השפעות של שיטות מכניות המשמשות בטיפול פרי-אימפלנטיטיס על טיהור פני השתל וחספוס

Summary

הפרוטוקול הנוכחי מתאר מודל ניסיוני המבוסס על צביעת דיו שניתן להשתמש בו למחקר טיהור פני השטח של שתלים במבחנה וחספוס כדי לתרום לקבלת החלטות קליניות.

Abstract

שיטות מכניות שונות הוצעו לטיהור משטחי שתלים דנטליים בהצלחה משתנה. מחקר מבחנה זה העריך את יעילות הטיהור של מערכת שחיקת אוויר (AA) עם אבקת אריתריטול, קצה קולי פוליאתר-אתר-קטון (PEEK) וקורט טיטניום (TIT) והשפעותיהם על טופוגרפיית פני השטח של השתל באמצעות מיקרוסקופ אלקטרונים סורק (SEM). בסך הכל 60 שתלים נצבעו בדיו אדום קבוע והונחו בפגמים מסוג 1A ו-Class 1B בהדפסת תלת מימד, ויצרו שש קבוצות (n=10 לקבוצה) בהתבסס על סוג הפגם ופרוטוקול הטיפול. בנוסף, נעשה שימוש בשתל שליטה חיובי אחד ואחד שלילי. אבקת אריתריטול, טיפים קוליים של PEEK וקורטות טיטניום נמרחו במשך 2 דקות בפגמים מסוג 1A ו-3 דקות בפגמים מסוג 1B. אזורי דיו אדום שנותרו כומתו באמצעות תוכנה דיגיטלית, ושינויים במשטח השתל נותחו באמצעות SEM ו-EDS. אף אחת מהשיטות לא השיגה טיהור מלא. עם זאת, אבקת אריתריטול הייתה היעילה ביותר באופן משמעותי, והשאירה שיעור דיו שיורי של 24% ±-6% (עמ' < 0.001). טיפים קוליים של PEEK הביאו ל-41% ±-4% דיו שיורי, בעוד שקורטות טיטניום השאירו 55% ±-3%. נצפו הבדלים משמעותיים בין כל השיטות. לא נמצא הבדל משמעותי ביעילות הטיהור בין פגמים מסוג 1A ו-Class 1B. ניתוח SEM הראה נזק מינימלי לפני השטח עם אבקת אריתריטול וקצות PEEK, בעוד שקורטות טיטניום גרמו לנזק בינוני עד חמור. בהתבסס על יעילות הטיהור ושימור פני השטח, אבקת אריתריטול וקצות PEEK הן אפשרויות בטוחות ויעילות לטיפול בפרי-שתל ואילו קורטות טיטניום פחות יעילות וגורמות לנזק ניכר לפני השטח. ממצאים אלה עשויים לסייע לרופאים בתכנון הטיפול בפרי-אימפלנטיטיס.

