The authors would like to acknowledge contributions from the entire Gereau Lab for manuscript editing. This work is supported by NINDS funds 1F31NS078852 to DSB and NINDS fund NS42595 to RWG.

Alle Mausprotokolle wurden in Übereinstimmung mit National Institutes of Health Leitlinien und wurden von der Tierstudien Ausschuss der Washington University School of Medicine (St. Louis, MO) zugelassen. 1. Vorbereitung der Testplatte und Gehäuse <ol><li> Reinigen Sie die Glasoberfläche. </li><li> Fixierung des T-Typ Faser Thermoelementsonde an der Oberfläche in der Mitte der Glasplatte mit Labor Band. </li><li> Legen Sie die Tiergehege auf der Glasplatte in einer Linie entlang der Mitte der Platte. </li><li> Schrauben Sie die Thermoelementsonde durch das Zentrum Tiergehege und stecken Sie in den Datenlogger. Drehen Sie den Datenlogger an, während Deaktivierung des Auto-Shutdown-Funktion, und befestigen Sie den Datenlogger an den Computer mit dem mitgelieferten Kabel. <ol><li> Wenn die Aufzeichnung der Plattentemperatur während des Experiments, öffnen Sie die Datenlogger-Software Aufnahme Plattentemperaturen zu beginnen. </li><li> Falls erforderlich, stellen Sie die Software neuKabel die Plattentemperatur einmal pro Sekunde. </li><li> Starten Sie die Aufnahme Temperaturen mit Hilfe der Software mit dem Thermodatenlogger verpackt. </li></ol></li><li> Trennen Sie das Gehäuse mit schwarzen Einsätzen, um visuelle Interaktion zwischen Mäusen verhindern. </li><li> Position unterhalb des Glasspiegel, so dass die Unterseite der Gehäuse aus einer bequemen Sitzposition sichtbar ist. </li></ol> 2. Erwärmung / Abkühlung der Glasplatte <ol><li> Füllen Aluboxen mit erwärmtem Wasser, nassem Eis oder Trockeneis und positionieren Sie sie angemessen auf die Glasplatte (Aluminiumfolie Pakete mit Trockeneis gefüllt können auch, um das Glas zu kühlen verwendet werden; Abbildung 1) 2. <ol><li> Für die Prüfung bei 30 ° C, positionieren Sie die Aluboxen etwa 0,25 &#39;&#39; von den Tiergehegen (2B) 2. <ol><li> Legen Sie einen beheizten Wasser Zirkulator auf beiden Seiten der Glasplatte. Stellen Sie den Thermostat auf 45 - 60 ° C, und unsE ist die Alu-Boxen mit einem stetigen Strom von heißem Wasser (1C) 2 zu füllen. </li><li> Positionieren Sie die Umwälzpumpen, dass das heiße Wasser aus den Aluboxen entwässert direkt zurück in das Reservoir des Thermostaten auf jeder Seite (Abbildung 1 C) 2. </li></ol></li><li> Für die Prüfung bei RT, lassen Sie die Felder leer (Abbildung 2) 2. </li><li> Für die Prüfung bei 17 ° C, stellen Sie die Boxen etwa 0,25 &#39;&#39; von den Tiergehegen auf beiden Seiten füllen und mit nassem Eis (Abbildung 2) 2. </li><li> Für die Prüfung bei 12 ° C, stellen Sie die Boxen etwa 1,25 &#39;&#39; von den Gehäusen zu beiden Seiten und füllen mit Trockeneis (Abbildung 2) 2. </li><li> Für die Prüfung bei 5 ° C, stellen Sie die Boxen etwa 0,25 &#39;&#39; von den Gehäusen zu beiden Seiten und füllen mit Trockeneis (Abbildung 2) 2.<ol><li> Beim Abkühlen des Glases mit Trockeneis, stellen Sie sicher, für eine ausreichende Belüftung, um CO 2 Aufbau im Raum zu verhindern. </li></ol></li></ol></li><li> Warten Sie, bis das Glas, um den gewünschten Temperaturbereich zu erreichen. </li><li> Fügen Sie die Maus, um die Gehäuse auf der Platte. ANMERKUNG: Eine Rauschgenerator verwendet werden, um Lärmbelästigungen zu verringern. </li><li> Warten Sie, bis die Mäuse zu akklimatisieren. HINWEIS: In unserer Einrichtung das dauert etwa 2,5 Stunden, aber das kann deutlich auf Basis von Tierhaltung und Umgangsbedingungen variieren. </li><li> Halten Sie das Glas auf dem gewünschten Temperaturbereich, indem sichergestellt wird, dass die Boxen voll von erwärmtem Wasser, nassem Eis oder Trockeneis gehalten. HINWEIS: Mit unserem Gerät müssen die Kisten mit Eis etwa jede 90 Minuten wieder aufgefüllt werden. HINWEIS: Für die 17 ° C Bedingung, ist es hilfreich, das meiste Wasser aus den Aluminium-Boxen durch die Ablauflöcher vor