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En este artículo se detalla el proceso de fabricación de linfocitos T receptores de antígenos quiméricos para uso clínico, concretamente utilizando un procesador celular automatizado capaz de realizar la transducción viral y el cultivo de linfocitos T. Proporcionamos recomendaciones y describimos los escollos que deben tenerse en cuenta durante el desarrollo del proceso y la implementación de un ensayo clínico de fase inicial.
Los linfocitos T con receptor de antígeno quimérico (CAR) representan un enfoque inmunoterapéutico prometedor para el tratamiento de diversas enfermedades malignas y no malignas. Las células CAR-T son células T modificadas genéticamente que expresan una proteína quimérica que reconoce y se une a una diana de la superficie celular, lo que provoca la muerte de la célula diana. Los métodos tradicionales de fabricación de células CAR-T requieren mucha mano de obra, son costosos y pueden conllevar el riesgo de contaminación. El CliniMACS Prodigy, un procesador celular automatizado, permite fabricar productos de terapia celular a escala clínica en un sistema cerrado, minimizando el riesgo de contaminación. El procesamiento se produce de forma semiautomática bajo el control de un ordenador y, por lo tanto, minimiza la participación humana en el proceso, lo que ahorra tiempo y reduce la variabilidad y los errores.
Este manuscrito y video describe el proceso de transducción de células T (TCT) para la fabricación de células CAR-T utilizando este procesador. El proceso TCT implica el enriquecimiento, la activación, la transducción con un vector viral, la expansión y la cosecha de células T CD4+/CD8+. Usando la Matriz de Actividades, una funcionalidad que permite ordenar y cronometrar estos pasos, el proceso TCT se puede personalizar ampliamente. Proporcionamos un recorrido por la fabricación de células CAR-T de conformidad con las Buenas Prácticas de Fabricación (cGMP) actuales y analizamos las pruebas de liberación requeridas y los experimentos preclínicos que respaldarán una solicitud de nuevo fármaco en investigación (IND). Demostramos la viabilidad y discutimos las ventajas y desventajas de utilizar un proceso semiautomático para la fabricación clínica de células CAR-T. Por último, describimos un ensayo clínico en curso iniciado por un investigador que se dirige a las neoplasias malignas de células B pediátricas [NCT05480449] como ejemplo de cómo se puede aplicar este proceso de fabricación en un entorno clínico.
La transferencia adoptiva de linfocitos T modificados para expresar un receptor de antígeno quimérico (CAR) ha demostrado una eficacia notable en el tratamiento de pacientes con neoplasias malignas de linfocitos B refractarias 1,2,3,4,5. Sin embargo, los métodos tradicionales de fabricación de las células CAR-T requieren mucha mano de obra, mucho tiempo y técnicos altamente capacitados para llevar a cabo pasos altamente especializados. Por ejemplo, el proceso de fabricación tradicional de un producto autólo....
Toda la investigación se realizó de acuerdo con las directrices institucionales con la aprobación de la Junta de Revisión Institucional (IRB) del hospital, y todos los sujetos han dado su consentimiento informado para la publicación de los datos recopilados en el contexto del ensayo.
NOTA: La primera sección del Protocolo proporciona una visión general de alto nivel del proceso de fabricación de CAR-T. Las secciones restantes proporcionan las instrucciones paso a paso. El protocolo describe el flujo de trabajo utilizando la versión 1.4 del software TCT, que es la versión actual en el momento de escribir este artículo. La interfaz de usuario de otras versiones del s....
Los resultados de las tres series iniciales de fabricación de CAR-T del ensayo de NCT05480449 se presentan a continuación en la Tabla 3. El material de partida, el vector, las citocinas de cultivo y las concentraciones séricas de AB se mantuvieron constantes para cada corrida. Los productos se cosecharon el día 7 u 8. El crecimiento celular diario promedio fue del 46% (aumento en el recuento total de células), lo que indica que el proceso TCT fue efectivo para promover la expansión celular. Estos r.......
La terapia de células CAR-T se ha convertido en un enfoque de tratamiento prometedor para las células B y otras neoplasias malignas. Sin embargo, los métodos tradicionales de fabricación de células CAR-T tienen varias limitaciones, como el alto costo, la producción intensiva en mano de obra y los pasos abiertos que aumentan el riesgo de contaminación. Recientemente, han surgido varias plataformas semiautomatizadas, incluida Miltenyi CliniMACS Prodigy (el "procesador"), para abordar estas limitaciones. El proceso d.......
S.K., S.G. y Y.W. han recibido apoyo de investigación de Miltenyi Biotec.