Introduction

טיפול השתלת שיניים הוא הפרוטוקול הנפוץ והמועדף ביותר להחלפת שיניים חסרות ברחבי העולם. מחקרי מעקב ארוכי טווח הראו כי השימוש בשחזורים הנתמכים על ידי שתלים בטיפול בשיניים מלאות או חלקיות מספק תוצאות צפויות ושיעורי הצלחה גבוהים מבחינת הישרדות. עם זאת, סיבוכים שונים המשפיעים על הרקמות הקשות והרכות עלולים להיווצר לאחר הנחת שתלים ושיקום כירורגי¹. בשנת 2017, הסדנה העולמית לסיווג מחלות ומצבים פריודונטלים ופרי-שתלים הציגה הגדרות ואבחנות מבדלות למחלות המשפיעות על רקמות פרי-שתלים². על פי הגדרה זו, פרי-אימפלנטיטיס היא מצב פתולוגי בלתי הפיך המאופיין בסימנים קליניים של דלקת, כולל דימום בעת גישוש ו/או סופה, עומק בדיקה מוגבר ו/או נסיגה של שולי הרירית ברירית סביב השתל, ואובדן רדיוגרפי של עצם תומכת². האטיולוגיה של מחלות פרי-שתל היא רב-גורמית, וחלק מהאנשים רגישים יותר למצב זה מאחרים. נטיות ספציפיות של אנשים עלולות להגביר את הסיכון להתפתחות מחלה סביב השתל, מה שעלול להוביל לאובדן השתל. גורמים נוספים הממלאים תפקיד באטיולוגיה של מחלות פרי-שתל הם גורמים הקשורים למטופל (עישון, מחלות מערכתיות, היסטוריה של מחלות חניכיים, היגיינת הפה); מצב הרירית הקרטינית, כמות ואיכות העצם והרקמות הרכות באתר ההשתלה; כוחות על השתל והרקמות שמסביב; סיבוכים שנתקלו בהם במהלך הנחת השתל; והניסיון והמיומנות של הרופא המבצע טיפולים כירורגיים ותותבות². בנוסף, לאחרונה הוצגה תפיסה חדשה להערכת סיכונים וטיפול, הכלי להערכת סיכון למחלות שתלים (IDRA)³. כלי זה פותח כדיאגרמה פונקציונלית המורכבת משמונה פרמטרים, שלכל אחד מהם קשר מתועד עם פרי-אימפלנטיטיס. הווקטורים של המתומן הם ההיסטוריה של דלקת חניכיים, אחוז השתלים ואתרי השיניים עם דימום בבדיקה (BoP), מספר השיניים/שתלים עם עומק כיס בדיקה ≥ 5 מ"מ, שיעור אובדן עצם חניכיים (צילומי רנטגן ביחס לגיל המטופל), רגישות לדלקת חניכיים, תדירות טיפול חניכיים תומך (SPT) ועיצוב התותבת.

סקירות שיטתיות אחרונות הראו כי השכיחות של פרי-אימפלנטיטיס היא 19.53% ברמת המטופל ו-12.53% ברמת השתל³. לגבי כ-5 מיליון שתלים המותקנים מדי שנה ברחבי העולם, עם גודל שוק של יותר מ-4 מיליארד דולר, פרי-אימפלנטיטיס מהווה בעיה בריאותית חמורה עבור האוכלוסייה. אם לא מטפלים, פרי-אימפלנטיטיס גורמת לאובדן השתל הפגוע והתותבת הנתמכת על ידי השתל, מה שגורם למצוקה גדולה הן לרופא השיניים והן למטופל.

ניתן לחלק את הטיפול במחלות פרי-שתל לגישות לא כירורגיות וכירורגיות. למרות שקיימת ציפייה סבירה להצלחת נקודות הקצה בטיפול בדלקת חניכיים⁴, עדויות דומות לטיפול בפרי-אימפלנטיטיס עדיין נדירות. לכן, הרציונל לגישה מדורגת וטיפול לא ניתוחי בפרי-אימפלנטיטיס הוא לנסות לשלוט בביופילם ובדלקת בגישות פשוטות יחסית לפני הגדלת הפולשניות של הטיפול ולבצע את השלב הכירורגי כאשר מושגת שליטה טובה יותר בביופילם וגורמי סיכון. זה כולל הוראות ומוטיבציה של OH, בקרת גורמי סיכון, בקרה על גורמים שומרי ביופילם, וניקוי/הסרה/שינוי של תותבות, כולל הערכה של רכיבי תותבת, מכשור על-שולי ותת-שולי, וטיפול חניכיים נלווה בעת הצורך. לפיכך, טיפול לא ניתוחי צריך להיות תמיד הצעד הראשון⁵. עבור פרי-אימפלנטיטיס מוקדמת, הפחתת גורמי סיכון וטיפול לא ניתוחי עשויים להספיק, אך הסרת ביופילם מלאה בכיסים עמוקים לאחר אובדן עצם היא לרוב מאתגרת. במהלך שלב ההערכה מחדש לאחר טיפול לא ניתוחי, עומק כיס מתמשך (≥ 6 מ"מ) ודימום בבדיקה (BoP) מצביעים על התקדמות פוטנציאלית של פרי-אימפלנטיטיס. אם קיימים סימנים אלה, מומלץ להתערב כירורגית⁶. הטיפול הכירורגי בפרי-אימפלנטיטיס כולל (i) הסרת דש פתוחה, (ii) ניתוח דש כריתה, (iii) ניהול פגמים בעצמות סביב השתל באמצעות גישות משחזרות, (iv) שיטות נוספות לטיהור פני השתל ו-(v) שימוש משלים באנטיביוטיקה מקומית/מערכתית⁷.

