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  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

Este documento informa que la adición de Y-27632 al medio TIVA puede aumentar significativamente el rendimiento de los melanocitos de los tejidos cutáneos adultos.

Resumen

El aislamiento y cultivo de melanocitos primarios de los tejidos de la piel es muy importante para la investigación biológica y ha sido ampliamente utilizado para aplicaciones clínicas. Aislar los melanocitos primarios de los tejidos de la piel por el método convencional generalmente toma alrededor de 3 a 4 semanas para pasar lo suficiente. Más importante aún, los tejidos utilizados son generalmente prepucios recién nacidos y sigue siendo un desafío aislar eficientemente los melanocitos primarios de los tejidos adultos. Recientemente desarrollamos un nuevo método de aislamiento para melanocitos que añade Y-27632, un inhibidor de la quinasa Rho, al medio de cultivo inicial durante 48 h. En comparación con el protocolo convencional, este nuevo método aumenta dramáticamente el rendimiento de los melanocitos y acorta el tiempo necesario para aislar los melanocitos de los tejidos de prepucio. Ahora describimos este nuevo método con más detalle utilizando la epidermis adulta para cultivar eficientemente melanocitos primarios. Es importante destacar que los melanocitos obtenidos a partir de tejidos adultos preparados por este nuevo método pueden funcionar normalmente. Este nuevo protocolo beneficiará significativamente los estudios de defectos de pigmentación y melanomas utilizando melanocitos primarios preparados a partir de tejidos de piel adultos de fácil acceso.

Introducción

El objetivo de este estudio fue desarrollar un protocolo simple y eficaz para aislar los melanocitos de la epidermis de la piel adulta para la investigación biológica y aplicaciones clínicas. Los melanocitos, que se encuentran en la epidermis basal de la piel y en los folículos pilosos, desempeñan un papel importante en la pigmentación de la piel y el cabello produciendo melanina1. La pigmentación cutánea resultante de los melanocitos epidérmicos actúa como un filtro de radiación ultravioleta que reduce/previene el daño del ADN a las células subyacentes en la piel2. La proliferación anormal de melanocitos en la piel es bastante común, como en la formación de nevi benignos (moles) en los que los melanocitos potencialmente se transforman en crecimiento oncogénico seguido de la senescencia celular3.

Desde 1957, el aislamiento y posterior cultura de los melanocitos primarios humanos ha sido posible4, pero sólo desde 1982 ha habido un método eficiente que puede establecer reproduciblemente culturas de melanocitos humanos de la epidermis5. El método convencional para aislar los melanocitos primarios de la epidermis implica una digestión enzimática de dos pasos. Brevemente, la piel se digiere inicialmente con dispase para separar la epidermis de la dermis, después de lo cual la epidermis se digiere con tripina para producir suspensiones que contienen melanocitos y queratinocitos, que luego pueden ser cultivados selectivamente en diferentes medios. Actualmente, el cultivo inicial suele tardar entre 3 y 4 semanas en llegar a la confluencia utilizando el método convencional, que es probable que se deba a la baja eficiencia de su aislamiento. Por lo tanto, aumentar la producción inicial de melanocitos a partir de tejidos cutáneos adultos sería muy útil tanto para la investigación de laboratorio como para aplicaciones clínicas.

Muchos factores de crecimiento, la mayoría de los cuales han demostrado ser secretados por queratinocitos (p. ej., -MSH, ACTH, bFGF, NGF, ET-1, GM-CSF, HGF, LIF y SCF)5-8, regulan la diferenciación y proliferación de melanocitos de mamíferos. En ausencia de capas alimentadoras, la falta de esos factores de crecimiento conduce a la disminución de la proliferación de melanocitos y su aumento de la apoptosis9. El co-cultivo de queratinocitos como células alimentadas y melanocitos podría conducir a la proliferación acelerada de melanocitos y a reducir la apoptosis. Sin embargo, el método de co-cultivo no sólo exige más tejidos de la piel para preparar queratinocitos, lo que no es práctico, sino que también no podría funcionar eficientemente porque las condiciones de cultivo requeridas por los melanocitos no favorecen el crecimiento de queratinocitos, y viceversa.

Estudios previos han informado de que la adición de Y-27632, un inhibidor de ROCK, en el medio de crecimiento puede mejorar el rendimiento de las células epidérmicas primarias humanas de los tejidos de la piel10-14. Por lo tanto, sería interesante probar si el aislamiento de los melanocitos primarios humanos se beneficiaría de la presencia de Y-27632. De hecho, la adición de Y-27632 en el medio TIVA de inoculación15, que contiene TPA, IBMX, Na3VO4 y dbcAMP, aumentó significativamente el rendimiento de los melanocitos primarios aislados de los tejidos de prepucio en los cultivos iniciales16. En comparación con el protocolo convencional, este nuevo protocolo es significativamente más eficiente en el aumento del rendimiento de los melanocitos16. Por lo tanto, este protocolo describe el nuevo método en detalle utilizando tejidos cutáneos adultos basados en un estudio anterior16 con el fin de promover su aplicación en la investigación biológica básica y aplicada.

