This work was funded by a National Institutes of Health R01 (DC009453 support to CWB).

HINWEIS: Vor der Bereitstellung Speichelproben alle Probanden gaben Einwilligung gemäß den Richtlinien für die Behandlung von Menschen bei Nationwide Kinderkrankenhaus. 1. Speichelentnahme und Lagerung <ol><li> Vor der Speichelentnahme, sicherzustellen, dass der Mund des Subjekts ist frei von Nahrung oder anderen Fremdstoffen, indem er das Thema spülen den Mund mit Wasser und die Vermeidung von Essen oder Trinken für 30 Minuten vor dem Sammeln der Probe. </li><li> Öffnen Sie ein 15 ml Zentrifugenröhrchen mit 2,5 ml DNA-Stabilisierungspuffer 2 achten Sie darauf, berühren Sie nicht die Innenseite der Kappe oder ein Rohr, und haben das Thema spucken 2,5 ml Speichel in die Pufferlösung. Hinweis: Das Sammeln von mehr als 2,5 ml Speichel können Probenabbau von einem unzureichenden Verhältnis von DNA-Probe, um Stabilisierungspuffer führen. Sammeln zu wenig Speichel erwarteten Erträge aus dem Protokoll zu reduzieren. Um Sammelmengen auswerten, die Ziffern Steigungen auf der Seite von Ter Rohr. </li><li> Die Schutzkappe und mischen durch Umdrehen, bis die Mischung homogenisiert. Heftiges Schütteln ist nicht notwendig. Lagern Sie die Proben bei Raumtemperatur für die kurzzeitige Lagerung oder 4 ° C für die Langzeitlagerung (&gt; 3 Monate). </li></ol> 2. Erste Vorbereitungen und Zell-Lyse <ol><li> Vor Beginn der Extraktion, Hitze ein Wasserbad auf 37 ° C, und bereiten einem Eimer Eis. Drei 15 ml konischen Zentrifugenröhrchen wird für jeden extrahierten Probe benötigt. Die drei Röhren wird verwendet, um die Zelle und Proteinpellet, die endgültige extrahiert gDNA und das Isopropanol und Ethanol-Überstände zu halten. </li><li> Abrufen Proben von Lagerung und Invertzucker Proben mehrmals dann Wirbel bei mittlerer Geschwindigkeit für 15 Sekunden. </li><li> Verzichten 2,5 ml Probe in ein sauberes 15 ml Zentrifugenröhrchen und 5 ml Zell-Lyse-Lösung. Die Probe 50-mal durch Inversion, und Inkubation bei RT für 30 min. </li></ol> 3. Entfernen RNA <ol><li> Dann werden 40 ul RNase A Solution bei 100 mg / ml, und bei 37 ° C für 15 min. </li><li> Entfernen Sie die Probe aus dem 37 ° C warmen Wasserbad und kühlen auf Eis für 3 min. <ol><li> Nach der RNase A Inkubation wird die Temperatur des Wasserbades auf 65 ° C für die DNA Rehydratisierung Schritt des Protokolls. </li></ol></li></ol> 4. Protein und Lipidentfernung <ol><li> Dann werden 50 ul Proteinase K-Lösung bei 20 mg / ml, Mischung mehrfach durch Umdrehen und inkubiert bei Raumtemperatur für mindestens 30 min. Hinweis: Dies ist eine mögliche Pause Punkt für das Protokoll. Nach der Zugabe der Proteinase-K-Lösung, kann die Probe bei 4 ° C gelagert, bis die Extraktion abgeschlossen werden kann. Lagerung bei 4 ° C für bis zu 24 Stunden wurde nicht gezeigt, um eine signifikante Wirkung auf die Extraktionsausbeuten oder DNA-Qualität haben. Langfristige Lagerung in diesem Stadium noch nicht bewertet worden. </li><li> Fügen Sie 1,7 ml Protein Precipitation Lösung, Vortex kräftig für 20 Sekunden bei hoher Geschwindigkeit und auf Eis für 10 min. </li&gt; <li> Nachdem die Proben auf Eis für 10 min, Zentrifuge für 10 min bei 3.000 × g und 4 ° C abgekühlt. Die gefällten Proteine ​​bilden muss eine enge Pellet, um fortzufahren. Wenn das Pellet ist nicht dicht oder die Lösung ist immer noch bewölkt, können die Proben auf Eis für 5 min mehr gekühlt werden und Zentrifugation wiederholt. Die Proben sind auf Eis gehalten werden, um eine enge Pellet gewährleisten. </li></ol> 5. Isolierung und Aufreinigung von gDNA <ol><li> In einen sauberen 15 ml-Zentrifugenröhrchen, Pipetten 5 ml Isopropanol und 8 ul Glycogen reinen Lösung bei 20 mg / ml. </li><li> Gießen der Überstand, der gDNA aus Schritt 4.3 in das Rohr mit dem Isopropanol und Glykogen Lösung, wobei hinter dem ausgefällten Proteinpellet. Nachdem der Überstand wurde hinzugefügt, vorsichtig mischen die Probe 50-mal durch Umdrehen und Zentrifuge für 30 min bei 3.000 × g und 4 ° C liegt. </li><li> Gießen Sie den Überstand langsam in einen sauberen 15-ml-Tube. Nach Entfernen des Überstands, Zugabe von 1 ml 70% EthanolWaschen des Pellets langsam und sanft schaukel Bewegen des Ethanol über dem ausgefällten Pellet mehrmals. Bewahren Sie das Ethanol in die Röhre. </li><li> Nach der ersten Wäsche, Zentrifugieren Sie die Probe für 1 min bei 2.000 xg und 20 ° C. Dieser Zentrifugationsschritt kann entweder bei 4 ° C oder 20 ° C durchgeführt werden. Keine signifikante Wirkung der Temperatur für diesen Schritt hat sich gezeigt. </li><li> Nach der ersten Wäsche und Zentrifugation des Pellets, gießen Sie langsam den Ethanolwasch aus der Tube und entsorgen, dann eine zweite Wasch durch Wiederholen der Schritte 5.3 und 5.4. </li><li> Nach dem Entfernen des Überstands aus der zweiten Wasch Pellet an der Luft trocknen lassen für 15 Minuten. <ol><li> Wenn die Probe nicht vollständig getrocknet ist, an der Luft trocknen für weitere 15 min. </li></ol></li></ol> 6. Rehydrierung von gDNA <ol><li> Nachdem die Probe getrocknet werden 300 ul Tris-EDTA, das getrocknete Pellet gDNA rehydrieren. </li><li> Vortex die Probe für 5 Sekunden bei mittlerer Geschwindigkeit und in einen65 ° C heißen Wasserbad für 1 Stunde. </li><li> Entfernen Sie die Proben aus dem Wasserbad inkubiert und O / N bei RT. HINWEIS: Alle Produkte und Reagenzien sind in der Tabelle aufgeführten Materialien, sowie Tabelle 4. </li></ol>

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</ol>

The authors have nothing to disclose.

