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Les cellules cérébelleuses de Purkinje (PC) sont particulièrement sensibles aux déficiences de la réponse aux dommages de l’ADN. Un protocole est présenté pour l’évaluation visuelle de la dynamique de la réponse de la PC aux dommages à l’ADN, ce qui implique la coloration des chaînes poly(ADP-ribose) liées aux protéines dans des cultures organotypiques cérébelleuses.
Les cellules cérébelleuses de Purkinje (PC) présentent une interaction unique entre des taux métaboliques élevés, une architecture chromatinienne spécifique et une activité transcriptionnelle étendue, ce qui les rend particulièrement vulnérables aux dommages à l’ADN. Cela nécessite une réponse efficace aux dommages de l’ADN (DDR) pour prévenir la dégénérescence cérébelleuse, souvent initiée par un dysfonctionnement ou une perte de PC. Un exemple notable est le syndrome d’instabilité du génome, l’ataxie-télangiectasie (A-T), marqué par une déplétion progressive de la PC et une détérioration cérébelleuse. L’étude des mécanismes de DDR dans les PC est essentielle pour élucider les voies menant à leur dégénérescence dans de tels troubles. Cependant, la complexité de l’isolement et de la culture des PC in vitro a longtemps entravé les efforts de recherche. Les cultures organotypiques cérébelleuses murines (tranches) offrent une alternative réalisable, imitant étroitement l’environnement tissulaire in vivo . Pourtant, ce modèle est limité à des indicateurs DDR se prêtant à l’imagerie microscopique. Nous avons affiné le protocole de culture organotypique, démontrant que l’imagerie fluorescente des chaînes de poly(ADP-ribose) (PAR) liées aux protéines, un indicateur DDR rapide et précoce, révèle efficacement la dynamique de la DDR dans les PC au sein de ces cultures, en réponse au stress génotoxique.
L’intégrité de l’ADN cellulaire est constamment menacée par des agents endommageant l’ADN, principalement des sous-produits métaboliques comme les espèces réactives de l’oxygène, qui infligent des dizaines de milliers de lésions d’ADN par cellule chaque jour. Le maintien persistant de la stabilité du génome est essentiel pour l’homéostasie cellulaire 2,3. La pierre angulaire de cette maintenance est la réponse aux dommages de l’ADN (DDR) - un réseau de signalisation complexe et stratifié qui initie des voies de réparation spécifiques de l’ADN tout
Voir la table des matériaux pour plus de détails sur les matériaux, l’équipement et les anticorps. Les procédures sur les animaux ont été utilisées conformément aux directives éthiques du comité d’éthique de l’Université de Tel Aviv après approbation. La procédure est effectuée sur des bébés souris âgés de 10 jours, quel que soit leur sexe. Si nécessaire, le génotypage est effectué la veille à l’aide d’une biopsie de la queue et de méthodes standard. Les solutions sont stériles et conservées à 4 °C, sauf indication contraire ; voir tableau 1.
1. Préparation des cultur....
La figure 1 illustre l’aspect général des cultures organotypiques cérébelleuses. La rangée du haut de la figure 1A montre la foliation cérébelleuse, qui est maintenue en culture, tandis que la rangée du bas montre les PC colorés pour Calbindin D-28k (vert) et les noyaux neuronaux colorés pour NeuN (rouge). Sur la figure 1B, les astrocytes des PC (en rouge) sont colorés pour la GFAP (en .......
Observations générales
L’avantage majeur du système de culture organotypique est qu’il facilite les études utilisant le tissu du cortex cérébelleux, en préservant son organisation structurelle pendant plusieurs semaines dans la configuration de la boîte de culture. Ce système est utile pour effectuer des analyses morphologiques approfondies des cellules de Purkinje (PC), y compris des examens détaillés des épines dendritiques et des caractéristiques
Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts lié à cette étude.
Les travaux de notre laboratoire sont soutenus par la Fondation de recherche médicale Dr Miriam et Sheldon G. Adelson et l’Association israélienne de lutte contre la maladie A-T.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Reagent and Equipment | |||
150 x 30 cm Petri dish | Corning Inc. | 3261 | |
35 x 10 mm Petri dish | Corning Inc. | 3294 | |
Acetone | Invitrogen | 25030081 | |
Acetone | Sigma-Aldrich | 270725-1L | |
Adhesive microscope slides | Marienfeld | 48187 | 76 x 26 x 1 mm |
Blades for chopper | TED PELLA | Model TC752-1 | Style Razor Blades |
BME | GIBCO | 41010-026 500ml. | No L-Glut |
Cell culture inserts | Millipore | PICM0RG50 | |
D-Glucose | Biological Indo. | 02-015-1A | |
HBSS w/o phenol red | Sigma-Aldrich | H-1138-500L | No Ca+,No Mg+ |
HBSS with phenol red | Sartorius | 02-015-1A | |
Horse serum | GIBCO | 26050088 | heat inactivated |
Iris forceps | CellPath | GZX-0100-00A | 130mm blunt serrated |
Iris spatula | F.S.T | 10092-12 | |
L-Glutamine (200 mM) | Gibco | 41010026 | |
Methanol | Sigma-Aldrich | 322412-1L | |
Methanol | Sigma-Aldrich | G5767 | |
Microscope | Olympus | ||
Mounting Medium without | GRIGENE. Ltd, Israel | K239320A | |
Paraquat | Sigma-Aldrich | 856177-250MG | Paraquat dichloride (Methyl viologen) |
PARG- Poly(ADP-Ribose) Glycohydrolase inhibitor | Tocris Bioscience, United Kingdom | PDD 00017273 | light sensitive |
Phosphate buffer | Biological Indo. | 02-018-1A | |
Scissors, skin-tissue | |||
Six-well plates | Corning incorporated | CLS3516 | |
Spare Chopping Discs | TED PELLA | Model 10180-01 | |
Tissue chopper | McIlwain | Model TC752 | 10180-220 |
Tweezers, pointed | |||
Urinary cups | |||
Antibodies | |||
Alexa fluor 488 donkey anti Rabbit IgG | Invitrogen | A21206 | 1:500; secondary ab; Secondary dilution buffer; Incubation for 2 h at room temperature |
Anti glial fibrillary acidic protien | Milliphore | MAB3402 | 1:1500; primary ab; blocking; Host:mouse |
Anti-calbindin-D-28K | Swant | CB300 | 1:2000; primary ab; blocking; host: rabbit |
Anti-calbindin-D-28K | Swant | CB-38a | 1:2000; primary ab; blocking |
Anti-pan-ADP-ribose reagent | Milliphore | MABE1016 | 1:800; primary ab; blocking; incubation for 2 h at room temperature |
DAPI (4',6-Diamidine-2'-phenylindole dihydrochloride) | Cell signaling | 4084 | 1:1000; secondary dilution buffer; incubation for 20 min at room temperature |
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