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Neste artigo, apresentamos um protocolo para detectar oligodendrócitos carregados de microtúbulos em um modelo de tubulinopatia através de uma abordagem microscópica simples e inovadora de segunda geração harmônica.
A visualização satisfatória dos componentes citoesqueléticos no cérebro é um desafio. A distribuição ubíqua das redes de microtúbulos, microfilamentos e filamentos intermediários em todos os tecidos neurais, juntamente com a variabilidade nos resultados das estratégias de fusão de proteínas fluorescentes e sua aplicabilidade limitada a estudos dinâmicos de anticorpos e drogas como veículos cromóforos, tornam as abordagens ópticas clássicas não tão eficazes quanto para outras proteínas. Quando a tubulina precisa ser estudada, a geração livre de rótulo de segundos harmônicos é uma opção muito adequada devido à organização não centrossimétrica da molécula. Esta técnica, quando conjugada à microscopia, pode descrever qualitativamente a distribuição volumétrica de feixes paralelos de microtúbulos em amostras biológicas, com a vantagem adicional de trabalhar com tecidos frescos não fixos e não permeabilizados. Este trabalho descreve como obter imagens de tubulina com uma configuração comercial de microscopia de segunda geração harmônica para destacar microtúbulos nas estruturas enriquecidas com tubulina dos oligodendrócitos, como na hipomielinização com atrofia dos gânglios da base e tubulinopatia do cerebelo (H-ABC), um distúrbio de mielina recentemente descrito.
A imagem óptica de estruturas citoesqueléticas em tecidos e preparações de órgãos não é uma tarefa fácil. Os filamentos citoesqueléticos são onipresentes, portanto, se a coloração genérica for realizada, por exemplo, contra alfa-tubulina ou beta-actina ou potencialmente queratina em uma amostra epitelial, o sinal provavelmente será distribuído de forma bastante homogênea por toda a amostra. Para restringir a coloração a um subconjunto mais significativo de componentes celulares, pode-se usar camundongos transgênicos com expressão direcionada1 ou planejar o uso de anticorpos específicos de isoformas. Embora muito poucos destes últimos estejam no....
Todos os procedimentos descritos foram feitos em conformidade com as leis e códigos aprovados no sétimo título do Regulamento da Lei Geral de Saúde Relativa à Pesquisa em Saúde do Governo Mexicano (NOM-062-ZOO-1999) e de acordo com as recomendações do Guia dos Institutos Nacionais de Saúde para o Cuidado e Uso de Animais Experimentais e foram aprovados pelo comitê institucional de bioética em pesquisa da Universidad de Guanajuato e Benemérita Universidad Autónoma de Puebla.
1. Configurações do microscópio
As imagens obtidas com esta metodologia têm um baixo nível de fundo intrínseco devido ao número muito limitado de harmonóforos presentes nos tecidos biológicos, o que é uma das vantagens significativas do método.
Quando as fibras do corpo caloso são visualizadas, estruturas curtas semelhantes a fibras e elementos arredondados podem ser consistentemente encontrados no cérebro taiep (Figura 3B), enquanto o corpo caloso do cérebro controle mostra um sinal muito mais heterogên.......
A microscopia SHG faz parte de um grupo de técnicas de óptica não linear, que incluem microscopia de excitação de dois fótons, microscopia de terceira geração harmônica e microscopia coerente de espalhamento Raman anti-Stokes, que contribuíram para expandir a gama de aplicações da microscopia óptica convencional para as ciências da vida20.
Especificamente, a maior força e fraqueza da microscopia SHG referem-se à mesma condição: o gerador de sinal é n?.......
Os autores não têm interesses financeiros concorrentes.
Este trabalho foi apoiado pelo Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) através das seguintes subvenções: infraestructura 226450 ao VP-CIO, infraestructura 255277 a V.P. e FORDECYT-PRONACES/194171/2020 a V.H. Reconhecemos o apoio de Juvenal Hernández Guevara no CIO na produção de vídeos.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
405/10 nm BrightLine(R) single-band bandpass filter | Semrock | FF01-405/10-25 | 32 mm diameter, with housing ring |
Black Nylon, Polyurethane-Coated Fabric | Thorlabs | BK5 | 5' x 9' (1.5 m x 2.7 m) x 0.005" (0.12 mm) Thick |
Blades for vibratome | any commercial; e.g. Wilkinson Sword | Classic stainless steel double edge razor blades | |
Cell culture dishes, 35 mm | any commercial; e.g. Falcon | 351008 | |
Confocal microscope | Zeiss | LSM710NLO AxioObserver Z1 | Inverted microscope, objective used is LCI Plan-Neofluar 25x/0.8 NA |
Cooler | any commercial | Any insulated, polystyrene box could work, to mantain the sample at about 37 °C | |
Corn stach | e.g. Maizena | From the supermarket | |
Coverslips #1.5 | any commercial | Rectangular | |
Cyanoacrylate glue | e.g. Loctite | To glue the brain to the masking tape | |
Fine forceps | fine science tools | 11412-11 | To manipulate tissue sections by handling from the meninges |
Fine scissors | fine science tools | 14370-22 | To cut the skin |
Fine scissors curved tip | fine science tools | 14061-09 | To cut along the midline |
Formaldehyde 37% | Sigma-Aldrich | 252549 | To dilute 1:10 in PBS |
Friedman Rongeur | fine science tools | 16000-14 | To cut the bone |
Gel packs | any commercial | Prewarmed to 37 °C, to help mantaining the temperature inside the cooler | |
Glass Pasteur pipette, modified | any commercial | To transfer the tissue section | |
Hanks′ Balanced Salt solution (HBSS) | Gibco | 14025-076 | Could be prepared from powders |
Kelly hemostats | fine science tools | 13018-14 | To separate the bone |
Masking tape | any commercial | To protect th surface of the specimen plate | |
NDD module, type C | Zeiss | 000000-1410-101 | To detect the signal, reducing light loss. Housing the 000000-1935-163 filter set with the SP485 |
Offset bone nippers | fine science tools | 16101-10 | To cut the bone |
Phosphate buffered saline (PBS) | Gibco | 10010-031 | Could be prepared from powders or tabs |
Pulsed laser | Coherent | Chameleon Vision II | 680–1080 nm tunable laser |
Scalpel | any commercial | Straight blade with sharp point | |
Standard pattern forceps | fine science tools | 11000-18 | |
Vannas spring scissors | fine science tools | 15018-10 | To cut meninges that remain joined to both the slice obtained from vibratome cutting and the section glued to the specimen plate. |
Vibratome | any commercial; e.g. Leica | VT1200 |
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