Das vorliegende Verfahren ist eine optimierte DNA-Extraktionsprotokoll, die deutlich verbesserte Ausbeute von hochmolekularer DNA im Vergleich zu Standardmethoden, ohne dabei DNA-Qualität. Der entscheidende Schritt mit der größten Wirkung auf den Ertrag die meisten war Schritt 5.2, die eine längere Zentrifugation Schritt während Ethanol-Fällung als jeder veröffentlichten Protokoll hier, überprüft mit einer Ausnahme, die nicht weit verbreitet war 11 umfasst. Keine Änderungen in der DNA-Qualität mit dieser längeren Zentrifugation zugeordnet wurden nachgewiesen, was anzeigt, dass die meisten der verfügbaren DNA aus Gesamtspeichelsammlung nicht verschlechtert und hohem Molekulargewicht. Gesamtspeichelsammlung hat Einschränkungen in der Probenqualität wie das Potenzial für ausländische Verunreinigungen, die an der Sammelphase minimiert werden muss, und die Anwesenheit von übermäßigen Protein in der Probe, die ein Zeichen einer zugrunde liegenden Infektion sein kann. Große Mengen an Protein oder ausländische Verunreinigungenbleiben in der letzten extrahierten DNA, wodurch die Quantifizierung ungenau machen. Wenn es Restproteine ​​oder Verunreinigungen nach Rehydrierung (Schritt 6) stehen im Verdacht, eine Probe aufräumen kann, indem man bei der Proteinfällung Schritt mit Reagenzienvolumina skaliert, um die Eingangslautstärke widerspiegeln Probe durchgeführt werden. Eine weitere Beschränkung des Protokolls ist die Länge der Zeit, die erforderlich ist, die Schritte durchzuführen. Mehrere Proben können parallel ausgeführt werden; Allerdings empfiehlt es sich, nicht mehr als 24 parallel Extraktionen gleichzeitig ausgeführt werden. Dies ist besonders wichtig für das Protein-Fällungsschritt, in dem die Probe kalt, um einen festen Pellets und laufen mehr als 24 Proben können Pellets Zeit wieder in Lösung zu ermöglichen sicherzustellen bleiben. Die hier vorgestellte Protokoll ist die kostengünstigste Methode betrachtet (siehe Tabelle 3). Während dieses Protokolls macht Verwendung von Reagenzien aus dem Puregene Extraction Kit, ein kleineres Volumen als in dem Puregene-Protokoll verwendet wird empfohlenohne Beeinträchtigung Extraktionsausbeute und es ist diese Verringerung Reagenzien, die Kosteneinsparungen in Bezug auf die Protokoll antreibt. Beachten Sie, dass die berechneten Kosten für die Extraktion verwendet den Listenpreis für jeden Artikel und nicht eventuelle Rabatte wider. Die Kosten pro Extraktion mit dem optimierten Protokoll kann weiter mit Großaufträgen oder Rabatte durch Unternehmen Vertriebsmitarbeiter reduziert werden. Beweis ist ebenfalls enthalten, dass dieses Protokoll ist für die Verwendung mit der nächsten Generation Sequenzierung. Die erhaltenen Daten liefert einen weiteren Beweis für die Nützlichkeit von Speichelproben für menschliche genetische Forschung in vielen Krankheiten, bei denen Blut nicht routinemäßig verfügbar. Während Blut-und DNA-Zelllinie ist weiterhin die bevorzugte Quelle von genetischen Ressourcen für die Prüfung zu sein, ist ganze Speichelentnahme eine Alternative, wenn solche Quellen nicht verfügbar, nicht verfügbar ist oder unpraktisch, wenn die Aufnahme von Patienten wird durch ihre Sammlung oder Aderlass betroffen.

Erzielen hoher Qualität für die menschliche DNA genetische Studien ist wichtig, in der Krankheit Gen Entdeckungsprozess. Blut, obwohl erfordern ein invasives Verfahren und auch teurer als Speichelsammlung wird zum Erzeugen immortalisierter Zelllinien als eine unendliche Quelle von DNA oder iPSCs für funktionelle Studien bevorzugt, und manchmal Blut-DNA wird verwendet, wenn Zelllinien nicht vorhanden sind. , Blutgewinnung erfordert jedoch eine ausgebildete phlebotomist und Blut eine kürzere Halbwertszeit als Speichel 1 hat. DNA aus Speichel ist weniger teuer und leichter zu erhalten, da sie gesammelt und durch die Mail ohne die Notwendigkeit für eine Blutentnahme, wodurch die Versuchsperson Bäder weit über den Einzugsbereich der Krankenhäuser und Laboratorien 2. Studienaufnahme kann verbessert werden, wenn die Probanden die Möglichkeit zu geben eine Speichelprobe statt Blut 3, 4. Können Bedenken hinsichtlich der Quantität und Qualität der DNA aus dem Speichel seine weit verbreitete uns eingeschränkt habenTrotz zahlreicher Studien neueren Studien, die die Eignung der gesamte Speichel, mit einem Durchschnitt von 4,3 x 10 5 Zellen pro Milliliter, zum DNA-Test gegenüber den älteren Tupfern Verfahren, die signifikante Mengen an Speichel 2, 3, 4, 5 nicht erhalten hat e, 6. Während eine bescheidene Literatur existiert, die die Eignung der Gesamtspeichel abgeleiteten DNA für die Genotypisierung Anwendungen wie Microarray-basierte Methoden 8, 9, 10, keine Studien haben untersucht, Next Generation Sequencing (NGS). Das Ziel für die Optimierung dieses ganze Speichel DNA Extraktionsprotokoll war es, Menge und Qualität für Anwendungen in der Genetik einer kosteneffektiven Weise, die leicht in Labore mit gemeinsamen Reagenzien und Verbrauchsmaterialien umgesetzt zu maximieren. DNA-Extraktion aus Speichel erfordert mehrere Verfahren: 1) Sammlung und Lagerung, 2) Zell-Lyse, 3) RNase-Behandlung, 4) Proteinfällung, 5) Ethanol-Fällung, 6) DNA Rehydrierung. Die DNA-Stabilisierungspuffer-Lösung, beschriebenvorher 2, Funktionen angemessen unverändert. Kein Versuch zur Optimierung der RNase-Behandlung und DNA Rehydratisierung Schritte wurde. Für jeden weiteren Schritt wurden mehrere Variablen, die Rendite auswirken könnten identifiziert. Jede Variable wurde einzeln manipuliert und Verbesserung der Ausbeute und Qualität wurde statistisch ausgewertet. Für Variablen, die gezeigt wurden, um die Ausbeute und / oder DNA-Qualität zu verbessern, wurden die optimalen Werte in der letzten Protokoll enthalten.