dem Nachfüllen mit Eis zu leeren. Dadurch wird die Temperatur besser, und pr stabilisierenVeranstaltungsüberlauf HINWEIS: Die genaue Höhe der Trockeneis wird saisonal variieren, aber in der Regel halten die Boxen mehr als ¼ voll über die gesamte Länge der Box wird die Temperatur konstant zu halten. </li></ol> 3. Prüfung der Mäuse bei Fest Temperaturen <ol><li> Außerhalb des Verhaltensraum, füllen einen Eiskübel etwa zur Hälfte mit Trockeneis. </li><li> Mit einem Hammer oder Gummihammer, quetschen Sie das Trockeneis zu einem feinen Pulver. HINWEIS: Durch Überladen des Eimer wird es schwierig, vollständig das Trockeneis zu Pulver zermalmen. </li><li> Mit einem geraden Rasierklinge oder einer Schere, schneiden Sie die Spitze einer 3-ml-Spritze. </li><li> Unter Verwendung einer 21 G Nadel, stoßen 3 Löcher auf gegenüberliegenden Seiten der Spritze (insgesamt 6 Löcher). HINWEIS: Diese Löcher werden den Druck durch Sublimation erzeugt verringern, während Zusammendrücken des Trockeneis. Der Cut-off-Spritze für mehrere Versuche wieder verwendet werden. </li><li> Nehmen Sie die Spritze, Trockeneis-Pulver und ein Hand Stoppuhr in die Verhaltensraum. </li><li> Füllen Sie die Spritze Kammer zur Hälfte mit Trockeneispulver. Halten Sie das Schnittende der Spritze vor einem flachen Gegenstand, und fest komprimieren das Pulver mit dem Kolben. Achtung; die Kunststoff-Kolben kann sich verbiegen oder brechen aus dem Druck. Wenn dies geschieht, ersetzen Sie den Kolben aus einer neuen Spritze. </li><li> Verlängern Sie die Spitze des Druck Trockeneis-Pellets über den Rand der Spritze. </li><li> Versuchsmäuse, die vollständig in Ruhe. <ol><li> Bei 30 ° C, 23 ° C und 17 ° C, Testmäuse, die alle 4 Pfoten auf dem Glas und nicht bewegen, aber nicht vollständig eingeschlafen 19. </li><li> Bei 12 ° C und 5 ° C, Testmäuse, die auf 2 oder 4 Pfoten Pfoten und nicht bewegen oder springen werden. </li></ol></li><li> Mit den Spiegel für Targeting, vorsichtig, aber fest drücken Sie die Flach Pellet bündig an der Glasoberfläche unter dem Maushinterpfote (1A) 2. Starten Sie den Handauslöser. </li><li> Stoppen Sie den Timer und nehmen Sie die Tablette, wenn die Maus bewegt sich weg von der gekühlten Glas. HINWEIS: Diese Rücklaufbewegung kann vertikal oder horizontal sein. <ol><li> Wenn die Maus bewegt sich nur kurz die Pfote und dann gibt es an der Kühlfläche, weiterhin Timing und anregend, bis die Maus macht eine dauerhafte Abkehr. Hinweis: Unser Labor verwendet eine maximale Anregung Zeit von 20 sec für Mäuse in der Mehrzahl der Fälle. </li></ol></li><li> Wiederholen Sie diesen Testverfahren bis mindestens 3 Werte auf jeder Pfote jedes Tieres gesammelt werden. Separate Studien testen gegen Pfoten auf der gleichen Maus um mindestens 7 min, und einen separaten aufeinanderfolgenden Studien auf eine einzelne Pfote um mindestens 15 min. </li><li> Falls erforderlich, mit verschiedenen Dicken von Glas an verschiedene Abkühlungsgeschwindigkeiten (Figur 3) 1 zu erzeugen. HINWEIS: Die Kühlrate ist umgekehrt proportional mit der Dicke des Glases korreliert. </li></ol> 4. Prüfung der Mäuse während der kalten Anpassung Hinweis: Dies ist ein alternatives Protokoll, das Testen als Glas plat erlaubtE abkühlt, anstatt einmal die Platte stabilisiert hat und die Mäuse wurden vollständig an die kalte Umgebung angepasst. <ol><li> Folgen Sie den in Abschnitt 1 Einrichten des Geräts aufgeführten Hinweise. </li><li> Folgen Sie den in Kapitel 3 werden auf Baseline-Messungen bei Raumtemperatur (7A) 2 nehmen Anweisungen. </li><li> Pre-Kühlung der Aluminiumboxen mit Trockeneis. </li><li> Sobald Ausgangsrückzugslatenzen gemessen wurden, positionieren Sie die vorgekühlte Boxen auf der Platte etwa 1,25 &#39;&#39; von den Gehäusen zu beiden Seiten (7A, Pfeil mit der Aufschrift &quot;Trockeneis hinzugefügt&quot;) 2. </li><li> Befolgen Sie die in Abschnitt 3, Maß zu nehmen, wie die Glasplatte abkühlt, die Messungen so oft wie möglich Anweisungen. </li></ol>

