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Method Article
Este protocolo describe el aislamiento de células endoteliales de ratón de páncreas completo.
El páncreas es un órgano vital para mantener el equilibrio metabólico dentro del cuerpo, en parte debido a su producción de hormonas metabólicas como la insulina y el glucagón, así como enzimas digestivas. El páncreas también es un órgano altamente vascularizado, una característica facilitada por la intrincada red de capilares pancreáticos. Esta extensa red capilar está formada por células endoteliales (CE) altamente fenestradas, importantes para el desarrollo y la función del páncreas. En consecuencia, la disfunción de las CE puede contribuir a la del páncreas en enfermedades como la diabetes y el cáncer. Por lo tanto, la investigación de la función de las CE pancreáticas (ECp) es importante no solo para comprender la biología del páncreas, sino también para desarrollar sus patologías. Los modelos de ratón son herramientas valiosas para estudiar las enfermedades metabólicas y cardiovasculares. Sin embargo, no ha habido un protocolo establecido con suficientes detalles para el aislamiento de las CEp de ratón debido a la población relativamente pequeña de CE y a las abundantes enzimas digestivas potencialmente liberadas por el tejido acinar que pueden provocar daño celular y, por lo tanto, un bajo rendimiento. Para hacer frente a estos desafíos, ideamos un protocolo para enriquecer y recuperar las pEC de ratón, combinando una disociación física y química suave y una selección mediada por anticuerpos. El protocolo presentado aquí proporciona un método robusto para extraer CE intactas y viables de todo el páncreas de ratón. Este protocolo es adecuado para múltiples ensayos posteriores y se puede aplicar a varios modelos de ratón.
El páncreas, clave para el control metabólico y la homeostasis, es un órgano altamente vascularizado. El páncreas tiene funciones endocrinas y exocrinas, controlando la regulación de la glucosa en sangre y las enzimas digestivas, respectivamente. Estos dos compartimentos están unidos entre sí por una extensa red de vasos sanguíneos pancreáticos, lo que facilita el intercambio y el transporte de oxígeno, hormonas y enzimas. De manera crítica, esta densa red capilar penetra en el islote de Langerhans, un grupo de células reguladoras de hormonas dentro del páncreas responsables de su función endocrina, que consiste en las células alfa (α....
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El aislamiento de los tejidos se realizó bajo el protocolo de estudio aprobado #17010 por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) del Beckman Research Institute, City of Hope (Duarte, California, EE. UU.). Aquí, usamos Tie-2CreERT2; Línea de ratones Rosa26-TdTomato en fondo C57BL/6 a las 8 - 12 semanas de edad. En esta línea, las CE se marcan con TdTomato cuando se inducen con tamoxifeno como se ha descrito anteriormente34. Sin embargo, este protocolo se puede adaptar a todas las edades de ratones adultos con diferentes genotipos y antecedentes genéticos.
1....
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Siguiendo este protocolo, se pueden obtener aproximadamente 2 x 106 células vivas al agrupar 3 páncreas de ratón y 750.000 células de un solo páncreas de ratón. Para validar el enriquecimiento de CE, realizamos los siguientes análisis: 1) PCR cuantitativa: en comparación con las muestras de flujo continuo (FT) (es decir, las fracciones no unidas al anticuerpo CD31), las fracciones de CE tenían niveles significativamente más altos de Pecam1 (que codifica CD31.......
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En este artículo se presenta un protocolo para el enriquecimiento y aislamiento de las pECs. Al igual que los protocolos anteriores de aislamiento de CE de otros tejidos u órganos, este protocolo consta de tres procesos principales, a saber, disociación física, digestión enzimática y enriquecimiento de CE basado en anticuerpos. Para abordar los desafíos únicos en el procesamiento del páncreas, introdujimos varias adaptaciones clave y pasos críticos dentro de nuestro protocolo: .......
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Los autores no tienen nada que revelar.