<table><tbody><tr><td>15 ml Centrifuge Tubes</td><td>Fisher</td><td>12-565-268</td><td></td></tr><tr><td>Cell Lysis Solution</td><td>Qiagen</td><td>158908</td><td></td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>Sigma</td><td>P6556</td><td></td></tr><tr><td>Protein Precipitation Solution</td><td>Qiagen</td><td>158912</td><td></td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>Fisher</td><td>A416-4</td><td></td></tr><tr><td>Glycogen</td><td>EZ-BioResearch</td><td>S1003</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td>Fisher</td><td>04-355-305</td><td></td></tr><tr><td>Tris-EDTA (TE)</td><td>Fisher</td><td>BP2473-1</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Fisher</td><td>AC194090010</td><td></td></tr><tr><td>Tris HCl</td><td>Fisher</td><td>BP1757-100</td><td></td></tr><tr><td>EDTA (0.5 M) Solution</td><td>Fisher</td><td>03-500-506</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Dodecyl Sulfate</td><td>Fisher</td><td>BP166-100&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Analog Vortex Mixer</td><td>Fisher</td><td>02-215-365</td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge 5810R</td><td>Eppendorf</td><td>5811 000.010</td><td></td></tr></tbody></table>

collection and extraction of saliva dna for next generation sequencing

The preferred source of DNA in human genetics research is blood, or cell lines derived from blood, as these sources yield large quantities of high quality DNA. However, DNA extraction from saliva can yield high quality DNA with little to no degradation/fragmentation that is suitable for a variety of DNA assays without the expense of a phlebotomist and can even be acquired through the mail. However, at present, no saliva DNA collection/extraction protocols for next generation sequencing have been presented in the literature. This protocol optimizes parameters of saliva collection/storage and DNA extraction to be of sufficient quality and quantity for DNA assays with the highest standards, including microarray genotyping and next generation sequencing.