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J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Altered+thermal+selection+behavior+in+mice+lacking+transient+receptor+potential+vanilloid+4.">Altered thermal selection behavior in mice lacking transient receptor potential vanilloid 4.</a> The Journal of neuroscience the official journal of the Society for Neuroscience. 25 (5), 1304-1310 (2005).</li><li>Pogorzala, L. A., Mishra, S. K., Hoon, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cellular+code+for+Mammalian+thermosensation.">The cellular code for Mammalian thermosensation.</a> The Journal of neuroscience the official journal of the Society for Neuroscience. 33 (13), 5533-5541 (2013).</li><li>Yalcin, I., Charlet, A., Freund-Mercier, M. -. J., Barrot, M., Poisbeau, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differentiating+thermal+allodynia+and+hyperalgesia+using+dynamic+hot+and+cold+plate+in+rodents.">Differentiating thermal allodynia and hyperalgesia using dynamic hot and cold plate in rodents.</a> The journal of pain official journal of the American Pain Society. 10 (7), 767-773 (2009).</li><li>Callahan, B. L., Gil, A. S., Levesque, A., Mogil, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modulation+of+mechanical+and+thermal+nociceptive+sensitivity+in+the+laboratory+mouse+by+behavioral+state.">Modulation of mechanical and thermal nociceptive sensitivity in the laboratory mouse by behavioral state.</a> The journal of pain: official journal of the American Pain Society. 9 (2), 174-184 (2008).</li><li>Brenner, D. 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M., Michailidis, I., Logothetis, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PI(4,5)P2+regulates+the+activation+and+desensitization+of+TRPM8+channels+through+the+TRP+domain.">PI(4,5)P2 regulates the activation and desensitization of TRPM8 channels through the TRP domain.</a> Nature neuroscience. 8 (5), 626-634 (2005).</li><li>Daniels, R. L., Takashima, Y., McKemy, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activity+of+the+neuronal+cold+sensor+TRPM8+is+regulated+by+phospholipase+C+via+the+phospholipid+phosphoinositol+4,5-bisphosphate.">Activity of the neuronal cold sensor TRPM8 is regulated by phospholipase C via the phospholipid phosphoinositol 4,5-bisphosphate.</a> The Journal of biological chemistry. 284 (3), 1570-1582 (2009).</li><li>Zhang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurokinin-1+receptor+enhances+TRPV1+activity+in+primary+sensory+neurons+via+PKCepsilon:+a+novel+pathway+for+heat+hyperalgesia.">Neurokinin-1 receptor enhances TRPV1 activity in primary sensory neurons via PKCepsilon: a novel pathway for heat hyperalgesia.</a> The Journal of neuroscience the official journal of the Society for Neuroscience. 27 (44), 12067-12077 (2007).</li><li>Wang, H., Zylka, M. 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The authors have nothing to disclose

The CPA can be used to assess cold sensitivity and cold adaptation in mice. It provides an affordable, efficient way to measure cold responses in unrestrained, acclimated animals at a wide variety of temperature ranges. It also provides an unambiguous behavioral response with an easily quantified and analyzed output variable. It has already been used to assess changes in cold sensitivity induced by inflammation1, neuropathic injury1, analgesics1, genetic knockouts20, and ge...

