Cette recherche est soutenue par la bourse de carrière NSF, la Fondation Hartwell, et l&#39;American Heart Association (# 0830384N).

1. Préparation <ol><li> Autoclave dans un instrument couvert plateau les éléments suivants: <ol><li> Pince tissus dentelé - Pour la manipulation des tissus dépliant </li><li> Ciseaux Tissu (8 cm) - Pour couper le tissu dépliant et les cuspides </li><li> Cotons-tiges - Pour isoler la couche endothéliale de la notice ou aube </li></ol></li><li> Faire solution de collagénase stérile <ol><li> Ajouter 4,0 g de poudre DMEM à 250 ml de 18 MQ eau. </li><li> Ajouter 1,11 g de bicarbonate de sodium. </li><li> Ajouter (600 U / ml) 180 000 unités de collagénase. </li><li> Ajouter 1% (3 ml) de pénicilline / streptomycine. </li><li> Ajuster le pH de la solution à 7,2. </li><li> Porter la solution à 270 ml. </li><li> Stériliser la solution en passant par un filtre de 0,2 um. </li><li> Ajouter 10% (30 ml) de solution stérile de sérum de veau foetal. </li></ol></li><li> Faire stériles moyennes des cellules endothéliales <ol><li> Ajouter 6,7 grammes de poudre de DMEM à 400 ml d&#39;eau 18 MQ. </li><li> Ajouter 1,85 g de bicarbonate de sodium. </li><li> Ajouter (50 U / ml) 25 000 unités d&#39;héparine. </li><li> Ajouter 1% (5 ml) de pénicilline / streptomycine. </li><li> Ajuster le pH de la solution à 7,2. </li><li> Porter la solution à 450 ml. </li><li> Stériliser la solution en passant par un filtre de 0,2 um. </li><li> Ajouter 10% (50 ml) de solution stérile de sérum de veau foetal. </li></ol></li><li> Faire stériles moyennes des cellules interstitielles <ol><li> Ajouter 13,37 grammes de poudre DMEM à 800 ml de 18 MQ eau. </li><li> Ajouter 3,7 grammes de bicarbonate de sodium. </li><li> Ajouter 1% (10 ml) de pénicilline / streptomycine. </li><li> Ajuster le pH de la solution à 7,2. </li><li> Porter la solution à 900 ml. </li><li> Stériliser la solution en passant par un filtre de 0,2 um. </li><li> Ajouter 10% (100 ml) de sérum bovin stérile. </li></ol></li></ol> 2. Isolement des feuillets de la valve cardiaque <ol><li> Accise la racine aortique immédiatement et de façon aseptique du cœur après le sacrifice. </li><li> Rincer soigneusement la racine aortique de sang avec le froid DPBS stérile. Il est impératif d&#39;enlever tous les composants sanguins dès que possible pour limiter la mort VEC et la contamination bactérienne. Les antibiotiques et les antifongiques ne sont pas informés à ce stade car ils sont potentiellement dangereux pour la CVE. </li><li> Isoler feuillets de la valve (3 par soupape) directement à partir de la racine et la placer dans un tube de 15 ml stériles coniques remplis avec 12 ml DPBS froid. Agiter plusieurs fois pour enlever les débris et remplir avec du DPBS frais. </li><li> Transport au laboratoire sur la glace. </li><li> Dès l&#39;arrivée au laboratoire, placer le récipient avec le tissu sous la hotte stérile. </li></ol> 3. L&#39;isolement de couche endothéliale <ol><li> Remplir un plat stériles 35mm avec 3 ml de solution de collagénase froid par la vanne (3 feuillets). </li><li> Placez tous les trois folioles du tube 15 ml dans le plat rempli de la solution de collagénase. </li><li> Incuber les tissus pendant 5-10 minutes à 37 ° C. </li><li> Retirer délicatement la couche endothéliale par rotation d&#39;un écouvillon sec stérile sur la surface de la notice. Le sens de rotation et la quantité de cisaillement appliquée est essentielle pour la pureté de votre échantillon. La rotation de l&#39;écouvillon doit être dans une direction opposée au mouvement linéaire de votre main la création d&#39;un cisaillement contrôlé. Ce cisaillement est ce que soulève les cellules endothéliales du tissu. La quantité de force appliquée doit être suffisante pour