物膜保留因子的控制以及修复体清洁/移除/修改,包括修复体组件、边缘上和边缘下器械的评估,以及需要时伴随的牙周治疗。因此,非手术治疗应始终是第一步5.对于早期种植体周围炎,减少危险因素和非手术治疗可能就足够了,但在骨质流失后完全去除深袋中的生物膜通常具有挑战性。在非手术治疗后的重新评估阶段,持续的牙周袋深度 (≥ 6 mm) 和探诊出血 (BoP) 表明种植体周围炎的潜在进展。如果存在这些体征,建议进行手术干预6.种植体周围炎的手术治疗包括 (i) 开放皮瓣清创术,(ii) 切除皮瓣手术,(iii) 使用重建方法管理种植体周围骨缺损,(iv) 种植体表面去污的其他方法和 (v) 辅助使用局部/全身抗生素7.
种植体周围炎的主要病因是定植在种植体表面的致病性生物膜6。去除这种生物膜是所有处理方案的主要原则和目标,涉及机械、化学和激光净化方法7。
机械清创术采用塑料、碳和钛刮擦、带有塑料和金属尖端的超声波设备、钛刷和带有各种粉末的空气研磨 (AA) 系统。虽然很难完全消除生物膜,但这些疗法提供了临床益处。各种临床干预措施,包括有或没有防腐剂8 、抗生素9 以及切除和再生手术10 的机械清创方案,已经取得了不同程度的临床成功。然而,它们也会诱导植入物表面的化学和物理特性发生变化,从而可能使新骨形成和骨再结合复杂化。
在机械方法中,使用不同粉末成分的 AA 程序显示出最佳的清洁效果 11,12,13。然而,残留颗粒的存在会改变表面形貌并降低生物相容性14。甘氨酸,其次是碳酸氢钠,是 AA 系统中最常用的粉末8。最近,赤藓糖醇 (14 μm) 等较小的空气研磨颗粒因其有效净化和减少表面损伤而受到关注9。钛和塑料刮礼造成的表面损伤比钢制刮刀小,可有效去除生物膜15。由聚醚醚酮 (PEEK) 制成的超声波洁牙机针头还可以减少细菌负荷,同时将表面损伤降至最低10。去污方法必须考虑植入物表面的高粗糙度,并旨在去除细菌生物膜而不会造成明显的表面损伤。尽管已经进行了广泛的体外、体内和临床研究,但迄今为止仍未就种植体周围炎的治疗达成共识和金标准方案。由于许多种植牙导致种植体周围疾病的患病率不断增加,因此需要一种基于证据的、可预测的方法来治疗受污染的表面。本研究旨在评估不同去污方法(空气研磨 (AA) 系统、PEEK 超声尖端和钛刮刮子)对植入物表面去污的有效性,并通过 SEM 分析评估它们对植入物表面粗糙度的影响。
该研究方案得到了土耳其安塔利亚阿克德尼兹大学伦理委员会 (TBAEK-363) 的批准。这项研究得到了阿克登尼兹大学研究基金(项目编号:TDH-2024-6676)的支持。该研究使用了尺寸为 4.2 mm x 11 mm 的螺钉形牙科植入物(PrimeTaper EV Implant),在衣领上采用 1.7 mm 的微螺纹设计。通过喷砂和稀氢氟酸进行表面处理,以获得明确的 OsseoSpeed 表面。
1. 实验性种植体周围炎模型的制备
注:三种去污机械处理方法(空气研磨剂 (AA)、聚醚醚酮 (PEEK) 超声波和钛刮刀; 材料表)在两种不同的种植体周围炎缺损类型11 (1A 类和 1B 类) 中进行了分析。因此,有六个实验组(图 1)。共使用了 62 个植入物,包括 1 个阳性和 1 个阴性对照植入物。这种 体外 研究设计最初由 Sharhmann 等人 16 开发,已在文献中被各种研究人员修改12、13、14、15、16、17、18 (图 2)。假设组间生物膜去除功效相差 10%,则样本量确定为 60(每组 10),6 组具有 G*功效,效应量为 0.50,I 型误差为 5%,功效为 80%。
图 1:实验组流程图。 请单击此处查看此图的较大版本。
2. 植入物染色
3. 染色植入物的放置
4. 植入物的去污
5. 摄影成像
6. 图像分析
7. SEM 分析
图 2:研究流程图。 请单击此处查看此图的较大版本。
8. 统计分析
此处描述的用于分析植入物表面去污的实验方案揭示了各种处理程序之间的显着差异。此外,治疗后 SEM 方案也显示研究组之间植入物表面发生了不同程度的显着变化。
去污后的种植体水平比较(种植体总均值)
通过比较每个植入物的一般平均值(1A 类缺损中颊面的测量平均值和 1B 类缺损中颊侧、近中和远中表面的测量平均值)进行?...
由于种植体粗糙表面发生的致病机制的炎症和细菌性质,受种植体周围疾病影响的种植牙的体外表面分析方法一直具有挑战性。几个问题包括样品材料的选择、模拟表面的生物膜、选择种植体周围炎缺陷类型、代表体外手术期间的临床条件、去污程序的变化以及确定去污量的方法和程序对植入物表面粗糙度的影响。每个植入物品牌都有独特的表面特性,例如金属类...
作者没有需要披露的利益冲突。
研究中使用的植入物得到了 Dentsply Sirona 的支持。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
3D Printer | DentaFab, Istanbul, Turkey | To produce experimental periimplantitis defects | |
3D Printing Resin | Alias, Istanbul,Turkey | To produce experimental periimplantitis models | |
3D Scanner | DOF Inc. EDGE, Seoul ,Republic of Korea | Used to scan the dental phantom model | |
Air Abrasive system | AIRFLOW Plus PowderE.M.S., Electro Medical Systems S.A., Nyon, Switzerland | Used to decontaminate implant surface | |
CAD/CAM Software | Exocad 3.2 Elefsina | To produce experimental periimplantitis defects | |
Camera | Canon EOS 70D, Japan | In order to obtain photographic records of implants | |
Dental implant | DS PrimeTaper, Dentsply Sirona, Hanau, Germany | ||
Light-Curing Unit | Solidilite V, Japan | Used to curing experimental models in laboratory | |
Permanent ink | Edding, Germany | Used to stain the implant surface for mimicking biofilm | |
Physiodispenser | Dentsply Sirona, Hanau, Germany | To place the implants in the experimental models | |
SEM Device | FEI QUANTA FEG 250 FEI Technologies Inc. (Oregon, United States | Used to analyze topograhic changes on the implant surface | |
Surgical implant set | Dentsply Sirona, Hanau, Germany | To place the implants in the experimental models | |
Titanium Currette | Langer ½ Titanium Currette, Hu-Friedy, Chicago, IL, USA | Used to decontaminate implant surface | |
Ultrasonic PEEK Tip | PI-MAX Implant Scaler, E.M.S., Electro Medical Systems S.A., Nyon, Switzerland | Used to decontaminate implant surface |
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