Um die optimalen Parameter zu bestimmen für die DNA-Extraktion eine Reihe von gepaarten DNA-Extraktionen durchgeführt wurde. Eine einzelne Speichelprobe wurde aufgeteilt, und jede Portion mit einem von zwei möglichen Werten für eine bestimmte Variable getestet. Mindestens acht Wiederholungen jeder gepaarten Test durchgeführt (beispielsweise wurde ein einzelner Speichelprobe aliquotiert, um die Extraktion mit oder ohne anfängliche 50 ° C Inkubation Test). Gesamt-DNA-Ausbeute, die 260/280 Wert, desto 260/230 Wert und Sichtprüfung der Elektrophorese DNA, um die Fragmentierung zu bewerten: Optimierung wurde auf vier Standard-Metriken. Nicht alle möglichen Kombinationen der Variablen wurden statistische Interaktionen bewertet (N = 169 Kombinationen), sich stattdessen um den marginalen Effekt der einzelnen Variablen einzeln zu bewerten. Effekte wurden mit einer Mehrwege-wiederholte Messungen ANOVA getestet und geschätzten Effekte wurden aus dem Ersatzregressionsgleichung abgeleitet. Alle wichtigen Effekte sind in Tabelle 1 zusammengefasst, wie aver gezeigtAlter Renditeänderung (ng / ul pro ml Speichel-Eingang) oder DNA-Qualität (260/280 260/230 und). Zell-Lyse (Schritt 2) wurde durch Beurteilung optimiert: 1) die Anwesenheit / Abwesenheit einer 50 ° C inkubiert (1 h) vor der Lyse der Zelle, um sicherzustellen, daß Proteinase K Abbau und Zelllyse durch den Speicherpuffer vermittelte vollständig abgelaufen war, 2 ) Gegenwart / Abwesenheit einer Homogenisierung durch Vortex-Schritt (mittlere Geschwindigkeit, 15 sec), und 3) Lyselösung Inkubationszeit (5 gegenüber 30 Minuten). Die 30 min Inkubation Zelllyse erhöhten Ertrag von durchschnittlich 3,5% (p &lt;.01), aber keine anderen Zelllyse variable hatte einen signifikanten Effekt auf den Ertrag. Vortexen verringerte die 260/280 Verhältnis durch eine statistisch signifikante (p &lt;.001), jedoch praktisch kleiner 0,03. Proteinfällung (Schritt 4) wird durch Proteinase K Verdauung voraus, um Aminosäureketten stören, die Verbesserung der Effizienz der Proteinfällung und Loslassen gefangen DNA. Die Höhe der Proteinase K variiert wurde das Zehnfache.Zentrifugation Temperatur von 20 ° C bis 4 ° C reduziert. Erhöhung der Menge der Proteinase K verursachte eine statistisch signifikante Abnahme in der Ausbeute (8,7%) und auch leicht verbessert sowohl die 260/280 und 260/230 Verhältnissen. Ethanol-Fällung (Schritt 5) die letzte Stufe des Protokolls untersucht. Die Menge an Glykogen Träger (0, 8 ul) wurde variiert, ebenso wie die Gesamtzeit Zentrifugation (5 min 11 gegenüber 30). Nur Zentrifugation Zeit wesentlich beeinflusst Ertrag, mit einer durchschnittlichen Zunahme von 290%. Je länger Spin reduzierte auch die 260/280 Quote leicht (0,05). In den Versuchen wurde keine signifikante Wirkung auf die Ausbeute von Glykogen beobachtet; Obwohl die Gesamtmenge an DNA in diesen Extraktionen war so groß, dass Glykogen nicht typischerweise verwendet werden. Trotz der fehlenden Wirkung in diesen Proben, ist es immer noch empfehlen, Glykogen zu verwenden, um das Risiko von Ertragseinbußen zu minimieren, wenn Speichel Eingangslautstärke niedriger als hier, oder wenn ther gegeben iste ist aus einem anderen Grund zu glauben, Ertrag gering. Sichtkontrolle der repräsentativen DNA-Proben (Figur 1) angedeutet, dass die extrahierte DNA wurde nicht wesentlich für jede Speichel DNA-Extraktionsverfahren fragmentiert, sondern zeigten einen geeigneten hochmolekularen Bande ohne Verschmieren anzeigt abgebaute DNA. Nach RNase A Verdauung, erzeugt das Protokoll eine durchschnittliche 260/280 von 1,74. <img alt="Figur 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51697/51697fig1highres.jpg" width="500" /> Abbildung 1. Qualität der Speichel stammende DNA. Vier Extraktionsverfahren wurden der gleichen Speichelentnahme angewandt. (A) Die Proben wurden auf einem 0,8% igen Agarose-Gel (250 ng DNA) elektrophoresiert. Alle Variationen der Speichel DNA Extraktionsprotokolle führen zu hohen Molekulargewichts (&gt; 20 kb) DNA, ohne Anzeichen von Zersetzung. Lane: 1 DNA laddeR, 2 und 3 Oragene Prepit L2P Protokoll Proben 4 und 5 Gentra Puregene Körperflüssigkeiten Protocol, 6 und 7 die optimierte Protokoll ohne RNA-Entfernungsschritt, 8 und 9 der optimierten Protokolls mit der Entfernung von RNA Schritt. Spuren 2-7 sind direkt analog Protokolle auf den gleichen Speichelproben. Spuren 8 und 9 zeigen, dass die RNA-Entfernungsstufe nicht DNA-Abbau vorstellen. (B) Die Proben wurden auf einem 2% Agarosegel (150 ng DNA) elektrophoresiert. Eine leichte RNA Spitzen beobachtbar ist in der Nähe der Unterseite des Gels in den Spuren 2 bis 7 (Konventionen wie oben). Spuren 8 und 9 zeigen die Wirksamkeit der RNA-Entfernungsstufe. Die RNA-Entfernungsschritt (Schritt 3 mit RNase A) ist kritisch für eine genaue Quantifizierung der DNA. Während des Tests wurde konstant hohen RNA-Gehalt beobachtet wurde, wie durch das Verhältnis von doppelsträngiger DNA von RNA durch ein Qubit 2,0 Fluorometer bestimmt. Im Durchschnitt Nukleinsäuregehalt von Proben ohne RNase A Behandlung bestand aus 46,6% (± 0,4) RNA. Proben, die die RNA-Entfernungsstufe als &quot;&lt;20 ng / ml&quot;, die die niedrigste mögliche Lesart für die RNA-Erkennung das Qubit ist zu lesen unterzog. Die durch diese optimierten Protokoll erhaltenen DNA war von ausreichender Qualität für Hochdurchsatz-Sequenzierung, wenn die zusätzliche RNase A Schritt aufgebracht wurde. Gezielte Resequenzierung Daten zu erreichen, wurde eine individuelle Agilent Sureselect Ziel Enrichment Kit zu 24 Proben angewandt, Targeting 2.6 Mb von Sequenz. Hochdurchsatz-Sequenzierung wurde am 12. mit Strichcode (indexiert) Proben pro Bahn durchgeführt. Folge liest wurden dem Referenzgenom HG19 12-BWA ausgerichtet ist, dann Anwendung GATK 13 Basisqualitätsfaktor Rekalibrierung Indel Neuausrichtung, Duplikate entfernen, SNP Genotypisierung Entdeckung und gleichzeitig in allen 24 Proben wurde mit Hilfe des Best-Practice-Festfilterparameterwerte 14. Alle 24 Proben ergaben hohe Qualität NGS-Daten (Tabelle 2). Der liest, dass geben IlluMina Standardfiltern und hatte Q&gt; 20, 91,4% auf die Sequenzanreicherung Zielregionen ausgerichtet und bietet eine durchschnittliche on-Zielabdeckung Tiefe von&gt; 30x Abdeckung bei Q&gt; 100, auch innerhalb der notwendigen Grenzen für seltene SNP Entdeckung in jeder Probe. Die durchschnittliche Strang Bilanz war 49,9%. Vergleich Variante Anrufe mit Illumina-Microarray-Genotypen ergab eine Übereinstimmung von 98,9%. