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Ce protocole décrit la procédure d’obtention et de culture de cellules épithéliales pigmentaires rétiniennes primaires (EPR) à partir d’yeux porcins d’origine locale. Ces cellules constituent une alternative de haute qualité aux cellules souches et conviennent à la recherche rétinienne in vitro .
L’épithélium pigmentaire rétinien (EPR) est une monocouche cruciale dans la rétine externe responsable du soutien des photorécepteurs. La dégénérescence de l’EPR survient généralement dans les maladies marquées par une perte de vision progressive, comme la dégénérescence maculaire liée à l’âge (DMLA). La recherche sur la DMLA repose souvent sur des yeux de donneurs humains ou des cellules souches pluripotentes induites (CSPi) pour représenter l’EPR. Cependant, ces sources d’EPR nécessitent des périodes de différenciation prolongées et une expertise substantielle pour la culture. De plus, certains instituts de recherche, en particulier ceux des zones rurales, n’ont pas facilement accès aux yeux des donneurs. Bien qu’il existe une lignée cellulaire d’EPR immortalisée disponible dans le commerce (ARPE-19), elle ne présente pas les caractéristiques essentielles de l’EPR in vivo et n’est pas largement acceptée dans de nombreuses publications de recherche en ophtalmologie. Il est urgent d’obtenir des cellules primaires représentatives de l’EPR à partir d’une source plus facilement disponible et plus rentable. Ce protocole élucide l’isolement et de la sous-culture de cellules primaires de l’EPR obtenues post-mortem à partir d’yeux porcins, qui peuvent être obtenues localement auprès de fournisseurs commerciaux ou universitaires. Ce protocole nécessite des matériaux courants que l’on trouve généralement dans les laboratoires de culture tissulaire. Le résultat est une alternative primaire, différenciée et rentable aux iPSC, aux yeux de donneurs humains et aux cellules ARPE-19.
L’épithélium pigmentaire rétinien (EPR) est une monocouche située dans la rétine externe entre la membrane de Bruch et les photorécepteurs1. Les cellules de l’EPR forment des jonctions serrées avec des protéines telles que la zonula occludens-1 (ZO-1) et possèdent un phénotype distinctif caractérisé par la pigmentation et la morphologie hexagonale 2,3. Ces cellules contribuent à la barrière hémato-rétinienne, soutenant ainsi la santé des photorécepteurs et maintenant l’homéostasie rétinienne 4,5. De plus, les cellules RPE jouent....
Les yeux utilisés dans cette procédure sont obtenus post-mortem d’une boucherie locale inspectée par l’USDA, et aucun travail n’est effectué avec des animaux vivants. Après le sacrifice des animaux, environ 2 heures s’écoulent avant que les yeux ne soient énucléés. Comme la carie des tissus peut commencer à se produire, il est important de garder les yeux au frais pendant le transport pour éviter d’autres caries. Dans cette procédure, les yeux sont immédiatement placés dans un réfrigérateur après l’énucléation. Par la suite, la poche d’yeux est placée à l’intérieur d’un bécher en polypropylène de 1000 mL et entourée de glace dans une glacière de 8 L. Il est important ....
En utilisant cette procédure, les cellules primaires de l’EPR ont été isolées avec succès des yeux porcins. La figure 1A montre les cellules EPR 3 jours après l’isolement avec une pigmentation caractéristique. Après 1 semaine de croissance, les cellules étaient complètement confluentes et formaient une monocouche saine (Figure 1B). Les cellules ont ensuite été transférées dans des inserts de culture cellulaire où elles ont conservé leur pigme.......
Ce protocole décrit comment isoler les cellules EPR des yeux porcins. La pigmentation et la morphologie des pavés sont observées dans les 7 jours suivant l’isolement (Figure 1B). De plus, les données TEER indiquent la formation de jonctions serrées22 et une monocouche saine (Figure 5). Ces résultats montrent que les cellules EPR isolées avec cette méthode sont similaires à l’EPR humaine et peuvent être bénéfiques dans les .......
Aucun.
