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Este protocolo descreve o isolamento de células endoteliais de camundongos de todo o pâncreas.
O pâncreas é um órgão vital para manter o equilíbrio metabólico dentro do corpo, em parte devido à sua produção de hormônios metabólicos, como insulina e glucagon, bem como enzimas digestivas. O pâncreas também é um órgão altamente vascularizado, uma característica facilitada pela intrincada rede de capilares pancreáticos. Esta extensa rede capilar é composta de células endoteliais (CEs) altamente fenestradas importantes para o desenvolvimento e função do pâncreas. Assim, a disfunção dos CEs pode contribuir para a do pâncreas em doenças como diabetes e câncer. Assim, pesquisar a função dos CEs pancreáticos (CEPs) é importante não apenas para a compreensão da biologia do pâncreas, mas também para o desenvolvimento de suas patologias. Modelos de camundongos são ferramentas valiosas para estudar doenças metabólicas e cardiovasculares. No entanto, não existe um protocolo estabelecido com detalhes suficientes descritos para o isolamento de pECs de camundongos devido à população relativamente pequena de ECs e às abundantes enzimas digestivas potencialmente liberadas do tecido acinar que podem levar a danos celulares e, portanto, baixo rendimento. Para enfrentar esses desafios, criamos um protocolo para enriquecer e recuperar pECs de camundongos, combinando dissociação física e química suave e seleção mediada por anticorpos. O protocolo apresentado aqui fornece um método robusto para extrair CEs intactos e viáveis de todo o pâncreas do camundongo. Este protocolo é adequado para vários ensaios a jusante e pode ser aplicado a vários modelos de camundongos.
O pâncreas, fundamental para o controle metabólico e a homeostase, é um órgão altamente vascularizado. O pâncreas tem funções endócrinas e exócrinas, controlando a regulação da glicose no sangue e das enzimas digestivas, respectivamente. Esses dois compartimentos estão ligados entre si pela extensa rede de vasos sanguíneos pancreáticos, facilitando a troca e o transporte de oxigênio, hormônios e enzimas. Criticamente, essa densa rede capilar penetra na ilhota de Langerhans, um aglomerado de células reguladoras de hormônios dentro do pâncreas responsável por sua função endócrina, consistindo nas células alfa (α) secretoras de glucagon,....
O isolamento tecidual foi realizado de acordo com o protocolo de estudo aprovado #17010 pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais (IACUC) do Beckman Research Institute, City of Hope (Duarte, Califórnia, EUA). Aqui, usamos Tie-2CreERT2; Rosa26-TdLinha de camundongos de tomate em fundo C57BL/6 com 8 a 12 semanas de idade. Nessa linha, os CEs são marcados com TdTomato quando induzidos com tamoxifeno, conforme descrito anteriormente34. No entanto, este protocolo pode ser adaptado para todas as idades de camundongos adultos com diferentes genótipos e origens genéticas.
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Seguindo este protocolo, aproximadamente 2 x 106 células vivas podem ser obtidas ao agrupar 3 pâncreas de camundongos e 750.000 células de um único pâncreas de camundongo. Para validar o enriquecimento da CE, realizamos as seguintes análises: 1) PCR quantitativo: em comparação com as amostras de fluxo contínuo (FT) (ou seja, as frações ligadas ao anticorpo não CD31), as frações de CE apresentaram níveis significativamente mais altos de Pecam1 (codifican.......
Neste artigo, apresentamos um protocolo para enriquecimento e isolamento dos pECs. Semelhante aos protocolos anteriores de isolamento de CE de outros tecidos ou órgãos, este protocolo consiste em três processos principais, a saber, dissociação física, digestão enzimática e enriquecimento de CE baseado em anticorpos. Para enfrentar os desafios únicos no processamento do pâncreas, introduzimos várias adaptações importantes e etapas críticas em nosso protocolo: 1) uma digestã.......
Os autores não têm nada a divulgar.