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="352"><tbody><tr><td> Kandidat Variable </td><td> ng / ul </td><td> 260/280 </td><td> 260/230 </td></tr><tr><td> Wirbel </td><td> ns </td><td> -0.03 *** </td><td> ns </td></tr><tr><td> x30 min Cell Lysis Incubation </td><td> 3,5% ** </td><td> ns </td><td> ns </td></tr><tr><td> Proteinase K x10 </td><td> -8.7% * </td><td> -0.05 *** </td><td> -0.03 *** </td></tr><tr><td> 30 min Schleuder </td><td> 290,2%*** </td><td> -0.05 *** </td><td> ns </td></tr><tr><td> Glykogen </td><td> ns </td><td> ns </td><td> -0.37 *** </td></tr></tbody></table> Tabelle 1. Wirkung Größe der optimierten Variable auf Menge / Quality Metrics. Alle Effektstärken sind in den in der Spaltenüberschrift aufgeführten Einheiten. p-Werte aus ANOVA: * p &lt;.05; ** P &lt;.01; *** P &lt;.001; ns nicht signifikant <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="176"><tbody><tr><td> Qualitätsmetrik </td><td> Wert </td></tr><tr><td> Ziellänge </td><td> 1.708 kb </td></tr><tr><td> Zieldachte&gt; 30x </td><td> 85.22% </td></tr><tr><td> SNPs in dbSNP </td><td> 92.55% </td></tr><tr><td> Array Vereinbarung </td><td> 98.99% </td></tr></tbody></table> Tabelle 2. Qualität der Hochdurchsatz-Sequenz von Target Enrichment. <table border = &quot;0&quot; cellpadding = &quot;0&quot; cellspacing = &quot;0&quot; width = &quot;668&quot;&gt; <tbody><tr><td rowspan="14"> Neue optimierte Protokoll </td><td> Artikel </td><td> Verteiler </td><td> Katalog # </td><td> Kauf Einheit </td><td> Kosten / Einheit </td><td> Kosten / Sammlung </td></tr><tr><td> 15 ml Zentrifugenröhrchen </td><td> Fischer </td><td> 12-565-268 </td><td> 500 Tubes </td><td> 233,50 $ </td><td> 3,2690 $ </td></tr><tr><td> Zell-Lyse-Lösung </td><td> Qiagen </td><td> 158.908 </td><td> 1 L </td><td> 401,00 $ </td><td> 3,2080 $ </td></tr><tr><td> Proteinase K </td><td> Sigma </td><td> P6556 </td><td> 1 g </td><td> 713,00 $ </td><td> 1,5686 $ </td></tr><tr><td> Proteinfällung Lösung </td><td> Qiagen </td><td> 158.912 </td><td> 350 ml </td><td> $ 350,00 </td><td> 2,7200 $ </td></tr><tr><td> Isopropanol </td><td> Fischer </td><td> A416-4 </td><td> Bei 4 x 4 L </td><td> 486,71 $ </td><td> 0,2434 $ </td></tr><tr><td> Glycogen-Lösung (20 mg / ml) </td><td> EZ-BioResearch </td><td> S1003 </td><td> 1 ml </td><td> 51,00 $ </td><td> 0,8160 $ </td></tr><tr><td> 70% Ethanol </td><td> Fischer </td><td> 04-355-305 </td><td> Bei 4 x 1 Gallone. </td><td> 123,03 $ </td><td> 0,0325 $ </td></tr><tr><td> Tris-EDTA (TE) </td><td> Fischer </td><td> BP2473-1 </td><td> 1 L </td><td> 68,67 $ </td><td> 0,0412 $ </td></tr><tr><td> NaCl </td><td> Fischer </td><td> AC194090010 </td><td> 1 kg </td><td> 34,65 $ </td><td> $ 0.000004 </td></tr><tr><td> Tris-HCl </td><td> Fischer </td><td> BP1757-100 </td><td> 100 ml </td><td> 57,84 $ </td><td> 0,0116 $ </td></tr><tr><td> EDTA (0,5 M) Lösung </td><td> Fischer </td><td> 03-500-506 </td><td> 100 ml </td><td> 33,60 $ </td><td> 0,0134 $ </td></tr><tr><td> Natrium DodAcyl-Sulfat </td><td> Fischer </td><td> BP166-100 </td><td> 100 g </td><td> 59,95 $ </td><td> 0,0060 $ </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td> Gesamtkosten </td><td> 11,93 $ </td></tr><tr><td rowspan="8"> Oragene </td><td> Artikel </td><td> Verteiler </td><td> Katalog # </td><td> Kauf Einheit </td><td> Kosten / Einheit </td><td> Kosten / Sammlung </td></tr><tr><td> 15 ml Zentrifugenröhrchen </td><td> Fischer </td><td> 12-565-268 </td><td> 500 Tubes </td><td> 233,50 $ </td><td> 0,9340 $ </td></tr><tr><td> 100% Ethanol </td><td> Fischer </td><td> BP2818-100 </td><td> 100 ml </td><td> 34,29 $ </td><td> 1,6459 $ </td></tr><tr><td> 70% Ethanol </td><td> Fischer </td><td> 04-355-305 </td><td> Bei 4 x 1 Gallone. </td><td> 123,03 $ </td><td> 0,0081 $ </td></tr><tr><td> Tris-EDTA (TE) </td><td> Fischer </td><td> BP2473-1 </td><td> 1 L </td><td> 68,67 $ </td><td> 0,0687 $ </td></tr><tr><td> 1,5-ml-Röhrchen </td><td> Genesee </td><td> 22-281A </td><td> 500 Tubes </td><td> 22,85 $ </td><td> 0,0457 $ </td></tr><tr><td> Oragene Collection Kit </td><td> Oragene </td><td> OG-500 </td><td> 1 </td><td> 25,00 $ </td><td> 25,00 $ </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td> Gesamtkosten </td><td> 27,70 $ </td></tr><tr><td rowspan="14"> Puregene </td><td> Artikel </td><td> Verteiler </td><td> Katalog # </td><td> Kauf Einheit </td><td> Kosten / Einheit </td><td> Kosten / Sammlung </td></tr><tr><td> 15 ml Zentrifugenröhrchen </td><td> Fischer </td><td> 12-565-268 </td><td> 500 Tubes </td&gt; <td> 233,50 $ </td><td> 0,9340 $ </td></tr><tr><td> Zell-Lyse-Lösung </td><td> Qiagen </td><td> 158.908 </td><td> 1 L </td><td> 401,00 $ </td><td> 4,0100 $ </td></tr><tr><td> Proteinase K </td><td> Qiagen </td><td> 158918 </td><td> 650 ml </td><td> 73,10 $ </td><td> 7,8723 $ </td></tr><tr><td> Proteinfällung Lösung </td><td> Qiagen </td><td> 158.912 </td><td> 350 ml </td><td> $ 350,00 </td><td> 4,0000 $ </td></tr><tr><td> Isopropanol </td><td> Fischer </td><td> A4164 </td><td> Bei 4 x 4 L </td><td> 486,71 $ </td><td> 0,3650 $ </td></tr><tr><td> Glykogen-Lösung </td><td> Qiagen </td><td> 158930 </td><td> 500 ml </td><td> 64,30 $ </td><td> 2,5720 $ </td></tr><tr><td> 70% Ethanol </td><td> Fischer </td><td> 04-355-305 </td><td> Bei 4 x 1 Gallone. </td><td> 123,03 $ </td><td> 0,0975 $ </td></tr><tr><td> DNA-Trinklösung </td><td> Qiagen </td><td> 158.914 </td><td> 100 ml </td><td> 69,80 $ </td><td> 0,1396 $ </td></tr><tr><td> NaCl </td><td> Fischer </td><td> AC19409-0010 </td><td> 1 kg </td><td> 34,65 $ </td><td> $ 0.000004 </td></tr><tr><td> Tris-HCl </td><td> Fischer </td><td> BP1757-100 </td><td> 100 ml </td><td> 57,84 $ </td><td> 0,0116 $ </td></tr><tr><td> EDTA (0,5 M) Lösung </td><td> Fischer </td><td> 03-500-506 </td><td> 100 ml </td><td> 33,60 $ </td><td> 0,0134 $ </td></tr><tr><td> Natriumdodecylsulfat </td><td> Fischer </td><td> BP166-100 </td><td> 100 g </td><td> 59,95 $ </td><td> 0,0060 $ </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td> Gesamtkosten </td><td> 19,99 $ </td></tr></tbody></table> Tabelle 3. Kostenvergleich der optimierten Protokoll, um DNA aus 2 ml Voll Speichel mit anderen kommerziell verfügbaren Protokolle zu extrahieren. All Reagenzien und Verbrauchsmaterialien für die DNA-Extraktion erforderlich wurden mit Standard-Listenpreise im Internet zum 30. September verfügbar beurteilt, 2013 Hinweis, dass dieses Protokoll wird geschrieben, um DNA von 1,25 ml Voll Speichel (extrahieren dh 2,5 ml Speichel und Puffer , siehe Schritt 2.3), da dieser Wert entspricht der Hälfte des gesamten Volumens im Speichel Sammelröhrchen. Für die Kostenvergleich wurden 2 ml gewählt, da dies die Menge mit einem gemeinsamen im Handel erhältlichen Kits (Oragene) zugeordnet ist. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="264"><tbody><tr><td colspan="3"> DNA Stabilisierungspuffer (250 ml) </td></tr><tr><td> Komponente </td><td> Volumen (ml) </td><td> [Finale] </td></tr><tr><td> 1 M NaCl </td><td> 1.461 g </td><td> 0,1 M </td></tr><tr><td> Tris-HCl </td><td> 2.5 </td><td> 0,01 M </td></tr><tr><td> 0,5 M EDTA </td><td> 5 </td><td> 0,01 M </td></tr><tr><td> 10% SDS </td><td> 12,5 &lt;/ Td&gt; <td> 0,014 M </td></tr><tr><td> Proteinase-K-Lösung (20 mg / ml) </td><td> 2.5 </td><td> 6.92x10 -6 M </td></tr><tr><td> ddH2O </td><td> 227,5 </td><td></td></tr><tr><td colspan="3"> Proteinase-K-Lösung (20 mg / ml) </td></tr><tr><td> Komponente </td><td> Volumen (ml) </td><td> [Finale] </td></tr><tr><td> Proteinase K Pulver </td><td> 500 mg </td><td> 6.92x10 -4 M </td></tr><tr><td> ddH2O </td><td> 25 </td><td></td></tr><tr><td colspan="3"> 70% Ethanol (500 ml) </td></tr><tr><td> Komponente </td><td> Volumen (ml) </td><td> [Finale] </td></tr><tr><td> Ethanol 95% </td><td> 368,5 </td><td> 12.63 M </td></tr><tr><td> ddH2O </td><td> 131,5 </td><td></td></tr></tbody></table> Tabelle 4. Rezepte für Reagenzien.