הגורם האטיולוגי העיקרי של פרי-אימפלנטיטיס הוא הביופילם הפתוגני המתיישב על פני השתל⁶. הסרת ביופילם זה היא העיקרון והמטרה העיקריים של כל פרוטוקולי הטיפול, הכוללים שיטות טיהור מכניות, כימיות ולייזר⁷.

פירוק מכני משתמש בקורטים מפלסטיק, פחמן וטיטניום, מכשירים קוליים עם קצות פלסטיק ומתכת, מברשות טיטניום ומערכות שוחקות אוויר (AA) עם אבקות שונות. למרות שקשה להשיג סילוק מוחלט של הביופילם, טיפולים אלה מספקים יתרונות קליניים. התערבויות קליניות שונות, כולל פרוטוקולי חיטוי מכניים עם או בלי חומרי חיטוי⁸, אנטיביוטיקה⁹, כמו גם ניתוחים כריתה והתחדשות¹⁰, שימשו בדרגות שונות של הצלחה קלינית. עם זאת, הם גם גורמים לשינויים בתכונות הכימיות והפיזיקליות של משטח השתל, מה שעלול לסבך היווצרות עצם חדשה ואוסאואינטגרציה מחדש.

מבין השיטות המכניות, הליכי AA המשתמשים בהרכבי אבקה שונים הראו את יעילות הניקוי הטובה ביותר 11,12,13. עם זאת, נוכחותם של חלקיקים שיוריים יכולה לשנות את טופוגרפיית פני השטח ולהפחית את התאימות הביולוגית¹⁴. גליצין, ואחריו נתרן ביקרבונט, הוא האבקה הנפוצה ביותר במערכות AA⁸. לאחרונה, חלקיקים שוחקים אוויר קטנים יותר כמו אריתריטול (14 מיקרומטר) זכו להתעניינות לטיהור יעיל עם נזק מופחת לפני השטח⁹. קורטות טיטניום ופלסטיק, הגורמות פחות נזק לפני השטח מאשר קצות פלדה, יעילות בטיהור ביופילם¹⁵. קצות סקלר אולטראסוניים העשויים מפולי-אתר-אתר-קטון (PEEK) מפחיתים גם את העומס החיידקי עם נזק מינימלי לפני השטח¹⁰. שיטות טיהור חייבות לקחת בחשבון את החספוס הגבוה של משטחי השתל ולשאוף להסיר ביופילם חיידקי מבלי לגרום נזק משמעותי למשטח. למרות שבוצע מחקר מקיף במבחנה, in vivo ומחקר קליני, עדיין אין קונצנזוס ופרוטוקול תקן זהב לטיפול פרי-אימפלנטיטיס עד כה. השכיחות הגוברת של מחלות פרי-שתל עקב שתלים דנטליים רבים מחייבת גישה מבוססת ראיות וצפויה לטיפול במשטחים מזוהמים. מחקר זה נועד להעריך את יעילותן של שיטות טיהור שונות - מערכות שוחקות אוויר (AA), טיפים קוליים של PEEK וטיטניום - טיהור משטח השתל ולהעריך את השפעתן על חספוס פני השתל על ידי ניתוח SEM.

Protocol

פרוטוקול המחקר אושר על ידי הוועדה האתית (TBAEK-363) של אוניברסיטת אקדניז, אנטליה, טורקיה. מחקר זה נתמך על ידי קרן המחקר של אוניברסיטת אקדניז (מספר פרויקט: TDH-2024-6676). המחקר השתמש בשתל דנטלי בצורת בורג (PrimeTaper EV Implant) במידות של 4.2 מ"מ על 11 מ"מ, הכולל עיצוב מיקרו-חוט בגודל 1.7 מ"מ על הצווארון. הכנת פני השטח עם התזת חול ותחריט חומצה עם חומצה הידרופלואורית מדוללת להשגת משטח OsseoSpeed מוגדר היטב.

