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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Pseudomonas aeruginosa produit les biosurfactants rhamnolipides. La chromatographie sur couche mince détecte et détermine la proportion de mono- et di-rhamnolipides produits par chaque souche. La quantification des rhamnolipides totaux consiste à évaluer les équivalents de rhamnose présents dans ces biosurfactants extraits des surnageants de culture à l’aide de la méthode de l’orcinol.

Résumé

La bactérie environnementale Pseudomonas aeruginosa est un pathogène opportuniste à forte résistance aux antibiotiques qui représente un danger pour la santé. Cette bactérie produit des niveaux élevés de biosurfactants connus sous le nom de rhamnolipides (RL), qui sont des molécules ayant une valeur biotechnologique significative mais qui sont également associées à des traits de virulence. À cet égard, la détection et la quantification de l’apprentissage par renforcement peuvent être utiles tant pour les applications biotechnologiques que pour les projets de recherche biomédicale. Dans cet article, nous montrons étape par étape la technique permettant de détecter la production des deux formes de RL produites par P. aeruginosa à l’aide de la chromatographie sur couche mince (CCM) : les mono-rhamnolipides (mRL), molécules constituées d’un dimère d’acides gras (principalement C10-C10) lié à une fraction rhamnose, et les di-rhamnolipides (dRL), molécules constituées d’un dimère d’acide gras similaire lié à deux fractions de rhamnose. De plus, nous présentons une méthode pour mesurer la quantité totale de RL basée sur l’hydrolyse acide de ces biosurfactants extraits d’un surnageant de culture de P. aeruginosa et la détection ultérieure de la concentration de rhamnose qui réagit avec l’orcinol. La combinaison des deux techniques peut être utilisée pour estimer la concentration approximative de mRL et de dRL produite par une souche spécifique, comme illustré ici avec les souches types PAO1 (phylogroupe 1), PA14 (phylogroupe 2) et PA7 (phylogroupe 3).

Introduction

Pseudomonas aeruginosa est une bactérie environnementale et un pathogène opportuniste très préoccupant en raison de sa production de traits associés à la virulence et de sa forte résistance aux antibiotiques 1,2. Un métabolite secondaire caractéristique produit par cette bactérie est le biosurfactant RL, qui est produit de manière coordonnée avec plusieurs traits associés à la virulence tels que la phénazine pyocyanine, un antibiotique à activité redox et la protéase élastase3. Les propriétés tensio-actives et émulsifiantes de RL ont été exploitées dans di....

Protocole

Cette procédure est schématisée dans la figure supplémentaire 1. Les réactifs et l’équipement utilisés pour l’étude sont énumérés dans la table des matériaux.

1. Détection de mRL et dRL dans les surnageants de culture de P. aeruginosa à l’aide de la CCM

  1. Commencer avec le bouillon centrifugé de la souche d’intérêt P . aeruginosa , cultivé en milieu liquide pendant 24 h (pour atteindre la phase stationnaire de croissance où RL est produit). En règle générale, ces cultures contiennent 1 x 109 bactéries par ml.
  2. A....

Résultats Représentatifs

Dans le présent article, trois souches différentes de type P. aeruginosa ont été utilisées pour représenter trois phylogroupes, chacun ayant des niveaux de production de RL et des proportions variables de mRL et de dRL. Ces souches comprennent PAO1 (un isolat de plaie d’Australie, 195522), PA14 (un isolat de plante des États-Unis, 197723) et PA7 (un isolat clinique d’Argentine, 201024). En tant que témoin négatif, le mutant PAO1 rhlA.......

Discussion

La méthode la plus précise pour détecter et quantifier la LR est la HPLC couplée à la spectrométrie de masse (MS)7,8,27 ; Cependant, cela nécessite de l’équipement spécialisé et coûteux qui n’est peut-être pas accessible à de nombreux chercheurs. Les méthodes décrites ici peuvent être couramment mises en œuvre avec du matériel et de l’équipement de laboratoire de base pour détecter et estimer les concen.......

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Le laboratoire de GSCh est soutenu en partie par des subventions IN201222 du Programa de Apoyo a Proyectos de Investigación e Innovación Tecnológica (PAPIIT), Dirección General de Asuntos del Personal Académico -UNAM.

....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
1-NAPHTHOLSIGMA-ALDRICH70442
ACETIC ACIDJ.T. BAKER9508-02
CENTRIFUGEFor centrifuging tubes 1.5 mL and  50 mL
CHLOROFORMJ.T. BAKER9180-02
DRYING OVEN
ETHERJ.T. BAKER9244-02
GLASS PIPETTESIGMA-ALDRICHCLS706510
HYDROCHLORIC ACIDJ.T. BAKER5622-02
LB
L-RHAMNOSE MONOHYDRATESIGMA-ALDRICHR-3875
METHANOLJ.T. BAKER9049-02
ORCINOL MONOHYDRATESIGMA-ALDRICHO1875
PPGAS BrothTris HCL (0.12M), Potassium Chloride ( 0.02M) Ammonium Chloride (0.02M),  Peptone (1%), pH 7.4   Autoclaved. Add  Glucose (5%) and Magnesium Sulfate (0.0016M)
QUARTZ CELL (CUVETTE)SIGMA-ALDRICHZ276669
RECTANGULAR TLC DEVELOPING TANKFISHER SCIENTIFICK4161801020
RHAMNOLIPIDS SIGMA-ALDRICHR-90
SPECTROPHOTOMETERVIS
SPRAYERSIGMA-ALDRICHZ529710-1EA
SULFURIC ACIDJ.T. BAKER9681-02
TES TUBES 5mLCORNING352002
TLC SILICA GEL 60 F254MERCK1.05554.0001
WATER BATH> 80 °C

Références

  1. Moradali, M. F., Ghods, S., Rehm, B. H. A. Pseudomonas aeruginosa lifestyle: A paradigm for adaptation, survival, and persistence. Frontiers in Cell Infection and Microbiology. 7, 1-29 (2017).
  2. Gellatly, S. L., Hancock, R. E. W.

Réimpressions et Autorisations

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Mots cl s Pseudomonas aeruginosaRhamnolipidesMono rhamnolipidesDi rhamnolipidesChromatographie sur couche minceDosage de l orcinolBiosurfactantsVirulenceR sistance aux antibiotiquesBiotechnologie

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