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Ce travail démontre l’utilisation d’une plateforme d’imagerie multimodale basée sur les ultrasons pour l’imagerie non invasive de l’AVC ischémique. Ce système permet de quantifier l’oxygénation du sang par imagerie photoacoustique et la perfusion altérée dans le cerveau par angiographie acoustique.
Nous présentons ici une étude expérimentale sur l’AVC ischémique utilisant notre nouveau système d’imagerie non invasive qui intègre trois technologies d’imagerie acoustique : photoacoustique, échographie et tomographie angiographique (PAUSAT). La combinaison de ces trois modalités permet d’acquérir la tomographie photoacoustique multispectrale (PAT) de l’oxygénation du sang cérébral, l’imagerie par ultrasons à haute fréquence du tissu cérébral et l’angiographie acoustique de la perfusion sanguine cérébrale. La plateforme d’imagerie multimodale permet d’étudier les changements de perfusion cérébrale et d’oxygénation dans l’ensemble du cerveau de la souris après un AVC. Deux modèles d’AVC ischémique couramment utilisés ont été évalués : le modèle d’occlusion permanente de l’artère cérébrale moyenne (pMCAO) et le modèle photothrombotique (PT). PAUSAT a été utilisé pour imager les mêmes cerveaux de souris avant et après un AVC et analyser quantitativement les deux modèles d’AVC. Ce système d’imagerie a permis de montrer clairement les changements vasculaires cérébraux après un AVC ischémique, y compris une réduction significative de la perfusion sanguine et de l’oxygénation dans la région de l’infarctus de l’AVC (ipsilatéral) par rapport au tissu non blessé (controlatéral). Les résultats ont été confirmés par imagerie de contraste par moucheturation laser et coloration au chlorure de triphényltétrazolium (TTC). De plus, le volume de l’infarctus de l’AVC dans les deux modèles d’AVC a été mesuré et validé par la coloration TTC comme la vérité sur le terrain. Grâce à cette étude, nous avons démontré que PAUSAT peut être un outil puissant dans les études précliniques non invasives et longitudinales de l’AVC ischémique.
Le sang transporte l’oxygène (via la protéine d’hémoglobine) et d’autres nutriments importants vers les tissus de notre corps. Lorsque le flux sanguin à travers les tissus est interrompu (ischémie), de graves dommages aux tissus peuvent survenir, dont les effets les plus immédiats sont dus à un manque d’oxygène (hypoxie). L’AVC ischémique est le résultat d’une interruption du flux sanguin vers une certaine région du cerveau. Les lésions cérébrales résultant d’un AVC ischémique peuvent survenir dans les minutes suivant le blocage d’un vaisseau et peuvent souvent avoir des effets débilitants et durables 1,2
Toutes les procédures animales ont été approuvées par le Comité de soin et d’utilisation des animaux du Duke University Medical Center et ont été menées conformément à la politique du Service de santé publique des États-Unis sur les soins et l’utilisation sans cruauté des animaux de laboratoire. Des souris C57BL/6J mâles et femelles (voir le tableau des matériaux) ont été utilisées pour ces études. Un minimum de trois animaux ont été photographiés par groupe modèle d’AVC. Voir la figure 2 pour le flux de travail suivi dans ce protocole.
Imagerie de la morphologie des vaisseaux sanguins dans le cerveau
AA génère des images de morphologie des vaisseaux sanguins en excitant des microbulles dans le système circulatoire à leur fréquence de résonance et en recevant la réponse super harmonique des microbulles. En utilisant la rampe personnalisée (Figure 2C) fixée à une platine réglable manuellement, nous pouvons imager le cerveau de la souris avec le mode AA à deux profondeurs focales différentes. .......