1. הכנת מודלים ניסיוניים של פרי-אימפלנטיטיס

הערה: שלוש שיטות טיפול מכניות לטיהור (שוחק אוויר (AA), פוליאתרקטון (PEEK) אולטרסאונד וקורט טיטניום; טבלת חומרים) בשני סוגים שונים של פגמים בפרי-אימפלנטיטיס נותחו¹¹ (Class 1A ו-Class 1B). לפיכך, היו שש קבוצות ניסוי (איור 1). בסך הכל נעשה שימוש ב-62 שתלים, כולל שתל בקרה חיובי אחד ואחד שלילי. תכנון מחקר מבחנה זה, שפותח בתחילה על ידי Sharhmann et ^al.16, שונה על ידי חוקרים שונים 12,13,14,15,16,17,18 בספרות (איור 2). בהנחה של הבדל של 10% ביעילות הסרת הביופילם בין הקבוצות, גודל המדגם נקבע כ-60 (10 לכל קבוצה) עבור שש קבוצות עם G*power, גודל אפקט של 0.50, שגיאה מסוג I של 5% ו-80% הספק.

איור 1: תרשים זרימה של קבוצות ניסוי. אנא לחץ כאן לצפייה בגרסה גדולה יותר של איור זה.

1. הסר טוחנת ראשונה אחת ממודל הפנטום של הלסת התחתונה החינוכית. שיני הפלסטיק מקובעות לדגם הפנטום הזה בעזרת ברגים. נתק את השן הטוחנת הראשונה והסר את החוט מהשקע. מלאו את השקע על ידי יציקת חומר הסיליקון הרך כדי לכסות את השקע ליצירת רכס מכתשית שטוח.
   הערה: נוצרה סימולציה של שתל המונח באזור חסר שיניים.
2. סרוק את הדגם המוכן בסורק מעבדה ליצירת עיצוב דיגיטלי.
3. צור פגמים בעצם פרי-שתל תלת מימד Class 1A ו-Class 1B¹¹ באופן דיגיטלי. פתח את תוכנת Exocad. העלה את קובץ הדגם הסרוק. לאחר מכן לחץ על עיצוב ובחר מצב מומחה. הסירו אזורים חריגים בעזרת האפשרות Edit Mesh. לאחר מכן לחץ לחיצה ימנית ובחר שמור סריקה כקובץ בתיקיה הקשורה במחשב.
4. בחר כלים > אפשרות הוספה/הסרה של רשת , בחר סריקת שעווה> העלה קובץ ובחר את הקובץ שזה עתה נשמר בתיקיה. לאחר מכן, לחץ על מצב אשף בצד ימין.
5. במודל STL החדש שנוצר, צור הדמיית פגמים בשקע השן. לשם כך, לחץ על הוספה/הסרה בצד ימין. בחר גודל מברשת צורה אליפסה. לאחר מכן, צור את הפגם בדגם באמצעות Shift ולחיצה שמאלית בו-זמנית. התאם את אורך הפגם כ-5 מ"מ ואת הרוחב כ-4.2 מ"מ (המתאים לקוטר השתל) על פני השטח הבוקאלי של השתל עבור פגמים מסוג 1A ו-5-5-5 מ"מ עבור פגמים מסוג 1B.
6. כדי לצמצם את הרוחב האופקי של הפגם, בחר את התלול על ידי לחיצה על האנטומיה בצד שמאל וצמצום הרוחב הווסטיבולרי של הפגם פנימה. לאחר מכן, לחץ לחיצה ימנית ושמור את הסצנה כקובץ.
7. כדי ליצור דגם סופי, הפעל מחדש את התוכנית וטען מחדש את התיקיה השמורה. לאחר מכן בחר באפשרות Wizard Mode ו-Model Alignment בצד ימין. בחר את סוג הדגם כדגם שעווה דיגיטלי משמאל. לחץ על הבא מספר פעמים עד שתגיע לקטע עיצוב הדגם משמאל. בחר באפשרות Full Model ולחץ על Next פעמיים. לאחר השלמת קובץ המודל, פתח אותו עם Explorer, והוא מוכן להדפסה.
8. העבר את קבצי ה-STL של הדגם המעוצב למדפסת התלת מימד. הדפס את הדגמים הדיגיטליים שנוצרו באמצעות שרף מודל.
9. שוטפים את דגמי הניסוי באתנול 96% למשך 5-10 דקות. לאחר תהליך הניקוי, הנח את הדגמים במכשיר הריפוי פולט האור ורפא באור למשך 5 דקות בהגדרת המינון בהתאם להוראות היצרן.
   הערה: השתמש בדגם שרף בעל חוזק מתיחה, כיפוף ודחיסה גבוה המתאים לקידוח שתלים. נקו את הדגם המודפס בתמיסות על בסיס אלכוהול בהתאם להוראות היצרן וודאו שהוא נרפא באור כראוי.