sentir la résistance du tissu, mais ne pénètrent pas la membrane basale. </li><li> Occasionnellement, tamponnez l&#39;écouvillon dans la solution de la collagénase pour déloger les cellules à partir des fibres pointe. Après écouvillonnage est complète, la texture de la couche endothéliale doit se sentir légèrement plus lisse qu&#39;avant. </li><li> Recueillir la suspension cellulaire / collagénase et le transfert dans un nouveau tube de 15 ml stérile. </li><li> Centrifuger les tubes à 1000 tpm pendant 5 minutes pour culotter les cellules isolées et aspirer le surnageant. Si isoler des cellules interstitielles ainsi, effectuer ce protocole alors que ces cellules sont centrifugées. </li><li> Ajouter 3 mL de milieu de porc à l&#39;endothélium des tubes de 15 ml, centrifuger une deuxième fois, et les médias aspirer. Cette seconde centrifugation permet de filtrer certains des matériaux indésirables tels que les fibres pointe. </li><li> Re-suspendre les cellules endothéliales centrifugé dans 5 ml de milieu porcine endothéliales et les cellules plaque dans un pré-enduites T-25 flacon avec du collagène (utiliser une fiole jaugée par tube de centrifugation). </li><li> Laissez les cellules se développent au moins 2-3 jours avant de changer le support endothéliales. Cela permet de récupérer les cellules et se divisent depuis le processus d&#39;isolement est assez dur et le rendement cellulaire peut être faible. Il est essentiel de cellules passage près confluent depuis l&#39;inhibition de contact pourrait conduire à la transformation cellulaire. </li></ol> 4. Préparation de 60 mm pour boîte de culture isolement spécifique Side <ol><li> Ligne du verre de 60 mm des boîtes de Pétri avec du papier aluminium (2 plats en verre par leaflet). La feuille d&#39;aluminium permet d&#39;enlever la paraffine, de sorte que le plat en verre de Pétri peuvent être réutilisés pour d&#39;autres isolements. </li><li> Placez des perles de paraffine dans les plats, à moitié plein, et la couverture pour l&#39;autoclavage. </li><li> Une fois l&#39;autoclave est complète et la paraffine est fondue, déplacer l&#39;ensemble plat sur une surface plane fraîche. Comme la paraffine se refroidit, il durcit et créer une couche qui soutiendra piqûres d&#39;aiguille. </li><li> Après 30 minutes, le plat stérilisée peut alors être utilisé comme une chambre d&#39;isolement pour immobiliser le tissu notice. </li></ol> 5. Isolement du côté couche endothéliale spécifiques <ol><li> Retirez les tracts des tubes de 15 ml et placer sur le plat de culture préparés pour l&#39;isolement spécifiques 60mm côté. </li><li> Manipuler le dépliant pour que le côté ventricularis est face cachée sur la surface de la paraffine en laissant le côté fibrosa exposés. Epingler les bords de la notice pour exposer la couche endothéliale. </li><li> Verser quelques gouttes de la collagénase froid sur chaque surface (à la hausse face) endothéliales et incuber les tissus pendant 5-10 minutes à 37 ° C. </li><li> Comme avant, retirez délicatement la couche endothéliale par rotation d&#39;un écouvillon sec stérile sur la surface de la notice. Le sens de rotation et la quantité de cisaillement appliquée est essentielle pour la pureté de votre échantillon. La rotation de l&#39;écouvillon doit être dans une direction opposée au mouvement linéaire de votre main la création d&#39;un cisaillement contrôlé. Ce cisaillement est ce que soulève les cellules endothéliales du tissu et rien d&#39;autre. La quantité de force appliquée doit être suffisante pour sentir la résistance du tissu, mais ne pénètre pas dans le tissu. </li><li> Occasionnellement, tamponnez l&#39;écouvillon dans la solution de la collagénase pour déloger les cellules à partir des fibres pointe. Après