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Collection and Extraction of Saliva DNA for Next Generation Sequencing

DNA extraction from saliva can provide a readily available source of high molecular weight DNA, with little to no degradation/fragmentation. This protocol provides optimized parameters for saliva collection/storage and DNA extraction to be of sufficient quality and quantity for downstream DNA assays with high quality requirements.

Sammlung und Extraktion von DNA-Speichel für Next Generation Sequencing

The preferred source of DNA in human genetics research is blood, or cell lines derived from blood, as these sources yield large quantities of high quality ...

collection-and-extraction-of-saliva-dna-for-next-generation-sequencing

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

39.2K Aufrufe.  The Research Institute at Nationwide Children's Hospital. DNA extraction from saliva can provide a readily available source of high molecular weight DNA, with little to no degradation/fragmentation. This protocol provides optimized parameters for saliva collection/storage and DNA extraction to be of sufficient quality and quantity for downstream DNA assays with high quality requirements.

Serie: Collection and Extraction of Saliva DNA for Next Generation Sequencing

Metagenomic Analysis of Silage

Metagenomics is defined as the direct analysis of deoxyribonucleic acid (DNA) purified from environmental samples and enables taxonomic identification of the microbial communities present within them. Two main metagenomic approaches exist; sequencing the 16S rRNA gene coding region, which exhibits sufficient variation between taxa for identification, and shotgun sequencing, in which genomes of the organisms that are present in the sample are analyzed and ascribed to "operational taxonomic units"; species, genera or families depending on the extent of sequencing coverage. 
In this study, shotgun sequencing was used to analyze the microbial community present in cattle silage and, coupled with a range of bioinformatics tools to quality check and filter the DNA sequence reads, perform taxonomic classification of the microbial populations present within the sampled silage, and achieve functional annotation of the sequences. These methods were employed to identify potentially harmful bacteria that existed within the silage, an indication of silage spoilage. If spoiled silage is not remediated, then upon ingestion it could be potentially fatal to the livestock.

Metagenomics was used to investigate the microbiome of silage cattle feed. Analysis was performed by shotgun sequencing. This approach was used to characterize the composition of the microbial community within the cattle feed.

Metagenomanalyse von Silage

Metagenomics is defined as the direct analysis of deoxyribonucleic acid (DNA) purified from environmental samples and enables taxonomic identification of ...

Forschung

Genetik

Automated Gel Size Selection to Improve the Quality of Next-generation Sequencing Libraries Prepared from Environmental Water Samples

Next-generation sequencing of environmental samples can be challenging because of the variable DNA quantity and quality in these samples. High quality DNA libraries are needed for optimal results from next-generation sequencing. Environmental samples such as water may have low quality and quantities of DNA as well as contaminants that co-precipitate with DNA. The mechanical and enzymatic processes involved in extraction and library preparation may further damage the DNA. Gel size selection enables purification and recovery of DNA fragments of a defined size for sequencing applications. Nevertheless, this task is one of the most time-consuming steps in the DNA library preparation workflow. The protocol described here enables complete automation of agarose gel loading, electrophoretic analysis, and recovery of targeted DNA fragments. 
In this study, we describe a high-throughput approach to prepare high quality DNA libraries from freshwater samples that can be applied also to other environmental samples. We used an indirect approach to concentrate bacterial cells from environmental freshwater samples; DNA was extracted using a commercially available DNA extraction kit, and DNA libraries were prepared using a commercial transposon-based protocol. DNA fragments of 500 to 800 bp were gel size selected using Ranger Technology, an automated electrophoresis workstation. Sequencing of the size-selected DNA libraries demonstrated significant improvements to read length and quality of the sequencing reads.

This manuscript describes an automated gel size selection approach for purifying DNA fragments for next-generation sequencing. The Ranger Technology provides complete automation of the entire process of agarose gel loading, electrophoretic analysis, and recovery of targeted DNA fragments allowing for high-throughput and high quality next-generation sequencing libraries.

Automatisierte Gel Größenauswahl, um die Qualität der nächsten Generation Sequencing Libraries von Umweltwasserproben vorbereitet verbessern

Next-generation sequencing of environmental samples can be challenging because of the variable DNA quantity and quality in these samples. High quality DNA ...

Umwelt

Optimization and Comparative Analysis of Plant Organellar DNA Enrichment Methods Suitable for Next-generation Sequencing

Plant organellar genomes contain large, repetitive elements that may undergo pairing or recombination to form complex structures and/or sub-genomic fragments. Organellar genomes also exist in admixtures within a given cell or tissue type (heteroplasmy), and an abundance of subtypes may change throughout development or when under stress (sub-stoichiometric shifting). Next-generation sequencing (NGS) technologies are required to obtain deeper understanding of organellar genome structure and function. Traditional sequencing studies use several methods to obtain organellar DNA: (1) If a large amount of starting tissue is used, it is homogenized and subjected to differential centrifugation and/or gradient purification. (2) If a smaller amount of tissue is used (i.e., if seeds, material, or space is limited), the same process is performed as in (1), followed by whole-genome amplification to obtain sufficient DNA. (3) Bioinformatics analysis can be used to sequence the total genomic DNA and to parse out organellar reads. All these methods have inherent challenges and tradeoffs. In (1), it may be difficult to obtain such a large amount of starting tissue; in (2), whole-genome amplification could introduce a sequencing bias; and in (3), homology between nuclear and organellar genomes could interfere with assembly and analysis. In plants with large nuclear genomes, it is advantageous to enrich for organellar DNA to reduce sequencing costs and sequence complexity for bioinformatics analyses. Here, we compare a traditional differential centrifugation method with a fourth method, an adapted CpG-methyl pulldown approach, to separate the total genomic DNA into nuclear and organellar fractions. Both methods yield sufficient DNA for NGS, DNA that is highly enriched for organellar sequences, albeit at different ratios in mitochondria and chloroplasts. We present the optimization of these methods for wheat leaf tissue and discuss major advantages and disadvantages of each approach in the context of sample input, protocol ease, and downstream application.

The comparison and optimization of two plant organellar DNA enrichment methods are presented: traditional differential centrifugation and fractionation of the total gDNA based on methylation status. We assess the resulting DNA quantity and quality, demonstrate performance in short-read next-generation sequencing, and discuss the potential for use in long-read single-molecule sequencing.