2. מכתים של שתלים

1. טבלו את שתלי הבדיקה בדיו אדום צמיג עמיד במים. ודא שכל חלקי משטח השתל מכוסים לחלוטין והומוגני בדיו למשך 15 שניות. הסר את השתלים מהמיכל הסטרילי באמצעות ידיות נהג או עמודי טביעה ללא מגע יד.
   הערה: צביעה זו תדמה תחליף ביופילם גלוי אופטית לניתוח הצילום.
2. יבש באוויר את השתלים המוכתמים בעזרת מזרק אוויר של יחידת שיניים על מנת לקבל פיזור אחיד של הדיו. יבש את השתלים המוכתמים עוד יותר למשך 24 שעות בטמפרטורת החדר. יבש את השתלים בבידוד עם הידיות, ללא מגע ידיים.

3. מיקום שתלים מוכתמים

1. התאם את ההגדרות של מתקן פיזיו דנטלי באופן הבא: 800 סל"ד, מומנט 40 N ללא השקיה במי מלח.
2. צור את שקע השתל עם מקדחי השתל הכירורגיים בדגמי הניסוי כדי למקם את השתלים באורך 11 מ"מ וברוחב 4.2 מ"מ. הכן את אותו שקע שתל לדגמים עם שני סוגי הפגמים (דגמי פגמים מסוג 1A ו- 1B).
3. השתמש במקדחי השתל ברצף בהתאם להוראות היצרן כדי להשיג יציבות ראשונית. נקה את שאריות הפסולת לאחר הקידוח עם מזרק אוויר-מים, ולאחר מכן הנח את השתלים. ייצב את המודלים הניסיוניים של פרי-שתל על פלטפורמת העבודה בעזרת מהדק כדי למנוע מיקרו-תנועה של השתלים וכדי למנוע מיקרו-סדקים בדגמים.
4. הכנס את השתלים עם ידית מנשא לשקעים. השאירו 5 מ"מ של שטח חשוף על פני השטח הבוקאלי. ודא שהשתלים שקועים באותה רמה על פסגת העצם הלשונית של הדגם. הימנע מלגעת במשטח השתל המוכתם.

4. טיהור שתלים

1. התחל לטהר את השתלים בקבוצות מבלי להסיר אותם מדגמי הפגמים הניסיוניים 1A ו-1B.
2. מערכת שוחקת אוויר: הגדר את המכשיר במלוא העוצמה עם השקיה במים עם אבקת אריתריטול של 14 מיקרומטר. החזק את קצה המכשיר במרחק של 2-3 מ"מ משטח השתל ומרח את האבקה באופן שווה על הפגם החשוף בפרי-שתל . הגבל את זמן העבודה ל-2 דקות עבור פגמים של 1A ו-3 דקות עבור פגמים של 1B.
3. טיפ קולי Polyetheretherketone (PEEK): הגדר את המכשיר בהספק של 8 (80%) עם השקיית מים מקסימלית. החזק את ידית ה-PEEK באופן המתאים לשימוש קולי. בצע טיהור על פני השתל בתנועות ליניאריות ומקבילות. החל את קצה ההצצה בין החוטים ככל שהעיצוב שלו מאפשר. הגבל את זמן העבודה ל-2 דקות עבור פגמים של 1A ו-3 דקות עבור פגמים של 1B.
4. קורטות טיטניום: הפעל מגעים רצופים בלחץ קבוע ב-60°-90° על משטח השתל בכוח משוער של 0.75 N על משטח השתל החשוף של 5 מ"מ למשך 2 דקות עבור פגמים של 1A ו-3 דקות עבור פגמים של 1B.
5. לאחר טיהור, הסר את השתל באמצעות חתיכת הנהג ללא מגע יד. אם הדגמים מתעוותים לאחר טיהור, המשך לדגמי הגיבוי. ייצב את המודלים הניסיוניים של פרי-שתל על פלטפורמת העבודה בעזרת מהדק.
   הערה: כל השיטות צריכות להיות מכוילות ומיושמות על ידי חוקר יחיד.

