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Method Article
In diesem Artikel stellen wir ein Protokoll zum Nachweis von Mikrotubuli-beladenen Oligodendrozyten in einem Modell der Tubulinopathie durch einen einfachen, innovativen Mikroskopieansatz der zweiten harmonischen Generation vor.
Die zufriedenstellende Visualisierung von Zytoskelettkomponenten im Gehirn ist eine Herausforderung. Die ubiquitäre Verteilung der Netzwerke von Mikrotubuli, Mikrofilamenten und intermediären Filamenten in allen neuronalen Geweben, zusammen mit der Variabilität der Ergebnisse von fluoreszierenden Proteinfusionsstrategien und ihrer begrenzten Anwendbarkeit auf dynamische Studien von Antikörpern und Medikamenten als Chromophorvehikel, machen klassische optische Ansätze nicht so effektiv wie für andere Proteine. Wenn Tubulin untersucht werden muss, ist die markierungsfreie Erzeugung von zweiten Oberschwingungen aufgrund der nicht-zentrosymmetrischen Organisation des Moleküls eine sehr geeignete Option. Diese Technik kann, wenn sie mit der Mikroskopie konjugiert wird, die volumetrische Verteilung paralleler Bündel von Mikrotubuli in biologischen Proben qualitativ beschreiben, mit dem zusätzlichen Vorteil, mit frischem Gewebe zu arbeiten, das nicht fixiert und nicht permeabilisiert ist. Diese Arbeit beschreibt, wie Tubulin mit einem kommerziellen Mikroskopieaufbau der zweiten harmonischen Generation abgebildet werden kann, um Mikrotubuli in den mit Tubulin angereicherten Strukturen der Oligodendrozyten hervorzuheben, wie bei der Hypomyelinisierung mit Atrophie der Basalganglien und der Tbulinopathie des Kleinhirns (H-ABC), einer kürzlich beschriebenen Myelinerkrankung.
Die optische Bildgebung von Zytoskelettstrukturen in Geweben und Organpräparaten ist keine leichte Aufgabe. Zytoskelettfilamente sind allgegenwärtig, so dass, wenn eine generische Färbung durchgeführt wird, zum Beispiel gegen Alpha-Tubulin oder Beta-Aktin oder möglicherweise Keratin in einer Epithelprobe, das Signal wahrscheinlich ziemlich homogen über die gesamte Probe verteilt wird. Um die Färbung auf eine aussagekräftigere Teilmenge zellulärer Komponenten zu beschränken, kann man entweder transgene Mäuse mit gezielter Expression1 verwenden oder isoformspezifische Antikörper verwenden. Während nur sehr wenige der letzteren auf dem Markt sind ....
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Alle beschriebenen Verfahren wurden in Übereinstimmung mit den Gesetzen und Kodizes durchgeführt, die im siebten Titel der Verordnung des Allgemeinen Gesundheitsgesetzes über die Gesundheitsforschung der mexikanischen Regierung (NOM-062-ZOO-1999) genehmigt wurden, und in Übereinstimmung mit den Empfehlungen des Leitfadens der Nationalen Gesundheitsinstitute für die Pflege und Verwendung von Versuchstieren und wurden vom institutionellen Ausschuss für Bioethik in der Forschung der Universidad de Guanajuato und der Benemérita Universidad Autónoma de Guanajuato genehmigt. Puebla.
1. Mikroskop-Einstellungen
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Die mit dieser Methodik erhaltenen Bilder weisen aufgrund der sehr begrenzten Anzahl von Harmonophoren, die in biologischen Geweben vorhanden sind, ein intrinsisch niedriges Hintergrundniveau auf, was einer der wesentlichen Vorteile der Methode ist.
Wenn die Fasern des Corpus callosum abgebildet werden, finden sich im Taiep-Gehirn durchweg faserartige Kurzstrukturen und abgerundete Elemente (Abbildung 3B), während das Corpus callosum des Kontrollgehirns ein viel heterogeneres und iso.......
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Die SHG-Mikroskopie ist Teil einer Gruppe nichtlinearer optischer Techniken, zu denen die Zwei-Photonen-Anregungsmikroskopie, die Mikroskopie der dritten harmonischen Generation und die kohärente Anti-Stokes-Raman-Streumikroskopie gehören, die dazu beigetragen haben, das Anwendungsspektrum der konventionellen optischen Mikroskopie auf die Biowissenschaften auszudehnen20.
Insbesondere beziehen sich die Hauptstärken und Schwächen der SHG-Mikroskopie auf die gleiche Be.......
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Die Autoren haben keine konkurrierenden finanziellen Interessen.
Diese Arbeit wurde vom Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) durch die folgenden Zuschüsse unterstützt: infraestructura 226450 an VP-CIO, infraestructura 255277 an V.P. und FORDECYT-PRONACES/194171/2020 an V.H. Wir danken für die Unterstützung von Juvenal Hernández Guevara als CIO bei der Videoproduktion.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
405/10 nm BrightLine(R) single-band bandpass filter | Semrock | FF01-405/10-25 | 32 mm diameter, with housing ring |
Black Nylon, Polyurethane-Coated Fabric | Thorlabs | BK5 | 5' x 9' (1.5 m x 2.7 m) x 0.005" (0.12 mm) Thick |
Blades for vibratome | any commercial; e.g. Wilkinson Sword | Classic stainless steel double edge razor blades | |
Cell culture dishes, 35 mm | any commercial; e.g. Falcon | 351008 | |
Confocal microscope | Zeiss | LSM710NLO AxioObserver Z1 | Inverted microscope, objective used is LCI Plan-Neofluar 25x/0.8 NA |
Cooler | any commercial | Any insulated, polystyrene box could work, to mantain the sample at about 37 °C | |
Corn stach | e.g. Maizena | From the supermarket | |
Coverslips #1.5 | any commercial | Rectangular | |
Cyanoacrylate glue | e.g. Loctite | To glue the brain to the masking tape | |
Fine forceps | fine science tools | 11412-11 | To manipulate tissue sections by handling from the meninges |
Fine scissors | fine science tools | 14370-22 | To cut the skin |
Fine scissors curved tip | fine science tools | 14061-09 | To cut along the midline |
Formaldehyde 37% | Sigma-Aldrich | 252549 | To dilute 1:10 in PBS |
Friedman Rongeur | fine science tools | 16000-14 | To cut the bone |
Gel packs | any commercial | Prewarmed to 37 °C, to help mantaining the temperature inside the cooler | |
Glass Pasteur pipette, modified | any commercial | To transfer the tissue section | |
Hanks′ Balanced Salt solution (HBSS) | Gibco | 14025-076 | Could be prepared from powders |
Kelly hemostats | fine science tools | 13018-14 | To separate the bone |
Masking tape | any commercial | To protect th surface of the specimen plate | |
NDD module, type C | Zeiss | 000000-1410-101 | To detect the signal, reducing light loss. Housing the 000000-1935-163 filter set with the SP485 |
Offset bone nippers | fine science tools | 16101-10 | To cut the bone |
Phosphate buffered saline (PBS) | Gibco | 10010-031 | Could be prepared from powders or tabs |
Pulsed laser | Coherent | Chameleon Vision II | 680–1080 nm tunable laser |
Scalpel | any commercial | Straight blade with sharp point | |
Standard pattern forceps | fine science tools | 11000-18 | |
Vannas spring scissors | fine science tools | 15018-10 | To cut meninges that remain joined to both the slice obtained from vibratome cutting and the section glued to the specimen plate. |
Vibratome | any commercial; e.g. Leica | VT1200 |
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