Mess kalten Reaktionsfähigkeit bei Nagern ist wichtig für ein besseres Verständnis der möglichen Mechanismen der kalten Empfindlichkeit beim Menschen unter normalen und pathologischen Bedingungen. Der Kalte Plantar Assay (CPA), ursprünglich entwickelt, einige Jahre vor 1, wurde entwickelt, um reproduzierbare und eindeutig murine Verhaltensreaktionen auf einen Kältereiz bei RT ausgeliefert zu generieren. Neuere Verbesserungen dieses Tests wurden auf einem großen Temperaturbereich 2 die reproduzierbare Messung der kalten Empfindlichkeit erlaubt. Beide Varianten sind auch entworfen, um mit relativ hohem Durchsatz und kostengünstig zu handhaben sein. Ein Großteil der Fortschritte im Verständnis der Mechanismen der kalten Empfindlichkeit mit anderen Verhaltensmethoden vorgenommen. Eine Methode ist die Acetonverdampfungstest, der Tupfen beinhaltet oder Sprühen Aceton auf der Maus Pfote und Messung der Menge an Zeit, die der Maus verbringt schnippte die Pfote 3,4. Leiderdie Antworten auf die Acetonverdampfung werden durch den nassen Gefühl und den Geruch des Aceton verwechselt. Auch kann die Kältereiz, die in der Acetonverdampfungstest angewendet wird auf die Menge an Aceton aufgetragen variieren, und ist schwierig zu quantifizieren. Schließlich müssen unverletzten Mäusen minimal antwortet Aceton als Ausgangswert, so dass es unmöglich ist, Analgesie in Abwesenheit von Überempfindlichkeit bei dieser Methode zu messen. Eine weitere klassische Test für Kälte Reaktionen ist die Tail-Flick-Test, in dem die Latenz zum Rücktritt wird gemessen, nachdem der Schwanz ist in kaltem Wasser 5,6 eingetaucht. Während die Verhaltensreaktionen in diesem Test eindeutig sind, und der Assay misst Antworten auf eine bestimmte Temperatur, müssen die Tiere während der Prüfung zurückgehalten werden, die kalte Reaktionsfähigkeit durch gut beschriebene spannungsinduzierte analgetische Mechanismen 7 verändern kann. Ein weiteres häufig verwendetes Werkzeug ist die kalte Platte Test, der die VerhaltensmaßeReaktionen von Mäusen, nachdem sie auf einem Peltier-Kühlplatte 8-10 platziert werden. Während dieses Tool liefert Informationen über Tier Reaktionen bei bestimmten Temperaturen, wurde auch uneinheitlich verwendet; verschiedenen Gruppen haben verschiedene Arten von Reaktionen einschließlich Anzahl der Sprünge 8,11, die Latenz bis zum ersten Ansprechen 8,11- 13 gemessen wird, und die Anzahl der Pfote hebt 11,13,14 mit sehr unterschiedlichen Ergebnissen. Die Kaltplattentest ist auch relativ geringen Durchsatz, da nur ein Tier zu einem Zeitpunkt getestet werden, und es ist eine teure und zerbrechliche Peltier-Vorrichtung erfordert. Das 2-Plattentemperatur Präferenztest ist eine häufig verwendete Derivat der Kaltplattentest, das die relative Zeitdauer, die Tiere ausgeben 2 verbundenen Platten mit unterschiedlichen Temperaturen 9,15- 17 misst. Ein weiteres ähnliches häufig verwendete Test ist der Wärmegradient Assay, in dem die Zeitdauer, die Mäuse zu verbringen in unterschiedlichen Temperaturzonenim Bereich zwischen 5 ° C und 45 ° C auf einer langen Metallplatte gemessen 16. Obwohl diese Assays erlauben den Vergleich von Temperaturen, ist es unklar, ob das Verhalten darstellt Temperatur Abneigung oder Temperatur bevorzugt. Schließlich ist die dynamische Kaltplattenassay wurde verwendet, um zu messen, wie Mäusen, auf sich ändernde Umgebungstemperatur 18 reagieren. Diese Methode geht darum, Mäuse auf einem RT Peltier-Vorrichtung und Rampen es bis zu 1 ° C während der Messung, wie viel die Mäuse springen oder lecken ihre Pfoten auf verschiedenen Plattentemperaturen. Während dieses Tests, wie Mäusen Anpassung an eine Kühlumgebung, es keine Möglichkeit zu testen, wie Mäusen, die Kältereiz zu reagieren in der Einstellung eines kühleren Umgebungstemperatur. Zusätzlich erfordert es eine teure Ausrüstung durchzuführen und bietet keine Möglichkeit, Mäuse zu Prüfeinrichtungen vor der Messung ihrer kalten Empfindlichkeit akklimatisieren. Um diese Tests zu ergänzen, überprüft der CPA die ACCLIMAted Antworten auf eine gut definierte Kältereiz bei einer Vielzahl von Temperaturbereichen, oder während des Prozesses der Anpassung an kalten Umgebungstemperaturen. Es kann bis zu 14 Mäuse in einer Zeit mit unseren aktuellen Gerät zu testen, mit dem Potenzial, für High-Throughput-Tests kostengünstig skaliert werden.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1209">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:233px;">Name</td>
			<td style="width:320px;">Company</td>
			<td style="width:353px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:303px;">Comments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">T-type thermocouple probe</td>
			<td>Physitemp</td>
			<td>IT-24p</td>
			<td>Used to measure the surface temperature of the glass (http://www.physitemp.com/products/probesandwire/)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Glass plate</td>
			<td>Local glass company (in St. Louis, Stemmerich Inc)</td>
			<td>N/A</td>
			<td>We use pyrex glass (borosilicate float). Our lab generally uses 1/4&#39;&#39;, but 3/16&#39;&#39; and 1/8&#39;&#39; are also useful</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Thermal Data logger</td>
			<td>Extech</td>
			<td>EA15</td>
			<td>Thermologger to keep track of glass temperature (http://www.extech.com/instruments/product.asp?catid=64&#38;prodid=408)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">3mL Syringe</td>
			<td>BD</td>
			<td align="right">309657</td>
			<td>The top is cut off, and dry ice is compressed in the syringe to generate a cold probe</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Computer</td>
			<td>If using Extech logger, any Pcwill work</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Aluminum boxes</td>
			<td>Washington University in St. Louis machine shop</td>
			<td>N/A</td>
			<td>boxes are 3&#39; long, 4.5&#39;&#39; wide, and 3&#39;&#39; tall with a sealed lid.&#160; There is a 1/2&#39;&#39; hole drilled into one short side of each box, near the bottom. These holes are filled with rubber stopcocks when the boxes are filled with wet ice or hot water.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Heated water circulator</td>
			<td>VWR</td>
			<td></td>
			<td>Any water circulator model with a pump will work</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">21 gauge needle</td>
			<td>BD</td>
			<td align="right">305165</td>
			<td>The exact needle size is not important</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Hand timer</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
			<td>Any hand timer will work</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Mirror</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
			<td>Any flat mirror will work</td>
		</tr>
	</tbody>
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a simple and inexpensive method for determining cold sensitivity and adaptation in mice