Il y a quelques aspects essentiels de cette méthode qui, s’ils sont mal exécutés, peuvent entraîner une diminution significative de la qualité de l’image et de l’analyse quantitative. Le résultat le plus courant de l’erreur de l’utilisateur dans les images PAUSAT est soit un manque de signal, soit une très faible intensité du signal, qui peuvent tous deux se produire pour diverses raisons. L’une de ces raisons est un problème avec le couplage acoustique. De grosses bulles d’air dans l’eau entoura.......
Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts dans ce travail.
Les auteurs tiennent à remercier l’équipe d’ingénierie de SonoVol Inc. pour son soutien technique. Ce travail a été partiellement parrainé par l’American Heart Association Collaborative Sciences Award (18CSA34080277), à J. Yao et W. Yang; Les subventions des National Institutes of Health (NIH) des États-Unis R21EB027981, R21 EB027304, RF1 NS115581 (BRAIN Initiative), R01 NS111039, R01 EB028143; Le prix CAREER de la National Science Foundation (NSF) des États-Unis 2144788; la subvention de l’Initiative Chan Zuckerberg (2020-226178), à J. Yao; et les NIH accordent des R21NS127163 et des R01NS099590 à W. Yang.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
20 GA catheter | BD Insyte Autoguard Winged | 381534 | For mouse intubation |
2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride | Sigma | T8877 | Necessary for TTC-staining brain for validation |
532nm Laser | Quantel | Q-smart 850 | Laser used to pump the OPO for PAT |
Automatic Ventilator Rovent Jr. | Kent Scientific | RV-JR | To keep mice under anesthesia during surgical procedure |
Black braided silk 4-0 USP | Surgical Specialties | SP116 | Used for sutures on the neck for pMCAO surgery |
Bupivacaine | Hospira | 0409-1159-18 | Used prior to closing wounds during surgical procedure |
C57BL/6 Mice | Jackson Lab | #000664 | Mice used for studying ischemic stroke (2-6 month old male/female) |
Clear suture | Ethicon | 8606 | Used for closing wound (PT stroke and pMCAO). A clear suture won't interfere with PAT |
Cold Light LED | Schott | KL 1600 | Needed to create PT stroke |
Disposable Razor Blade | Accutec Blades | 74-0002 | For sectioning mouse brain |
Electric drill | JSDA | JD-700 | Used to expose MCA during pMCAO procedure |
Electrocauterization tool | Wet-Field | Wet-Field Bipolar-RG | Stops blood flow after drilling during pMCAO procedure |
Hair removal gel | Veet | 8282651 | Used to remove hair from mouse prior to imaging |
High Temperature Cautery Loop Tip | BOVIE Medical Corporation | REF AA03 | Used to avoid bleeding when separating the temporal muscle from the skull |
IR Detector Card | Thorlabs | VRC5 | Used to ensure light path is aligned |
Laser Power Meter | Ophir | StarBright, P/N 7Z01580 | Can be used to calibrate the laser energy prior to imaging |
Laser Speckle Imaging System | RWD Life Science Co. | RFLSI-III | Can be used to validate stroke surgery success |
Lubricant Eye Ointment | Soothe | AB31336 | Can be used to avoid drying of the eyes |
Manually adjustable stage | Thorlabs | L490 | Used with custom ramp for multiple focal depth AA imaging |
Modified Vega Imaging System | Perkin Elmer | LLA00061 | System containing both B-mode/AA and PAT transducers |
Optical Parametric Oscillator | Quantel | versaScan-L532 | Allows for tuning of excitation wavelength in a large range |
Programmable Ultrasound System | Verasonics | Vantage 256 | Used for PAT part of system |
Rose Bengal | Sigma | 330000 | Necessary to induce PT stroke |
Suture | LOOK | SP116 | Used for permanent ligation of CCA |
Temperature Contoller | Physitemp | TCAT-2 | Used to maintain stable body temperature of mice during procedures |
VesselVue Microbubbles | Perkin Elmer | P-4007001 | Used for acoustic angiography (2.43 × 10^9 microbubbles/mL) |
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