Protocolo

El uso de tejidos adultos de antepuesto en este protocolo ha sido aprobado por el Comité de ética de la investigación humana (No.2015120401, fecha: 12 de mayo de 2015).

NOTA: Realice todos los procedimientos siguientes en un entorno estéril para evitar contaminaciones de células y cultivos.

1. Preparativos

  1. Reunir los tejidos adultos frescos del prepucio de las cirugías de circuncisión en tubos de 15 ml que contengan 10 ml de solución salina tampón de fosfato (PBS) y almacenar en 4 oC.
    NOTA: Separe los tejidos como se detalla a continuación dentro de las 24 horas después de su escisión.
  2. Preparar reactivos y medios de cultivo.
    1. Preparar 3% P/S (penicilina/estreptomicina) como solución de lavado. Mezclar 50 ml de PBS con 1,5 ml de penicilina (100 U/ml) y estreptomicina (100 mg/L) (P/S).
    2. Preparar la solución de terminación (solución de neutralización) para la neutralización de la digestión enzimática. Suplemento 1% P/S, 10% suero bovino fetal (FBS) en medio DMEM.
    3. Preparar TIVA melanocitos medios a la cultura: F12 de Jamón; 10% FBS; 1x P-S-glutamina; 50 ng/mL 12-O-tetradecanoyl phorbol-13-acetate (TPA); 1 x 10-4 M 3-isobutilo-1-metil xantina (IBMX); 1 m Na3VO4; 1 x 10-3 M N-6,2o-O-dibutyriladenosina-3o,5o-monofosfato cíclico (dbcAMP).

2. El método convencional

  1. Pretratamiento de tejido cutáneo
    1. Enjuagar cada tejido de prepucio adulto una vez con 10 ml de etanol al 75% (alcohol) durante 30 s, y luego enjuagar dos veces con 10 ml de solución de lavado (3% P/S), durante 5 minutos cada uno.
      NOTA: Lave los tejidos del prepucio con 10 ml de PBS al principio si hay mucha sangre. Todos los lavados se preparan en platos de cultivo celular de 100 mm.
    2. Raspa cada tejido de prepucio con una cuchilla quirúrgica para eliminar los tejidos adiposos subcutáneos y los tejidos conectivos sueltos en la cubierta de un plato de cultivo celular de 100 mm.
      NOTA: Utilice un bisturí para raspar las capas de grasa hasta que sólo queden la epidermis delgada y la dermis densa.
    3. Transfiera cada prepucio adulto a otro plato de cultivo de 100 mm con el lado de la dermis hacia abajo.
      NOTA: Corte cada tejido de prepucio adulto en tiras de 3-4 mm de ancho usando una cuchilla de bisturí para hacer que el dispase funcione de manera más eficiente.
    4. Añadir 2,5 mg/ml descaperdio a cada plato de cultivo de 100 mm con tejidos de prepucio adultos e incubar durante 16 a 20 h a 4 oC.
      NOTA: Cada gramo de tejido se digiere con 10 ml de solución dispase.
  2. Separación de la epidermis del tejido del prepucio adulto
    1. Después de la digestión durante 16 a 20 h, separe la epidermis de la dermis con pinzas. Agarre un lado del borde dérmico del tejido con una pinza y la posición correspondiente de la parte epidérmica con otra pinza y despegue suavemente la epidermis.
    2. Lave la epidermis 3x con solución de lavado (3% P/S) y luego transfiera la epidermis a un tubo.
    3. Sumergir la epidermis añadiendo 5 ml de 0.05% de trippsina en el tubo e incubar en un baño de agua durante 30 min a 37 oC.
      NOTA: Agitar el tubo para asegurarse de que la epidermis está completamente sumergida antes de la incubación.
  3. Recolección y cultivo de células primarias
    1. Añadir un volumen igual de solución de terminación (10% FBS, 1% P/S en DMEM) para neutralizar la tripina y pipetear la solución arriba y abajo 10-15 veces para separar las células epidérmicas.
    2. Pase la suspensión celular a un nuevo tubo de 50 ml a través de un filtro de malla de 100 m para eliminar los residuos.
    3. Centrífuga a 200 x g durante 5 min.
    4. Retire el sobrenadante y agregue 10 ml de inoculación TIVA medio para resuspender las células.
    5. Siembra las células resuspendidas en un plato de cultivo de 100 mm.
    6. Cultivo en una incubadora de 37oC con 5% de CO2.
    7. Cambie el medio cada 2 días.
    8. Células de paso cuando alcanzan el 80% de confluencia.