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life. The cold plantar assay allows the objective and inexpensive assessment of cold sensitivity in mice, and can quantify both analgesia and hypersensitivity. Mice are acclimated on a glass plate, and a compressed dry ice pellet is held against the glass surface underneath the hindpaw. The latency to withdrawal from the cooling glass is used as a measure of cold sensitivity.
Cold sensation is also important for survival in regions with seasonal temperature shifts, and in order to maintain sensitivity animals must be able to adjust their thermal response thresholds to match the ambient temperature. The Cold Plantar Assay (CPA) also allows the study of adaptation to changes in ambient temperature by testing the cold sensitivity of mice at temperatures ranging from 30 &#176;C to 5 &#176;C. Mice are acclimated as described above, but the glass plate is cooled to the desired starting temperature using aluminum boxes (or aluminum foil packets) filled with hot water, wet ice, or dry ice. The temperature of the plate is measured at the center using a filament T-type thermocouple probe. Once the plate has reached the desired starting temperature, the animals are tested as described above.
This assay allows testing of mice at temperatures ranging from innocuous to noxious. The CPA yields unambiguous and consistent behavioral responses in uninjured mice and can be used to quantify both hypersensitivity and analgesia. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

Die Verhaltens-Antworten von Mäusen ausgelöst beginnend bei 30 ° C, 23 ° C, 17 ° C und 12 ° C sind in hohem Maße reproduzierbar (4A) 20. Um die Kältereiz unter der Hinterpfote erzeugt messen, wurden Mäuse mit einer Ketamin / Xylazin / Acepromazin anästhesiert Cocktail und die Pfoten wurden auf dem Glas auf einem T-Typ-Thermoelement Filament (4B) 20 befestigt. Das Glas gekühlt, erwärmt, um die gewünschte Testbereich wurde. Obwohl die Platte gleichmäßi...

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A Simple and Inexpensive Method for Determining Cold Sensitivity and Adaptation in Mice

The Cold Plantar Assay (CPA) measures cold responsiveness between 30 &#176;C and 5 &#176;C, and can also measure cold adaptation. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

Eine einfache und kostengünstige Methode zur Bestimmung der Überempfindlichkeit auf Kälte und Anpassung an der Maus

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life.  The cold ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

14.6K Aufrufe.  Washington University in St. Louis. The Cold Plantar Assay (CPA) measures cold responsiveness between 30 °C and 5 °C, and can also measure cold adaptation. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.