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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

L’électroporation de l’ADN plasmidique dans le muscle squelettique est une méthode viable pour moduler l’expression des gènes sans compromettre la contractilité musculaire chez la souris.

Résumé

La modulation transitoire de l’expression génique dans le muscle squelettique murin par électroporation plasmidique est un outil utile pour évaluer la physiologie normale et pathologique. La surexpression ou l’élimination des gènes cibles permet aux chercheurs de manipuler des événements moléculaires individuels et, par conséquent, de mieux comprendre les mécanismes qui ont un impact sur la masse musculaire, le métabolisme musculaire et la contractilité. De plus, l’électroporation des plasmides d’ADN qui codent des étiquettes fluorescentes permet aux chercheurs de mesurer les changements dans la localisation subcellulaire des protéines dans le muscle squelettique in vivo. Une évaluation fonctionnelle clé du muscle squelettique comprend la mesure de la contractilité musculaire. Dans ce protocole, nous démontrons que les études de contractilité musculaire entière sont encore possibles après l’injection d’ADN plasmidique, l’électroporation et la modulation de l’expression génique. L’objectif de cette procédure pédagogique est de démontrer la méthode étape par étape de l’électroporation du plasmide d’ADN dans le muscle squelettique de la souris pour faciliter l’absorption et l’expression dans les myofibres des muscles tibialis antérieur et extenseur digitorum longus, ainsi que de démontrer que la contractilité des muscles squelettiques n’est pas compromise par l’injection et l’électroporation.

Introduction

L’électroporation de l’ADN plasmidique dans le muscle squelettique in vivo est un outil important pour évaluer les changements dans la physiologie des muscles squelettiques et la signalisation moléculaire en modulant l’expression des gènes dans diverses conditions physiologiques et physiopathologiques 1,2,3,4,5,6,7,8,9 . Le transfert expérimental de gènes dans ....

Protocole

Toutes les expériences utilisant des animaux ont été réalisées au Penn State College of Medicine, approuvées par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux de l’Université d’État de Pennsylvanie, et réalisées conformément aux normes éthiques établies dans la Déclaration d’Helsinki de 1964 et ses amendements ultérieurs. Des souris femelles C57BL/6 âgées de 12 semaines ont été utilisées pour cette procédure. Tous les outils chirurgicaux ont été autoclavés pour la stérilité avant l’expérimentation.

1. Préparation d’injection/électroporation TA et EDL

REMARQUE: Ces étapes sont ident....

Résultats

L’électroporation pour faciliter le transfert de gènes dans le muscle squelettique est une technique utile utilisée pour évaluer les changements dans la physiologie musculaire. Nous avons démontré une procédure détaillée, étape par étape, pour réaliser un transfert efficace de gènes dans les muscles TA et EDL. Les différences dans l’efficacité de la transfection se produisent en raison d’un certain nombre de variables. Parmi ces variables figurent les paramètres d’électroporation (impulsions, ten.......

Discussion

Le transfert de gènes in vivo dans le muscle squelettique amélioré par électroporation est un outil utile et relativement simple pour moduler l’expression des protéines dans le muscle. Nous avons montré les étapes nécessaires pour obtenir un transfert efficace de gènes dans les muscles EDL et TA et démontré que la mesure de la contractilité de l’EDL est viable après la procédure. Cette technique ne nécessite pas de vecteurs viraux plus compliqués et permet de comparer la section transversale .......

Déclarations de divulgation

B.A.H. et D.L.W. ne revendiquent aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Aucun

....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
4-0 Nylon suture (non-absorbable)Ethicon662GSuture to close skin incision
50µl Hamilton syringeHamilton80501microsyringe
C57BLl/6NHsd miceEnvigo04412 week-old female mice used for experimentation
Caliper ElectrodeBTX45-01021.0cm x 1.0cm stainless steel
Dynamic Muscle Control Data Acquisition/analysisAurora Scientific605ASoftware used for muscle contractility measurement and analysis
ECM 830 Electroporation SystemBTX45-0662electroporator
EndoFree Plasmid Maxi KitQiagen12362Plasmid purification kit
Extra Narrow ScissorsFine Science Tools14088-10Scissors for blunt dissection
Force TransducerAurora Scientific407ATo measure force from EDL
Micro-Masquito HemastatsFine Science Tools13010-12Hemastats for surturing
pcDNA3.1 mammalian expression vectorFisher ScientificV79020Control Vector
pcDNA3-EGFP expression plasmidAddgene13031Plasmid for GFP expression
Semken curved forcepsFine Science Tools11009-13Forceps for surgery
Surgical blades stainless steel no. 10Becton Dickinson37 1210Scalpel blades
Tissue-Tek O.C.T. mediaVWR25608-930Freezing media for histology
Wheat Germ Agglutinin- Texas RedThermo-Fisher ScientificW21405Membrane staining for muscle cross section

Références

  1. Dodd, S., Hain, B., Judge, A. Hsp70 prevents disuse muscle atrophy in senescent rats. Biogerontology. 10, 605-611 (2009).
  2. Dodd, S. L., Gagnon, B. J., Senf, S. M., Hain, B. A., Judge, A. R. Ros-mediated activation of NF-kappaB and F....

Réimpressions et Autorisations

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