Optimierung und Vergleichsanalyse von pflanzlichen organellaren DNA-Anreicherungsmethoden Geeignet für die Sequenzierung der nächsten Generation

Plant organellar genomes contain large, repetitive elements that may undergo pairing or recombination to form complex structures and/or sub-genomic ...

Sampling Human Indigenous Saliva Peptidome Using a Lollipop-Like Ultrafiltration Probe: Simplify and Enhance Peptide Detection for Clinical Mass Spectrometry

Although human saliva proteome and peptidome have been revealed 1-2 they were majorly identified from tryptic digests of saliva proteins. Identification of indigenous peptidome of human saliva without prior digestion with exogenous enzymes becomes imperative, since native peptides in human saliva provide potential values for diagnosing disease, predicting disease progression, and monitoring therapeutic efficacy. Appropriate sampling is a critical step for enhancement of identification of human indigenous saliva peptidome. Traditional methods of sampling human saliva involving centrifugation to remove debris 3-4 may be too time-consuming to be applicable for clinical use. Furthermore, debris removal by centrifugation may be unable to clean most of the infected pathogens and remove the high abundance proteins that often hinder the identification of low abundance peptidome.
Conventional proteomic approaches that primarily utilize two-dimensional gel electrophoresis (2-DE) gels in conjugation with in-gel digestion are capable of identifying many saliva proteins 5-6. However, this approach is generally not sufficiently sensitive to detect low abundance peptides/proteins. Liquid chromatography-Mass spectrometry (LC-MS) based proteomics is an alternative that can identify proteins without prior 2-DE separation. Although this approach provides higher sensitivity, it generally needs prior sample pre-fractionation 7 and pre-digestion with trypsin, which makes it difficult for clinical use. 
To circumvent the hindrance in mass spectrometry due to sample preparation, we have developed a technique called capillary ultrafiltration (CUF) probes 8-11. Data from our laboratory demonstrated that the CUF probes are capable of capturing proteins in vivo from various microenvironments in animals in a dynamic and minimally invasive manner 8-11. No centrifugation is needed since a negative pressure is created by simply syringe withdrawing during sample collection. The CUF probes combined with LC-MS have successfully identified tryptic-digested proteins 8-11. In this study, we upgraded the ultrafiltration sampling technique by creating a lollipop-like ultrafiltration (LLUF) probe that can easily fit in the human oral cavity. The direct analysis by LC-MS without trypsin digestion showed that human saliva indigenously contains many peptide fragments derived from various proteins. Sampling saliva with LLUF probes avoided centrifugation but effectively removed many larger and high abundance proteins. Our mass spectrometric results illustrated that many low abundance peptides became detectable after filtering out larger proteins with LLUF probes. Detection of low abundance saliva peptides was independent of multiple-step sample separation with chromatography. For clinical application, the LLUF probes incorporated with LC-MS could potentially be used in the future to monitor disease progression from saliva.

Considering saliva sampling for future clinical application, a lollipop-like ultrafiltration (LLUF) probe was fabricated to fit in the human oral cavity. Direct analysis of undigested saliva by NanoLC-LTQ mass spectrometry demonstrated the ability of LLUF probes to remove large proteins and high abundance proteins, and make low-abundant peptides more detectable.

Probenahme menschliche Speichel Indigene Peptidoms Mit einem Lollipop-Like Ultrafiltration Sonde: vereinfachen und erweitern Peptid-Erkennung für Klinische Massenspektrometrie

Although human saliva proteome and peptidome have been revealed 1-2 they were majorly identified from tryptic digests of saliva proteins. Identification ...

Medizin

Application of DNA Fingerprinting using the D1S80 Locus in Lab Classes

In biological sciences, DNA fingerprinting has been widely used for paternity testing, forensic applications and phylogenetic studies. Here, we describe a reliable and robust method for genotyping individuals by Variable Number of Tandem Repeat (VNTR) analysis in the context of undergraduate laboratory classes. The human D1S80 VNTR locus is used in this protocol as a highly polymorphic marker based on variation in the number of repetitive sequences.
This simple protocol conveys useful information for teachers and the implementation of DNA fingerprinting in practical laboratory classes. In the presented laboratory exercise, DNA extraction followed by PCR amplification is used to determine genetic variation at the D1S80 VNTR locus. Differences in the fragment size of PCR products are visualized by agarose gel electrophoresis. The fragment sizes and repeat numbers are calculated based on a linear regression of the size and migration distance of a DNA size standard.
Following this guide, students should be able to:
&#8226;&#160; Harvest and extract DNA from buccal mucosa epithelial cells 
&#8226;&#160; Perform a PCR experiment and understand the function of various reaction components 
&#8226;&#160; Analyze the amplicons by agarose gel electrophoresis and interpret the results 
&#8226;&#160; Understand the use of VNTRs in DNA fingerprinting and its application in biological sciences

Application of DNA Fingerprinting using the D1S80 Locus in Lab Classes

Here we describe a simple protocol to generate DNA fingerprinting profiles by amplifying the VNTR locus D1S80 from epithelial cell DNA.

Anwendung von DNA Fingerprinting mit dem D1S80 Locus in Laborklassen

In biological sciences, DNA fingerprinting has been widely used for paternity testing, forensic applications and phylogenetic studies. Here, we describe a ...

Use of a High-throughput In Vitro Microfluidic System to Develop Oral Multi-species Biofilms

There are few high-throughput in vitro systems which facilitate the development of multi-species biofilms that contain numerous species commonly detected within in vivo oral biofilms. Furthermore, a system that uses natural human saliva as the nutrient source, instead of artificial media, is particularly desirable in order to support the expression of cellular and biofilm-specific properties that mimic the in vivo communities. We describe a method for the development of multi-species oral biofilms that are comparable, with respect to species composition, to supragingival dental plaque, under conditions similar to the human oral cavity. Specifically, this methods article will describe how a commercially available microfluidic system can be adapted to facilitate the development of multi-species oral biofilms derived from and grown within pooled saliva. Furthermore, a description of how the system can be used in conjunction with a confocal laser scanning microscope to generate 3-D biofilm reconstructions for architectural and viability analyses will be presented. Given the broad diversity of microorganisms that grow within biofilms in the microfluidic system (including Streptococcus, Neisseria, Veillonella, Gemella, and Porphyromonas), a protocol will also be presented describing how to harvest the biofilm cells for further subculture&#160;or DNA extraction and analysis. The limits of both the microfluidic biofilm system and the current state-of-the-art data analyses will be addressed. Ultimately, it is envisioned that this article will provide a baseline technique that will improve the study of oral biofilms and aid in the development of additional technologies that can be integrated with the microfluidic platform.

