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Ce travail décrit la préparation de l’extrait cellulaire d’Escherichia coli (E. coli) suivie de réactions de synthèse de protéines sans cellules (CFPS) en moins de 24 heures. L’explication du protocole d’auto-induction sans cellule (CFAI) détaille les améliorations apportées pour réduire la surveillance des chercheurs et augmenter les quantités d’extrait cellulaire obtenues.
La synthèse de protéines sans cellules (CFPS) s’est développée en tant que plate-forme biotechnologique qui capture les mécanismes de transcription et de traduction in vitro. De nombreux développements ont rendu la plate-forme CFPS plus accessible aux nouveaux utilisateurs et ont élargi la gamme d’applications. Pour les systèmes CFPS à base de lysat, des extraits cellulaires peuvent être générés à partir d’une variété d’organismes, exploitant la biochimie unique de cet hôte pour augmenter la synthèse des protéines. Au cours des 20 dernières années, Escherichia coli (E. coli) est devenu l’un des organismes les plus largement utilisés pour soutenir le SFC en raison de son prix abordable et de sa polyvalence. Malgré de nombreuses avancées clés, le flux de travail pour la préparation de l’extrait de cellules d’E. coli est resté un goulot d’étranglement clé pour les nouveaux utilisateurs qui souhaitent mettre en œuvre CFPS pour leurs applications. Le flux de travail de préparation des extraits prend beaucoup de temps et nécessite une expertise technique pour obtenir des résultats reproductibles. Pour surmonter ces obstacles, nous avons déjà signalé le développement d’un flux de travail d’auto-induction sans cellule (CFAI) 24 heures sur 24 qui réduit les entrées des utilisateurs et l’expertise technique requise. Le flux de travail CFAI minimise le travail et les compétences techniques nécessaires pour générer des extraits de cellules tout en augmentant les quantités totales d’extraits de cellules obtenues. Nous décrivons ici ce flux de travail étape par étape afin d’améliorer l’accès et de soutenir la mise en œuvre à grande échelle du CFPS basé sur E. coli .
L’utilisation de la synthèse de protéines sans cellules (CFPS) pour les applications biotechnologiques a considérablement augmenté au cours des dernières années 1,2,3. Cette évolution peut être attribuée en partie aux efforts accrus déployés pour comprendre les processus qui se produisent dans le SCFFC et le rôle de chaque composante 4,5. En outre, la réduction des coûts attribuée aux configurations optimisées et aux sources d’énergie alternatives a rendu la technologie sans cellules plus facile à mettre en œuvre pour....
1. Croissance des médias
Lors de la préparation des milieux CFAI, le glucose a été échangé contre une augmentation du lactose et du glycérol en tant que principal substrat énergétique dans le milieu. De plus, la capacité de mise en mémoire tampon des médias CFAI a également été augmentée. Ces composantes spécifiques sont données dans le tableau 1.
Les cellules ont ensuite été cultivées à la fois à un OD600 de 10 et à la norme 2,5 dans les milieux CFAI pour montrer une.......
La surveillance des chercheurs est traditionnellement nécessaire pour deux actions clés au cours de la croissance cellulaire : l’induction de l’ARNR T7 et la récolte de cellules à un OD600 spécifique. CFAI élimine ces deux exigences pour réduire le temps du chercheur et la formation technique requise pour préparer des extraits cellulaires de haute qualité. L’auto-induction de l’ARNR T7 est obtenue en remplaçant le glucose par du lactose comme sucre primaire dans le milieu, éliminant ainsi le.......
Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas de conflits d’intérêts financiers concurrents.