5. הדמיה צילומית

1. הסר את השתלים מהדגם בעזרת חתיכת נהג שתל תואמת. יבש את השתלים באוויר למשך 20 שניות כדי להסיר חלקיקים/שאריות משוחררים על פני השטח.
2. הנח את השתלים על דגמי צילום אקריליים מעוצבים בהתאמה אישית כדי לצלם תצוגות שטוחות, תצוגות אפיקליות של 30° ותצוגות עטרה של 30° כדי להעריך את החלקים האפיקליים והעטרתיים של החוטים על משטח השתל.
3. הנח את המצלמה על חצובה ותקן את הגדרות המצלמה (מרחק 15 ס"מ, ISO 160, צמצם f/16, זמן חשיפה 1/250 שניות). ודא שהחדר מואר מספיק. יש צורך לייצב את המצלמה בעזרת חצובה.
4. צלם את התמונות הדיגיטליות בפורמט RAW עם פלאש. השג בסך הכל 90 תמונות בוקאליות (אחת שטוחה, אחת 30° אפיקלית ואחת 30° קורונלית עבור כל משטח שתל) עבור פגמים ב-Class1A ו-270 תמונות (שטוחות, 30° אפיקליות ו-30° קורונליות מכל משטח בוקאלי, מזיאלי ודיסטלי עבור כל שתל) עבור פגמים מסוג 1B. הפקידו את כל קובצי התמונות הדיגיטליות בדיסק קשיח להמשך ניתוח תמונה.

6. ניתוח תמונה

1. בצע את כל הניתוחים בתוכנת תמונה דיגיטלית (ImageJ). לפני הניתוח, הפוך את רקע הצילומים לשחור באמצעות תוכנת פוטושופ (Photoroom) כדי להבטיח שרק השתל נראה בתמונה. פתח את היישום ולאחר מכן הוסף כל תמונה מהגלריה. הסר את הרקע מהתמונה ובחר רקע שחור מהאפשרויות.
2. גרור ושחרר את התמונה ב-ImageJ. צייר ריבוע בתמונה כדי לכסות 5 מ"מ קורונלי לשתל. לאחר מכן לחץ על תמונה > חיתוך לסטנדרטיזציה. חזור על אותו תהליך עבור כל תמונה.
3. המר את התמונות לפורמט 8 סיביות על ידי לחיצה על תמונה ˃ סוג ˃ 8 סיביות והתאם את הספים על ידי לחיצה על תמונה ˃ התאם ˃ סף לחישובי שטח.
4. חשב את כל שטח הפנים של השתל ואת שטח שאריות הצבע האדום על ידי לחיצה על נתח ˃ מדוד ˃ שטח.
5. רשום את אזור הפיקסל שהתקבל בקובץ גיליון אלקטרוני. צור קובץ גיליון אלקטרוני נפרד כדי להקליט את נתוני התמונה הגולמיים.
6. על מנת להשיג את אחוז שאריות הצבע האדום, הכפל את השטח המוצג באדום ב-100 וחלקו בשטח הפנים הכולל של השתל.

7. ניתוח SEM

1. אחסן את כל השתלים בקופסאות הסטריליות שלהם עד ליום הניתוח.
2. לפני ניתוח SEM, בחר באופן אקראי מדגם מייצג אחד מכל קבוצת טיפול. בנוסף לדגימות שנבחרו מכל קבוצה, הוסיפו שתל סטרילי אחד, ורק השתל מכוסה לחלוטין בדיו. לפיכך, הכינו בסך הכל שמונה דגימות שתלים לניתוח SEM.
3. רססו גז חנקן באמצעות אקדח גז למשך 20 שניות על מנת להסיר כל מיקרו-אבקה על פני השתל לפני ניתוח SEM.
   הערה: לא הוחל ציפוי זהב נוסף בשל הטכנולוגיה המתקדמת של המכשיר.
4. הרכיב כל שתל על גבי דפי SEM עם דיסקים דביקים מוליכים בפחמן באופן המאפשר ניתוח של המשטח השטוח הבוקאלי ללא טיהור ידיים. סדרו אותם לפי מספרים כדי למנוע בלבול של הקבוצות.
5. בחר אזור מהשתלים המונחים במכשיר וצלם תמונות בהגדלות שונות. חזור על אותו הליך עבור אזורים שונים של משטחי השתל (מזיאלי או דיסטלי). השתמש בהגדלה של 100x, 1000x ו-5000x לתמונות באמצעות התקן SEM הפועל ב-10-30 קילו וולט עם מרחק עבודה ממוצע של 12 מ"מ.
   הערה: המיקרו-גדיל השני מאזור הצווארון והמקרוסטרנד השני מהגוף נבחרו עבור כל שתל כדי להבטיח סטנדרטיזציה במהלך ניתוח SEM. עבור תמונות מסוימות, מומלץ לבצע ניתוח יסודות (EDS) במהלך ההדמיה לצורך השוואה.