Os autores agradecem ao Dr. Brian Armstrong, da City of Hope, e a Mindy Rodriguez, da Universidade da Califórnia, Riverside, pela assistência técnica. Este estudo foi financiado em parte por doações do NIH (R01 HL145170 para ZBC), Ella Fitzgerald Foundation (para ZBC), City of Hope (Prêmio de Inovação do Instituto de Pesquisa e Metabolismo de Diabetes Arthur Riggs) e Instituto de Medicina Regenerativa da Califórnia concessão EDU4-12772 (para AT). A pesquisa relatada nesta publicação incluiu trabalhos realizados na Microscopia de Luz e Imagem Digital apoiados pelo Instituto Nacional do Câncer do NIH sob o número de prêmio P30CA033572. ....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL eppendorf | USA Scientific | 1615-5500 | |
10 cm dish | Genesee Scientific | 25-202 | |
25G needles | BD | 305145 | |
2X Taq Pro Universal SYBR qPCR Master Mix | Vazyme | Q712-03-AA | |
5 mL eppendorf | Thermo Fisher | 14282300 | |
6-well plate | Greiner Bio-One | 07-000-208 | |
70 µm strainer | Fisher | 22-363-548 | |
Anti-CD31-biotin | Miltenyi Biotech | REA784 | |
Bovine serum albumin heat shock treated | Fisher | BP1600-100 | |
CaCl2 | Fisher | BP510 | |
Centrifuge | Eppendorf | ||
Collagen Type 1, from calf skin | Sigma Aldrich | C9791 | Attachment reagent in the protocol |
Collagenase Type 1 | Worthington Bio | LS004197 | |
Countess Automatic Cell Counter | Thermo Fisher | ||
DAPI | Thermo Fisher | D1306 | immunofluorescence |
Disposable Safety Scalpels | Myco Instrumentation | 6008TR-10 | |
DNAse I | Roche | 260913 | |
D-PBS (Ca2+,Mg2+) | Thermo Fisher | 14080055 | |
Ethanol | Fisher | BP2818-4 | |
Fetal bovine serum | Fisher | 10437028 | |
Incubator | Kept at 37 °C 5% CO2 | ||
LS Columns | Miltenyi Biotech | 130-042-401 | |
M199 | Sigma | M2520-1L | |
MACS MultiStand with the QuadroMACS Separator | Miltenyi Biotech | 130-042-303 | |
Medium 199 | Sigma Aldrich | M2520-10X | |
Microbeads anti-biotin | Miltenyi Biotech | 130-090-485 | |
Microscope | Leica | To assess cell morphology | |
Molecular Grade Water | Corning | 46-000-CM | |
NaCl | Fisher | S271-1 | |
New Brunswick Innova 44/44R Orbital shaker | Eppendorf | ||
PECAM1 (CD31) Antibody | Abcam | ab56299 | immunofluorescence |
PECAM1 (CD31) Antibody | R&D Systems | AF3628 | |
Phosphate Buffered Saline (10X) (no Ca2+,no Mg2+) | Genesee Scientific | 25-507-XB | |
Primer 36B4 Forward mouse | IDT | AGATTCGGGATATGCTGTTGGC | |
Primer 36B4 Revese mouse | IDT | TCGGGTCCTAGACCAGTGTTC | |
Primer Kdr Forward mouse | IDT | TCCAGAATCCTCTTCCATGC | |
Primer Kdr Reverse mouse | IDT | AAACCTCCTGCAAGCAAATG | |
Primer Nkx6.1 Reverse mouse | IDT | CACGGCGGACTCTGCATCACTC | |
Primer Nxk6.1 Forward mouse | IDT | CTCTACTTTAGCCCCAGCG | |
Primer PECAM1 Forward mouse | IDT | ACGCTGGTGCTCTATGCAAG | |
Primer PECAM1 Reverse mouse | IDT | TCAGTTGCTGCCCATTCATCA | |
RNase ZAP | Thermo Fisher | AM9780 | |
RNase-free water | Takara | RR036B | |
Sterile 12" long forceps | F.S.T | 91100-16 | |
Sterile fine forceps | F.S.T | 11050-10 | |
Sterile fine scissors | F.S.T | 14061-11 | |
Tissue Culture Dishes 2cm | Genesee Scientific | 25-260 | |
TRIzol reagent | Fisher | 15596018 | |
Trypan Blue | Corning | MT25900CI | |
Trypsin Inhibitor | Roche | 10109886001 | |
Tween-20 | |||
VE-Cadherin Antibody | Abcam | ab33168 | immunofluorescence |
Waterbath |
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