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En este artículo

  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados Representativos
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

Se describe una estrategia de preparación de muestras para obtener imágenes de embriones tempranos de pez cebra dentro de un corion intacto utilizando un microscopio de lámina de luz. Analiza las diferentes orientaciones que adquieren los embriones dentro del corion en las etapas de epibolia y yema del 70% y detalla estrategias de imagen para obtener una resolución a escala celular en todo el embrión utilizando el sistema de lámina de luz.

Resumen

La microscopía de lámina de luz se ha convertido en la metodología de elección para obtener imágenes en vivo de embriones de pez cebra en escalas de tiempo largas con una fototoxicidad mínima. En particular, un sistema multivista, que permite la rotación de la muestra, permite obtener imágenes de embriones completos desde diferentes ángulos. Sin embargo, en la mayoría de las sesiones de imágenes con un sistema multivista, el montaje de muestras es un proceso problemático, ya que las muestras generalmente se preparan en un tubo de polímero. Para ayudar en este proceso, este protocolo describe estrategias básicas de montaje para obtener imágenes del desarrollo temprano del pez cebra entre las etapas epiboly del 70% y somita temprana. En concreto, el estudio proporciona estadísticas sobre las distintas posiciones en las que se encuentran los embriones en las etapas de epíboly y yema del 70% dentro del corion. Además, discute el número óptimo de ángulos y el intervalo entre ángulos requerido para obtener imágenes de embriones enteros de pez cebra en las primeras etapas de desarrollo, de modo que la información a escala celular se pueda extraer fusionando las diferentes vistas. Finalmente, dado que el embrión cubre todo el campo de visión de la cámara, que es necesario para obtener una resolución a escala celular, este protocolo detalla el proceso de utilizar la información de las cuentas desde arriba o por debajo del embrión para el registro de las diferentes vistas.

Introducción

Garantizar una fototoxicidad mínima es un requisito importante para obtener imágenes de embriones vivos con alta resolución espacio-temporal durante largos períodos. Durante la última década, la microscopía de lámina ligera se ha convertido en la metodología de elección para cumplir con este requisito 1,2,3,4,5,6,7. Brevemente, en esta técnica que se utilizó por primera vez en 2004 para capturar los proce....

Protocolo

Los procedimientos experimentales y de mantenimiento del pez cebra utilizados en este estudio fueron aprobados por el comité institucional de ética animal, vide Referencia TIFR/IAEC/2023-1 y TIFR/IAEC/2023-5. Los embriones obtenidos por cruzamiento de peces heterocigotos que expresan Tg(actb2:GFP-Hsa.UTRN)19 fueron inyectados con ARNm H2A-mCherry (30 pg) en la etapa unicelular. El ARNm de H2A-mCherry se sintetizó utilizando el plásmido pCS2+ H2A-mCherry (un regalo del laboratorio de Oates, EPFL) mediante transcripción in vitro . Los embriones que expresaban ambos marcadores, denominados Utr-GF....

Resultados Representativos

Orientar la muestra de manera precisa es una parte vital del uso eficiente de una configuración de microscopía. Sin embargo, la orientación manual de las muestras a menudo no es posible cuando se utiliza un sistema de láminas ligeras multivista, dado el requisito de preparar las muestras en un tubo. Por lo tanto, para comprobar si existen posiciones estereotipadas que adoptan los embriones dentro del corion, se tomaron imágenes de embriones de pez cebra al 70% de la epíbolia (aprox.......

Discusión

Posicionar un embrión en la orientación correcta para obtener imágenes de la región de interés es uno de los pasos limitantes de la velocidad que a menudo resulta en una sesión de microscopía fallida para un usuario. Esto es más cierto en un microscopio de lámina de luz multivista donde la manipulación manual de la orientación es difícil ya que las muestras están incrustadas dentro de un tubo. Para ayudar en este proceso, este estudio reporta las estadísticas de varias posi.......

Divulgaciones

Los autores declaran no tener ningún interés contrapuesto.

Agradecimientos

Agradecemos al Dr. Kalidas Kohale y a su equipo por el mantenimiento de las instalaciones de peces y a KV Boby por el mantenimiento del microscopio de lámina de luz. SRN agradece el apoyo financiero del Departamento de Energía Atómica (DAE) del Gobierno de la India (Identificación del Proyecto no. RTI4003, DAE OM n.º 1303/2/2019/R\&D-II/DAE/2079 de 11.02.2020), el programa del Grupo de Socios de la Sociedad Max Planck (M.PG. A MOZG0010) y la Beca de Investigación para Start-ups de la Junta de Investigación en Ciencia e Ingeniería (SRG/2023/001716).

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Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
Agarose, low gelling temperatureSigma-AldrichA9414
Calcium Chloride dihydrateSigma-Aldrich12022
FIJIVersion: ImageJ 1.54f
Latex beads, carboxylate-modified polystyrene, fluorescent red, 0.5 μm mean particle size, aqueous suspensionSigma-AldrichL3280
Magnesium sulfate heptahydrateSigma-AldrichM2773
mMESSAGE mMACHINE SP6 Transcription kitThermoFischer ScientificAM1340For in vitro transccription of H2A-mCherry plasmid
Potassium ChhlorideSigma-AldrichP9541
Potassium phosphate monobasicSigma-AldrichP0662
PTFE Sleeving AWG 15L - 1.58 mm ID x 0.15 mm Wall +/-0.05 Adtech Innovations in FluoroplasticsSTW15PTFE tubes
Sodium ChlorideSigma-AldrichS3014
Sodium phosphate dibasicSigma-Aldrich71640
Ultrasonic CleanerLabmanLMUC3Ultrasonicator
Zeiss LightSheet 7 SystemZeiss

Referencias

  1. Wan, Y., McDole, K., Keller, P. J. Light sheet microscopy and its potential for understanding developmental processes. Annu Rev Cell Dev Biol. 35, 655-681 (2019).
  2. Keller, P. J., Schmidt, A. D., Wittbrodt, J., Stelzer, E. H.

Reimpresiones y Permisos

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