איור 2: תרשים זרימה של המחקר. אנא לחץ כאן לצפייה בגרסה גדולה יותר של איור זה.

8. ניתוח סטטיסטי

1. מבטא משתנים קטגוריים כמספרים ואחוזים ומשתנים רציפים כממוצע וסטיית תקן. אשר את נורמליות ההתפלגות עבור משתנים רציפים באמצעות מבחן שפירו-וילק.
2. להשוואה של משתנים רציפים בין קבוצות פגמים, השתמש במבחן t של הסטודנט. להשוואה בין יותר משתי קבוצות, השתמש במבחן ANOVA או Kruskal Wallis חד כיווני בהתאם לשאלה אם ההשערות הסטטיסטיות התגשמו או לא.
3. עבור נתונים המופצים בדרך כלל, לגבי ההומוגניות של שונות, השתמש במבחני Tukey להשוואות מרובות של קבוצות. עבור נתונים המופצים באופן לא נורמלי, השתמש במבחן Mann-Whitney U המותאם ל-Bonferroni להשוואות מרובות של קבוצות. כל הניתוחים הסטטיסטיים בוצעו באמצעות IBM SPSS 20. רמת המובהקות הסטטיסטית עבור כל המבחנים נחשבה ל-0.05.

תוצאות

פרוטוקול הניסוי המתואר כאן לניתוח טיהור משטחי השתל חשף הבדלים משמעותיים בין הליכי טיפול שונים. בנוסף, פרוטוקול ה-SEM שלאחר הטיפול הראה גם שינויים משמעותיים על משטחי השתל בדרגות שונות בקרב קבוצות המחקר.

השוואות ברמת השתל (סך כל אמצעי השתל) לאחר טיהור

Discussion

המתודולוגיה של ניתוח פני שטח במבחנה של שתלים דנטליים המושפעים ממחלה סביב השתל תמיד הייתה מאתגרת בשל האופי הדלקתי והחיידקי של המנגנונים הפתוגניים המתרחשים על המשטחים המחוספסים של השתל. מספר חששות כוללים את בחירת חומר הדגימה, חיקוי ביופילם על פני השטח, בחירת סוג הפג?...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
3D Printer	DentaFab, Istanbul, Turkey		To produce experimental periimplantitis defects
3D Printing Resin	Alias, Istanbul,Turkey		To produce experimental periimplantitis models
3D Scanner	DOF Inc. EDGE, Seoul ,Republic of Korea		Used to scan the dental phantom model
Air Abrasive system	AIRFLOW Plus PowderE.M.S., Electro Medical Systems S.A., Nyon, Switzerland		Used to decontaminate implant surface
CAD/CAM Software	Exocad 3.2 Elefsina		To produce experimental periimplantitis defects
Camera	Canon EOS 70D, Japan		In order to obtain photographic records of implants
Dental implant	DS PrimeTaper, Dentsply Sirona, Hanau, Germany
Light-Curing Unit	Solidilite V, Japan		Used to curing experimental models in laboratory
Permanent ink	Edding, Germany		Used to stain the implant surface for mimicking biofilm
Physiodispenser	Dentsply Sirona, Hanau, Germany		To place the implants in the experimental models
SEM Device	FEI QUANTA FEG 250 FEI Technologies Inc. (Oregon, United States		Used to analyze topograhic changes on the implant surface
Surgical implant set	Dentsply Sirona, Hanau, Germany		To place the implants in the experimental models
Titanium Currette	Langer ½ Titanium Currette, Hu-Friedy, Chicago, IL, USA		Used to decontaminate implant surface
Ultrasonic PEEK Tip	PI-MAX Implant Scaler, E.M.S., Electro Medical Systems S.A., Nyon, Switzerland		Used to decontaminate implant surface