Les auteurs tiennent à remercier Farhad Farjood pour son aide dans la culture et l’isolement de cellules EPR porcines et Thomas Harris pour son aide dans le MEB. Les auteurs remercient le soutien de la plateforme de microscopie de l’Université d’État de l’Utah pour l’analyse MEB. L’installation entretient un microscope électronique à balayage acquis grâce à une subvention d’instrumentation de recherche majeure de la National Science Foundation (CMMI-1337932). Le financement de cette étude a été fourni par les National Institutes of Health par le biais de la subvention 1R15EY028732 (Vargis) et d’une subvention de la Fondation BrightFocus M2019109 (Vargis). Un financeme....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
6 Micro-well glass bottom plate with 14 mm micro-well #1 cover glass | Cellvis | P06-14-1-N | |
Antibiotic-Antimycotic (100x) | Gibco | 15240062 | |
Biosafety Cabinet | |||
Calcium Chloride, Dried, Powder, 97% | Alfa Aesar | L13191.30 | |
Cell Strainer | Fisher Scientific | 22-363-548 | one per eye |
Centrifuge | |||
Centrifuge Tubes, 15 mL | Fisher Scientific | 05-539-12 | |
Cooler, 8 L | Igloo | 32529 | |
Corning Transwell Multiple Well Plate with Permeable Polyester Membrane Inserts | Fisher Scientific | 07-200-154 | Culture inserts |
Cut Resistant Glove | Dowellife | 712971375857 | |
Cytiva HyClone Dulbecco's Phosphate Buffered Saline, Solution | Fisher Scientific | SH3026401 | for ICC dilutions only |
Deionized Water | |||
DMEM, 1x with 4.5 g/L glucose, L-glutamine & sodium pyruvate | Corning | 10-013-CV | |
DNase I from Bovine Pancreas | Sigma Aldrich | DN25 | |
DPBS/Modified - calcium - magnesium | Cytiva | SH3002B.02 | stored at 4 °C |
ELISA kit, Q-Plex Human Angiogenesis (9-Plex) | Quansys Biosciences, Logan, UT | ||
ENDOHM 6 TEER device | World Precision Instruments | ||
Fetal Bovine Serum (FBS) | Avantor | 232B20 | |
Fisher BioReagents Bovine Serum Albumin (BSA) DNase- and Protease-free Powder | Fisher Scientific | BP9706100 | |
Flashlight | |||
Formaldehyde, ACS Grade, 36.5% (w/w) to 38.0% (w/w), LabChem | Fisher Scientific | LC146501 | |
Gauze Sponges | Fisher Scientific | 22-415-504 | One per eye |
Goat anti-Mouse IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor Plus 647, Invitrogen | Thermo Scientific | A32728 | RPE65 secondary antibody |
Ice | Crushed prefered | ||
Inverted Phase Contrast Microscope | |||
Invitrogen NucBlue Live ReadyProbes Reagent (Hoechst 33342) | Fisher Scientific | R37605 | |
Iris Fine Tip Scissors, Standard Grade, Curved, 4.5" | Cole-Palmer | EW-10818-05 | |
Iris Scissors, 11 cm, Straight, Tungsten Carbide | Fisher Scientific | 50-822-379 | |
LSM-710 Confocal Microscope | Zeiss | ||
Petri Dish, 100 mm x 20 mm | Corning | 430167 | one per 2-3 eyes and one for dissection surface/waste |
Povidone-Iondine Solution, 10% | Equate | 49035-050-34 | |
RPE65 Monoclonal Antibody (401.8B11.3D9), Invitrogen | Thermo Scientific | MA116578 | RPE65 primary antibody |
Scalpel Blades Size 10 | Fisher Scientific | 22-079-683 | |
Scalpel Handles Style 3 | Fisher Scientific | 50-118-4164 | |
Surgical Drape, 18 x 26" | Fisher Scientific | 50-209-1792 | |
Tissue Culture Incubator | 37 °C, 5% CO2, 95% Humidity | ||
Tissue Culture Plates, 6 Wells | VWR | 10062-892 | One for eye wash and one for seeding |
Tri-Cornered Polypropylene Beaker, 1000 mL | Fisher Scientific | 14-955-111F | |
Triton X-100 | Sigma Aldrich | T8787 | |
Trypsin 0.25%, 2.21 mM EDTA in HBSS; w/o Ca, Mg, Sodium Bicarbonate | Corning | 25053Cl | |
Tweezers Style 20A | Fisher Scientific | 17-467-231 | |
Tweezers Style 2A | Fisher Scientific | 50-238-47 | for removing neural retina |
Tweezers Style 5-SA-PI | Fisher Scientific | 17-467-168 | |
Vacuum Aspiration System | |||
Water Bath, 37 °C | |||
ZO-1 Monoclonal Antibody (ZO1-1A12), FITC, Invitrogen | Fisher Scientific | 33-911-1 | ZO-1 conjugated primary antibody |
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