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La microdisección por captura láser de tejidos de fibrosis submucosa oral permite la extracción precisa de células de regiones histológicas de interés para el análisis de datos multiómicos con información morfológica y espacial.
La fibrosis submucosa oral (FSO) es un tipo común de trastorno potencialmente maligno en la cavidad oral. La atrofia del epitelio y la fibrosis de la lámina propia y la submucosa se encuentran a menudo en los portaobjetos histopatológicos. Se ha propuesto que la displasia epitelial, la atrofia epitelial y los fibroblastos senescentes se asocian con la transformación maligna de la FSO. Sin embargo, debido a la heterogeneidad de los trastornos orales potencialmente malignos y del carcinoma oral de células escamosas, es difícil identificar los mecanismos moleculares específicos de la transformación maligna en la FSO. Aquí, presentamos un método para obtener un pequeño número de células epiteliales o mesenquimales portadoras de datos morfológicos e información espacial mediante microdisección por captura láser en portaobjetos de tejido fijados en formol e incluidos en parafina. Usando un microscopio, podemos capturar con precisión tejido epitelial displásico o atrófico a microescala (~500 células) y tejido subepitelial fibrótico. Las células extraídas pueden ser evaluadas mediante secuenciación genómica o transcriptómica para adquirir datos genómicos y transcriptómicos con información morfológica y espacial. Este enfoque elimina la heterogeneidad de la secuenciación de tejido OSF a granel y la interferencia causada por las células en áreas no lesionadas, lo que permite un análisis espacio-ómico preciso del tejido OSF.
La fibrosis submucosa oral (FSO) es una enfermedad crónica e insidiosa que se desarrolla principalmente en la mucosa bucal y provoca una apertura bucal restringida1. Si bien la OSF es una enfermedad multifactorial, la masticación de la nuez de areca o la nuez de betel es la principal causa de la OSF 2,3. Debido a este hábito geográficamente específico, la PPO se concentra predominantemente en poblaciones del sudeste y sur de Asia3. Las características histológicas comunes de la OSF incluyen la deposición anormal de colágeno en el tejido conectivo debajo del epite....
Este estudio fue aprobado por la junta de revisión institucional de la Escuela y Hospital de la Universidad de Pekín. Se obtuvo el consentimiento informado de los pacientes. Las muestras de tejido utilizadas en este estudio fueron desidentificadas. El esquema de estudio se muestra en la Figura 1.
1. Preparación de la muestra
Al realizar la microdisección láser de los tejidos OSF, capturamos muestras de epitelio displásico, estroma debajo del epitelio displásico, epitelio atrófico y estroma debajo del tejido epitelial atrófico (Figura 1). A través de la extracción de ADN y la secuenciación del genoma completo en baja profundidad, pudimos analizar las alteraciones en el número de copias (CNA) relacionadas con la morfología15. El CNA es una forma común de inestabilidad genómica .......
Este protocolo reportó una tubería para capturar muestras de tejido OSF con información morfológica y espacial para posteriores análisis espaciales-ómicos a través de microdisección láser. A partir de los resultados representativos, se identificaron diferentes patrones de CNA entre varias muestras relacionadas con la morfología.
La OSF, un tipo de OPMD, es una afección precancerosa común del carcinoma oral de células escamosas6. Se ha descrito que la inesta.......
Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.
Este trabajo fue apoyado por becas de investigación de la Fundación Nacional de Ciencias de la Naturaleza de China (81671006, 81300894), el Fondo de Innovación CAMS para Ciencias Médicas (2019-I2M-5-038), el Proyecto Nacional de Construcción de Disciplinas Clínicas Clave (PKUSSNKP-202102), el Fondo de Innovación para Candidatos Sobresalientes a Doctorado del Centro de Ciencias de la Salud de la Universidad de Pekín (BMU2022BSS001).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Adhesion microscope slides | CITOTEST | REF.188105 | |
Div-haematoxylin | YiLi | 20230326 | |
Eosin solution | BASO | BA4098 | |
Ethanol | PEKING REAGENT | No.32061 | |
Harris hematoxylin dye solution | YiLi | 20230326 | |
Hot plate | LEICA | HI1220 | |
Laser capture microdissection system | LEICA | LMD7 | Machine |
Laser microdissection microsystem | LEICA | 8.2.3.7603 | Software |
Micromount mounting medium | LEICA | REF.3801731 | |
Microscope cover glass | CITOTEST | REF.10212450C | |
Microtome | LEICA | RM2235 | |
PCR tubes | AXYGEN | 16421959 | |
PEN-membrane slides | LEICA | No.11505158 | |
Re-blue solution | YiLi | 20230326 | |
Ultrapure distilled water | Invitrogen | REF.10977-015 | |
Xylene | PEKING REAGENT | No.33535 |
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