Use of a High-throughput In Vitro Microfluidic System to Develop Oral Multi-species Biofilms

The goal of this methods paper is to describe the use of a microfluidic system for the development of multi-species biofilms that contain species typically identified in human supragingival dental plaque.&#160;Methods to describe biofilm architecture, biofilm viability, and an approach to harvest biofilm for culture-dependent or culture-independent analyses are highlighted.

Verwendung eines Hochdurchsatz-<em&gt; In-vitro-</em&gt; Mikrofluidik-System auf die mündliche Multi-Spezies-Biofilme entwickeln

There are few high-throughput in vitro systems which facilitate the development of multi-species biofilms that contain numerous species commonly detected ...

Biotechnik

Hybrid De Novo Genome Assembly for the Generation of Complete Genomes of Urinary Bacteria using Short- and Long-read Sequencing Technologies

Complete genome sequences provide valuable data for the understanding of genetic diversity and unique colonization factors of urinary microbes. These data may include mobile genetic elements, such as plasmids and extrachromosomal phage, that contribute to the dissemination of antimicrobial resistance and further complicate treatment of urinary tract infection (UTI). In addition to providing fine resolution of genome structure, complete, closed genomes allow for the detailed comparative genomics and evolutionary analyses. The generation of complete genomes de novo has long been a challenging task due to limitations of available sequencing technology. Paired-end Next Generation Sequencing (NGS) produces high quality short reads often resulting in accurate but fragmented genome assemblies. On the contrary, Nanopore sequencing provides long reads of lower quality normally leading to error-prone complete assemblies. Such errors may hamper genome-wide association studies or provide misleading variant analysis results. Therefore, hybrid approaches combining both short and long reads have emerged as reliable methods to achieve highly accurate closed bacterial genomes. Reported herein is a comprehensive method for the culture of diverse urinary bacteria, species identification by 16S rRNA gene sequencing, extraction of genomic DNA (gDNA), and generation of short and long reads by NGS and Nanopore platforms, respectively. Additionally, this method describes a bioinformatic pipeline of quality control, assembly, and gene prediction algorithms for the generation of annotated complete genome sequences. Combination of bioinformatic tools enables the selection of high quality read data for hybrid genome assembly and downstream analysis. The streamlined approach for the hybrid de novo genome assembly described in this protocol may be adapted for the use in any culturable bacteria.

Hybrid De Novo Genome Assembly for the Generation of Complete Genomes of Urinary Bacteria using Short- and Long-read Sequencing Technologies

This protocol details a comprehensive approach for the culturing, sequencing, and de novo hybrid genome assembly of urinary bacteria. It provides a reproducible procedure for the generation of complete, circular genome sequences useful in studying both chromosomal and extrachromosomal genetic elements contributing to urinary colonization, pathogenesis, and antimicrobial resistance dissemination.

Hybride De-Novo-Genomassemblierung zur Erzeugung vollständiger Genome von Harnbakterien unter Verwendung von Kurz- und Langzeitsequenzierungstechnologien

Complete genome sequences provide valuable data for the understanding of genetic diversity and unique colonization factors of urinary microbes. These data ...

Large-Scale SARS-CoV-2 Testing Utilizing Saliva and Transposition Sample Pooling

Identification and isolation of contagious individuals along with quarantine of close contacts, is critical for slowing the spread of COVID-19. Large-scale testing in a surveillance or screening capacity for asymptomatic carriers of COVID-19 provides both data on viral spread and the follow-up ability to rapidly test individuals during suspected outbreaks. The COVID-19 early detection program at Michigan State University has been utilizing large-scale testing in a surveillance or screening capacity since fall of 2020. The methods adapted here take advantage of the reliability, large sample volume, and self-collection benefits of saliva, paired with a cost-effective, reagent conserving two-dimensional pooling scheme. The process was designed to be adaptable to supply shortages, with many components of the kits and the assay easily substituted. The processes outlined for collecting and processing SARS-CoV-2 samples can be adapted to test for future viral pathogens reliably expressed in saliva. By providing this blueprint for universities or other organizations, preparedness plans for future viral outbreaks can be developed.

<meta charset="utf8"></head><body>Großflächige SARS-CoV-2-Tests mit Speichel und Transpositionsproben-Pooling

The protocol is intended to serve as a blueprint for universities and other organizations considering large-scale testing for SARS-CoV-2 or developing preparedness plans for future viral outbreaks.

Großflächige SARS-CoV-2-Tests mit Speichel und Transpositionsproben-Pooling

Identification and isolation of contagious individuals along with quarantine of close contacts, is critical for slowing the spread of COVID-19. ...

Combining Analysis of DNA in a Crude Virion Extraction with the Analysis of RNA from Infected Leaves to Discover New Virus Genomes

This metagenome approach is used to identify plant viruses with circular DNA genomes and their transcripts. Often plant DNA viruses that occur in low titers in their host or cannot be mechanically inoculated to another host are difficult to propagate to achieve a greater titer of infectious material. Infected leaves are ground in a mild buffer with optimal pH and ionic composition recommended for purifying most bacilliform Para retroviruses. Urea is used to break up inclusion bodies that trap virions and to dissolve cellular components. Differential centrifugation provides further separation of virions from plant contaminants. Then proteinase K treatment removes the capsids. Then the viral DNA is concentrated and used for next-generation sequencing (NGS). The NGS data are used to assemble contigs which are submitted to NCBI-BLASTn to identify a subset of virus sequences in the generated dataset. In a parallel pipeline, RNA is isolated from infected leaves using a standard column-based RNA extraction method. Then ribosome depletion is carried out to enrich for a subset of mRNA and virus transcripts. Assembled sequences derived from RNA sequencing (RNA-seq) were submitted to NCBI-BLASTn to identify a subset of virus sequences in this dataset. In our study, we identified two related full-length badnavirus genomes in the two datasets. This method is preferred to another common approach which extracts the aggregate population of small RNA sequences to reconstitute plant virus genomic sequences. This latter metagenomic pipeline recovers virus related sequences that are retro-transcribing elements inserted into the plant genome. This is coupled to biochemical or molecular assays to further discern the actively infectious agents. The approach documented in this study, recovers sequences representative of replicating viruses that likely indicate active virus infection.

Here we present a new approach to identify plant viruses with double-strand DNA genomes. We use standard methods to extract DNA and RNA from infected leaves and carry out next-generation sequencing. Bioinformatic tools assemble sequences into contigs, identify contigs representing virus genomes and assign genomes to taxonomic groups.

Kombination von Analyse von DNA in eine grobe Virion-Extraktion mit der Analyse der RNA aus den infizierten Blättern, entdecken neue Virus-Genom

This metagenome approach is used to identify plant viruses with circular DNA genomes and their transcripts. Often plant DNA viruses that occur in low ...

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Zusammenfassung

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Verwendung eines Hochdurchsatz-

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