Los autores agradecen al Dr. Brian Armstrong de City of Hope, y a Mindy Rodríguez de la Universidad de California, Riverside, por su asistencia técnica. Este estudio fue financiado en parte por subvenciones de los NIH (R01 HL145170 a ZBC), la Fundación Ella Fitzgerald (a ZBC), City of Hope (Premio a la Innovación del Instituto de Investigación y Metabolismo de la Diabetes Arthur Riggs) y la subvención EDU4-12772 del Instituto de Medicina Regenerativa de California (a AT). La investigación reportada en esta publicación incluyó trabajos realizados en Microscopía Óptica e Imagen Digital apoyados por el Instituto Nacional del Cáncer de lo....
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL eppendorf | USA Scientific | 1615-5500 | |
10 cm dish | Genesee Scientific | 25-202 | |
25G needles | BD | 305145 | |
2X Taq Pro Universal SYBR qPCR Master Mix | Vazyme | Q712-03-AA | |
5 mL eppendorf | Thermo Fisher | 14282300 | |
6-well plate | Greiner Bio-One | 07-000-208 | |
70 µm strainer | Fisher | 22-363-548 | |
Anti-CD31-biotin | Miltenyi Biotech | REA784 | |
Bovine serum albumin heat shock treated | Fisher | BP1600-100 | |
CaCl2 | Fisher | BP510 | |
Centrifuge | Eppendorf | ||
Collagen Type 1, from calf skin | Sigma Aldrich | C9791 | Attachment reagent in the protocol |
Collagenase Type 1 | Worthington Bio | LS004197 | |
Countess Automatic Cell Counter | Thermo Fisher | ||
DAPI | Thermo Fisher | D1306 | immunofluorescence |
Disposable Safety Scalpels | Myco Instrumentation | 6008TR-10 | |
DNAse I | Roche | 260913 | |
D-PBS (Ca2+,Mg2+) | Thermo Fisher | 14080055 | |
Ethanol | Fisher | BP2818-4 | |
Fetal bovine serum | Fisher | 10437028 | |
Incubator | Kept at 37 °C 5% CO2 | ||
LS Columns | Miltenyi Biotech | 130-042-401 | |
M199 | Sigma | M2520-1L | |
MACS MultiStand with the QuadroMACS Separator | Miltenyi Biotech | 130-042-303 | |
Medium 199 | Sigma Aldrich | M2520-10X | |
Microbeads anti-biotin | Miltenyi Biotech | 130-090-485 | |
Microscope | Leica | To assess cell morphology | |
Molecular Grade Water | Corning | 46-000-CM | |
NaCl | Fisher | S271-1 | |
New Brunswick Innova 44/44R Orbital shaker | Eppendorf | ||
PECAM1 (CD31) Antibody | Abcam | ab56299 | immunofluorescence |
PECAM1 (CD31) Antibody | R&D Systems | AF3628 | |
Phosphate Buffered Saline (10X) (no Ca2+,no Mg2+) | Genesee Scientific | 25-507-XB | |
Primer 36B4 Forward mouse | IDT | AGATTCGGGATATGCTGTTGGC | |
Primer 36B4 Revese mouse | IDT | TCGGGTCCTAGACCAGTGTTC | |
Primer Kdr Forward mouse | IDT | TCCAGAATCCTCTTCCATGC | |
Primer Kdr Reverse mouse | IDT | AAACCTCCTGCAAGCAAATG | |
Primer Nkx6.1 Reverse mouse | IDT | CACGGCGGACTCTGCATCACTC | |
Primer Nxk6.1 Forward mouse | IDT | CTCTACTTTAGCCCCAGCG | |
Primer PECAM1 Forward mouse | IDT | ACGCTGGTGCTCTATGCAAG | |
Primer PECAM1 Reverse mouse | IDT | TCAGTTGCTGCCCATTCATCA | |
RNase ZAP | Thermo Fisher | AM9780 | |
RNase-free water | Takara | RR036B | |
Sterile 12" long forceps | F.S.T | 91100-16 | |
Sterile fine forceps | F.S.T | 11050-10 | |
Sterile fine scissors | F.S.T | 14061-11 | |
Tissue Culture Dishes 2cm | Genesee Scientific | 25-260 | |
TRIzol reagent | Fisher | 15596018 | |
Trypan Blue | Corning | MT25900CI | |
Trypsin Inhibitor | Roche | 10109886001 | |
Tween-20 | |||
VE-Cadherin Antibody | Abcam | ab33168 | immunofluorescence |
Waterbath |
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