Les auteurs tiennent à remercier jennifer VanderKelen et Andrea Laubscher pour leur soutien technique. Les auteurs tiennent également à remercier Nicole Gregorio, Max Levine, Alissa Mullin, Byungcheol So, August Brookwell, Elizabeth (Lizzy) Vojvoda, Logan Burrington et Jillian Kasman pour leurs discussions utiles. Les auteurs reconnaissent également le soutien financier du Bill and Linda Frost Fund, de la Chevron Biotechnology Applied Research Endowment Grant du Center for Applications in Biotechnology, de Cal Poly Research, Scholarly et de la National Science Foundation (NSF-1708919).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL Microfuge Tubes | Phenix | MPC-425Q | |
1L Centrifuge Tube | Beckman Coulter | A99028 | |
Avanti J-E Centrifuge | Beckman Coulter | 369001 | |
CoA | Sigma-Aldrich | C3144-25MG | |
Cytation 5 Cell Imaging Multi-Mode Reader | Biotek | BTCYT5F | |
D-Glucose | Fisher | D16-3 | |
D-Lactose | Alfa Aesar | J66376 | |
DTT | ThermoFisher | 15508013 | |
Folinic Acid | Sigma-Aldrich | F7878-100MG | |
Glycerol | Fisher | BP229-1 | |
Glycine | Sigma-Aldrich | G7126-100G | |
HEPES | ThermoFisher | 11344041 | |
IPTG | Sigma-Aldrich | I6758-1G | |
JLA-8.1000 Rotor | Beckman Coulter | 366754 | |
K(Glu) | Sigma-Aldrich | G1501-500G | |
K(OAc) | Sigma-Aldrich | P1190-1KG | |
KOH | Sigma-Aldrich | P5958-500G | |
L-Alanine | Sigma-Aldrich | A7627-100G | |
L-Arginine | Sigma-Aldrich | A8094-25G | |
L-Asparagine | Sigma-Aldrich | A0884-25G | |
L-Aspartic Acid | Sigma-Aldrich | A7219-100G | |
L-Cysteine | Sigma-Aldrich | C7352-25G | |
L-Glutamic Acid | Sigma-Aldrich | G1501-500G | |
L-Glutamine | Sigma-Aldrich | G3126-250G | |
L-Histadine | Sigma-Aldrich | H8000-25G | |
L-Isoleucine | Sigma-Aldrich | I2752-25G | |
L-Leucine | Sigma-Aldrich | L8000-25G | |
L-Lysine | Sigma-Aldrich | L5501-25G | |
L-Methionine | Sigma-Aldrich | M9625-25G | |
L-Phenylalanine | Sigma-Aldrich | P2126-100G | |
L-Proline | Sigma-Aldrich | P0380-100G | |
L-Serine | Sigma-Aldrich | S4500-100G | |
L-Threonine | Sigma-Aldrich | T8625-25G | |
L-Tryptophan | Sigma-Aldrich | T0254-25G | |
L-Tyrosine | Sigma-Aldrich | T3754-100G | |
Luria Broth | ThermoFisher | 12795027 | |
L-Valine | Sigma-Aldrich | V0500-25G | |
Mg(Glu)2 | Sigma-Aldrich | 49605-250G | |
Mg(OAc)2 | Sigma-Aldrich | M5661-250G | |
Microfuge 20 | Beckman Coulter | B30134 | |
Molecular Grade Water | Sigma-Aldrich | 7732-18-5 | |
NaCl | Alfa Aesar | A12313 | |
NAD | Sigma-Aldrich | N8535-15VL | |
New Brunswick Innova 42/42R Incubator | Eppendorf | M1335-0000 | |
NH4(Glu) | Sigma-Aldrich | 09689-250G | |
NTPs | ThermoFisher | R0481 | |
Oxalic Acid | Sigma-Aldrich | P0963-100G | |
PEP | Sigma-Aldrich | 860077-250MG | |
Potassium Phosphate Dibasic | Acros, Organics | A0382124 | |
Potassium Phosphate Monobasic | Acros, Organics | A0379904 | |
PureLink HiPure Plasmid Prep Kit | ThermoFisher | K210007 | |
Putrescine | Sigma-Aldrich | D13208-25G | |
Spermidine | Sigma-Aldrich | S0266-5G | |
Tris(OAc) | Sigma-Aldrich | T6066-500G | |
tRNA | Sigma-Aldrich | 10109541001 | |
Tryptone | Fisher Bioreagents | 73049-73-7 | |
Tunair 2.5L Baffled Shake Flask | Sigma-Aldrich | Z710822 | |
Ultrasonic Processor | QSonica | Q125-230V/50HZ | |
Yeast Extract | Fisher Bioreagents | 1/2/8013 |
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