Los autores desean reconocer las contribuciones de varias personas y organizaciones a este trabajo. El Laboratorio de Terapia Celular y Génica y el Laboratorio de Estudios Traslacionales y Correlativos de la Universidad de Pensilvania proporcionaron una valiosa asistencia en el desarrollo de procesos y la preparación para las presentaciones de IND. Melissa Varghese y Amanda DiNofia contribuyeron al proceso, desarrollo y preparación de las presentaciones de IND que subyacen a este manuscrito. Este trabajo fue apoyado por una Beca de Aceleración de la Colaboración de Terapia Celular y Génica del Hospital Infantil de Filadelfia. Los autores también quieren agradecer a Mi....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
12 x 75 borosilicate tubes | Charles River | TL1000 | |
20 mL Reagent Bag | Miltenyi Biotec | 170-076-631 | |
50 mL Conical Tube | Fisher | 05-539-10 | |
150 mL Transfer Set | Fenwal | 4R2001 | |
2,000 mL Transfer Set | Fenwal | 4R2041 | |
7AAD | Fisher Scientific | BDB559925 | |
Alcohol Prep | Tyco/Healthcare | ||
Bag Access | Medline | 2300E-0500 | |
CD19 APC-Vio770 REAfinity | Miltenyi Biotec | 130-113-643 | |
CD19 CAR Detection Reagent Biotin | Miltenyi Biotec | 130-129-550 | |
CD19 PE | BD | 555413 | |
CD3 APC | BD | 340440 | |
CD4 VioBright FITC REAfinity | Miltenyi Biotec | 130-113-229 | |
CD45 VioBlue REAfinity | Miltenyi Biotec | 130-110-637 | |
CD8 APC-Vio770 REAfinity | Miltenyi Biotec | 130-110-681 | |
Cellometer Reference Beads 10um | Nexcelom | B10-02-020 | |
Cellometer Reference Beads 15um | Nexcelom | B15-02-010 | |
Cellometer Reference Beads 5um | Nexcelom | B05-02-050 | |
Cellometer Slides | Nexcelom | CHT4-SD100-002 | |
CliniMACS CD4 GMP MicroBeads | Miltenyi Biotec | 276-01 | The CD4 reagent |
CliniMACS CD8 GMP MicroBeads | Miltenyi Biotec | 275-01 | The CD8 reagent |
CliniMACS PBS/EDTA Buffer | Miltenyi Biotec | 130-021-201 | The buffer |
DMSO | Origen | CP-10 | |
Freezing Bag 50 mL | Miltenyi Biotec | 200-074-400 | |
Freezing Vial, 1.8 mL | Nunc | 12565171N | |
Freezing Vial, 4.5 mL | Nunc | 12565161N | |
Human AB serum | Valley Biomedical | Sterile filtered, heat inactivated | |
Human Serum Albumin 25% | Grifols | 68516-5216-1 | |
Human Serum Albumin 5% | Grifols | 68516-5214-1 | |
MACS GMP Recombinant Human IL-2 | Miltenyi Biotec | 170-076-148 | The cytokines |
MACS GMP T Cell TransAct | Miltenyi Biotec | 200-076-202 | The activation reagent |
MycoSeq Mycoplasma Detection Kit | Life Technologies | 4460623 | |
Needles, Hypodermic 14G | Medline | SWD200573 | |
Needles, SlideSafe 18G | BD | B-D305918 | |
Pipet tips, 2-200 μL, individually wrapped | Eppendorf | 022492209 | |
Pipet tips, 50-1000 μL, individually wrapped | Eppendorf | 022492225 | |
Pipets 10 mL | Fisher | 13-678-27F | |
Pipets 25 mL | Fisher | 13-675-30 | |
Pipets 5 mL | Fisher | 13-678-27E | |
Plasmalyte-A | Baxter | 2B2544X | The electrolyte solution |
Prodigy TS520 Tubing Set | Miltenyi Biotec | 170-076- 600 | The tubing set |
Sterile Field | Medline | NON21001 | |
Streptavidin PE-Vio770 | Miltenyi Biotec | 130-106-793 | |
Syringe 1 mL | BD | 309628 | |
Syringe 10 mL | BD | 302995 | |
Syringe 3 mL | BD | 309657 | |
Syringe 30 mL | BD | 302832 | |
Syringe 50 mL | BD | 309653 | |
TexMACS GMP Medium | Miltenyi Biotec | 170-076-306 | The medium |
Triple Sampling Adapter | Miltenyi Biotec | 170-076-609 | |
Viral Vector | CHOP Clinical Vector Core | huCART19 | |
Equipment | |||
Biological Safety Cabinet | The Baker Co | ||
Cellometer Auto 2000 | Nexcelom | ||
CliniMACS Prodigy | Miltenyi Biotec | 200-075-301 | The processor |
Controlled Rate Freezer | Planer/Kryosave | ||
Endosafe nexgen-PTS150K | Charles River | ||
Mettler Balance | Mettler | ||
Refrigerated Centrifuge | Thermo Fisher | ||
Refrigerated Centrifuge | Fisher Sci | ||
SCD Sterile Tubing Welder | Terumo | ||
Sebra Tube Sealer | Sebra | ||
Varitherm | Barkey | The dry thaw device | |
XN-330 Hematology Analyzer | Sysmex |
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