3. El nuevo método

NOTA: El procedimiento para la preparación y digestión de tejidos en el nuevo método es el mismo que se describió anteriormente para el método convencional, la única diferencia es que las células frescas aisladas se resuspenden en 10 ml de medio TIVA que contiene 10 M Y-27632.

  1. Dos días después de la siembra, sustituya el soporte por un medio TIVA normal sin Y-27632. Después de eso, las condiciones de cultivo son las mismas entre los métodos nuevos y los convencionales.

4. Passaging celular

  1. Retire el medio TIVA y enjuague cada plato de cultivo dos veces con PBS.
  2. Añadir 2 ml de 0,05% de trippsina por plato de cultivo celular de 100 mm.
    NOTA: Agitar el plato para asegurar un contacto adecuado entre las enzimas digestivas y la parte inferior del plato.
  3. Digerir en una incubadora de 37oC durante 2 min.
  4. Usa un microscopio para revisar las células y asegúrate de que la mayoría de las células se hayan disociado del plato de cultivo celular.
    NOTA: Toque suavemente el plato para liberar las celdas para redondear hacia arriba y flotar en la solución. Prolongar el tiempo de digestión si la mayoría de las células no se suspendieron después de tocar, pero no más de 5 minutos más.
  5. Transfiera los melanocitos a un tubo de 15 ml después de neutralizar la actividad de la trippsina añadiendo 2 ml de solución de terminación. Centrífuga a 200 x g durante 5 min.
  6. Resuspender cada pellet celular con 10 ml de medio TIVA después de eliminar lentamente el sobrenadante, y luego contar el número de melanocitos.
  7. Placa de aproximadamente 1 x 106 melanocitos en 10 ml de medio TIVA por plato de cultivo celular de 100 mm.
  8. Renovar el medio de cultivo celular cada 48 h.

Resultados

La Figura 1 muestra un diagrama esquemático que compara los métodos convencionales y los nuevos. El procedimiento para la preparación y digestión de tejidos con el nuevo método es el mismo que el procedimiento para el método convencional, la única diferencia es que las células aisladas se resuspenden en 10 ml de medio TIVA en presencia de 10 M Y-27632. Dos días después de la siembra, sustituya el soporte por un medio TIVA normal sin Y-27632. El método convencional de aislar los me...

Discusión

El protocolo descrito aquí se basó en una publicación reciente16. Se debe prestar cierta atención a los siguientes pasos críticos para lograr los mejores resultados con el nuevo método. En primer lugar, la separación exitosa de la epidermis y la dermis es crucial. Corte los tejidos adultos del prepucio en tiras de 3-4 mm de ancho usando una cuchilla de bisturí para hacer que el dispase funcione más a fondo y fácilmente para separar la epidermis de la dermis. En segundo lugar, al separar ...

Divulgaciones

Todos los autores no declaran ningún interés de conflicto.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por el Programa Nacional de Investigación y Desarrollo Clave de China (2017YFA0104604), el Programa General de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (81772093), Proyecto de Investigación Logística Militar (AWS17J005), el Programa Clave de la Fundación de Ciencias Naturales de la Provincia de Shandong (ZR2019ZD36) y el Programa clave de investigación y desarrollo de la provincia de Shandong (2019GSF108107) a X.W. Guangdong Basic and Applied Basic Research Foundation (2019A1515110833) y The Fundamental Research Funds of Shandong University (2019GN043) a J.M.

Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
Alexa fluor-594 donkey anti-mouse IgGThermo Fisher ScientificA21203For Immunofluorescence
Alexa fluor-594 donkey anti-rabbit IgGThermo Fisher ScientificR37119For Immunofluorescence
Cell Culture DishEppendorf30702115For cell culture
Cell StrainerCorning incorporated431792Cell filtration
15 mL Centrifuge TubeKIRGEN171003For cell centrifuge
50 mL Centrifuge TubeKIRGEN171003For cell centrifuge
CO2 IncubatorThermo Scientific51026333For cell incubating
Constant Temperature ShakerShanghai Boxun150036For water bath
DAPIAbcamab104139For Immunofluorescence
DispaseGibco17105-041For melanocyte isolation
DMEMThermo ScientificC11995500Component of neutralization medium
Fetal Bovine SerumBiological Industries04-001-1AC5Component of neutralization medium
Fluorescence microscopeOlympus5E44316For Immunofluorescence
ForskolinMCEHY-15371Induce pigmentation
GlutamineThermo Fisher Scientific25030081melanocyte culture medium
Ham's F12Thermo Scientific11330032melanocyte culture medium
Inverted microscopeOlympus5C42258For cell microscopic observation
3-isobutyl-1-methyl xanthine (IBMX)Sigma17018melanocyte culture medium
mouse anti-human MITFAbcamab12039For Immunofluorescence
Na3VO4SigmaS6508melanocytes culture medium
N6,2'-O-dibutyryladeno-sine 3',5'-cyclic monophosphate (dbcAMP)SigmaD0627melanocyte culture medium
12-O-tetradecanoyl phorbol-13-acetate (TPA)Sigma79346melanocyte culture medium
Penicillin StreptomycinThermo Scientific15140-122Antibiotics
rabbit anti-human Ki-67Abcamab15580For Immunofluorescence
Phosphate buffered solutionSolarbio Life ScienceP1020-500Washing solution
Sorvall ST 16R CentrifugeThermo Scientific75004380Cell centrifugation
TC20TM automated cell counterBio-Rad1450102Automatic cell counting
0.05% TrypsinLife Technologies25300-062For melanocyte dissociation
Y-27632SigmaY0503For melanocyte isolation

Referencias

  1. Costin, G. E., Hearing, V. J. Human skin pigmentation: melanocytes modulate skin color in response to stress. FASEB Journal. 21 (4), 976-994 (2007).
  2. Battyani, Z., Xerri, L., Hassoun, J., Bonerandi, J. J., Grob, J. J. Tyrosinase gene expression in human tissues. Pigment Cell Research. 6 (6), 400-405 (1993).
  3. Michaloglou, C., et al. BRAFE600-associated senescence-like cell cycle arrest of human naevi. Nature. 436 (7051), 720-724 (2005).
  4. Hu, F., Staricco, R. J., Pinkus, H., Fosnaugh, R. P. Human melanocytes in tissue culture. Journal of Investigative Dermatology. 28 (1), 15-32 (1957).
  5. Eisinger, M., Marko, O. Selective proliferation of normal human melanocytes in vitro in the presence of phorbol ester and cholera toxin. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 79 (6), 2018-2022 (1982).
  6. Hirobe, T. Role of keratinocyte-derived factors involved in regulating the proliferation and differentiation of mammalian epidermal melanocytes. Pigment Cell Research. 18 (1), 2-12 (2005).
  7. Halaban, R., et al. Basic fibroblast growth factor from human keratinocytes is a natural mitogen for melanocytes. Journal of Cell Biology. 107 (4), 1611-1619 (1988).
  8. Kunisada, T., et al. Keratinocyte expression of transgenic hepatocyte growth factor affects melanocyte development, leading to dermal melanocytosis. Mechanisms of Development. 94 (1-2), 67-78 (2000).
  9. Hirobe, T., Shinpo, T., Higuchi, K., Sano, T. Life cycle of human melanocytes is regulated by endothelin-1 and stem cell factor in synergy with cyclic AMP and basic fibroblast growth factor. Journal of Dermatological Science. 57 (2), 123-131 (2010).
  10. Wen, J., Zu, T., Zhou, Q., Leng, X., Wu, X. Y-27632 simplifies the isolation procedure of human primary epidermal cells by selectively blocking focal adhesion of dermal cells. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 12 (2), 1251-1255 (2018).
  11. Liu, Z., et al. A simplified and efficient method to isolate primary human keratinocytes from adult skin tissue. Journal of Visualized Experiments. (138), e7862 (2018).
  12. Terunuma, A., Limgala, R. P., Park, C. J., Choudhary, I., Vogel, J. C. Efficient procurement of epithelial stem cells from human tissue specimens using a Rho-associated protein kinase inhibitor Y-27632. Tissue Engineering Part A. 16 (4), 1363-1368 (2010).
  13. Cerqueira, M. T., Frias, A. M., Reis, R. L., Marques, A. P. Interfollicular epidermal stem cells: boosting and rescuing from adult skin. Methods in Molecular Biology. 989, 1-9 (2013).
  14. Zhou, Q., et al. ROCK inhibitor Y-27632 increases the cloning efficiency of limbal stem/progenitor cells by improving their adherence and ROS-scavenging capacity. Tissue Engineering Part C, Methods. 19 (7), 531-537 (2013).
  15. Yokoyama, S., et al. Pharmacologic suppression of MITF expression via HDAC inhibitors in the melanocyte lineage. Pigment Cell & Melanoma Rresearch. 21 (4), 457-463 (2008).
  16. Mi, J., et al. A ROCK inhibitor promotes keratinocyte survival and paracrine secretion, enhancing establishment of primary human melanocytes and melanocyte-keratinocyte co-cultures. Pigment Cell & Melanoma Research. 33 (1), 16-19 (2020).

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