écouvillonnage est complète, la texture de la couche endothéliale doit se sentir légèrement plus lisse qu&#39;avant. </li><li> Recueillir la suspension cellulaire / collagénase et le transfert dans un nouveau tube de 15 ml stérile. Indiquez une spécificité à côte sur l&#39;étiquette (tracts de la même valve peut être mis en commun). </li><li> Transfert des tracts à une boîte de culture nouvelle sorte que le côté ventricularis est maintenant exposée et répétez les étapes (05/03 au 05/06). </li><li> Une fois que tous suspension cellulaire / collagénase est recueillie, centrifuger les tubes à 1000 rpm pendant 5 minutes pour culotter les cellules isolées et aspirer le surnageant. Si isoler des cellules interstitielles ainsi, effectuer ce protocole alors que ces cellules sont centrifugées. </li><li> Ajouter 3 mL de milieu porcine endothéliales dans les tubes, centrifuger une deuxième fois, et aspirer les médias. Cette seconde centrifugation permet de filtrer certains des matériaux indésirables tels que les fibres pointe. </li><li> Re-suspendre les cellules endothéliales centrifugé dans 5 ml de milieu porcine endothéliales et les cellules plaque dans un pré-enduites T-25 fiole avec montage (utilisez une fiole jaugée par tube de centrifugation). </li><li> Laissez les cellules se développent au moins 2-3 jours avant de changer le support endothéliales. Cela permet de récupérer les cellules et se divisent, depuis le processus d&#39;isolement est assez sévère. Si vous remarquez le rendement est très faible, envisager de passer à un petit flacon ou d&#39;une plaque bien depuis adhérence cellule-cellule favorise la croissance cellulaire. N&#39;oubliez pas de passage près confluent depuis l&#39;inhibition de contact pourrait conduire à la transformation cellulaire. </li></ol> 6. Isolement des cellules interstitielles <ol><li> Remplissez un tube à centrifuger stérile de 15 ml avec 10 ml de solution de collagénase par soupape (3 feuillets). </li><li> Après écouvillonnage les tracts des cellules endothéliales, les placer dans le tube de 15 ml appropriée avec la solution de la collagénase. </li><li> Incuber pendant environ 12 à 18 heures (agiter délicatement si désiré). </li><li> Mélanger délicatement le tissu dégradé avec une pipette sérologique avant la suspension de cellules / collagénase devient homogène. Cette homogénéisation contribue à fragmenter le tissu et la libération des cellules interstitielles. </li><li> Centrifuger les tissus digérés pendant 5 minutes à 1000 rpm et aspirer le surnageant. </li><li> Ajouter 5 ml interstitielle moyenne porcine aux tubes de 15 ml, centrifuger une deuxième fois, et aspirer le liquide surnageant. </li><li> Re-suspendre les cellules endothéliales centrifugé dans 5 ml de milieu porcine interstitielle et la plaque de cellules dans un flacon T-75 (utiliser une fiole jaugée par tube de centrifugation). </li><li> Laissez les cellules se développent au moins 1-2 jours avant de changer le milieu cellulaire interstitiel. Il y aura des débris de tissu beaucoup plus que les cellules endothéliales, mais qui est attendu. Les cellules devraient également croître au confluent plus vite que les cellules endothéliales en raison de la cellule de rendement et de leur nature. </li></ol> 7. Images représentant <img src="/files/ftp_upload/2158/2158fig1.jpg" alt="Figure 1" /> Figure 1. La morphologie des cellules isolées à 2-3 jours après l&#39;isolement. (A) VEC présentent une morphologie typique endothéliales et forment des grappes pour favoriser la croissance. (B) la morphologie du CIV est similaire à myofibroblastes qui sont généralement en forme de fuseau et uniformément répartis sur le flacon. <pclass = &quot;jove_content&quot;&gt; <img src="/files/ftp_upload/2158/2158fig2.jpg" alt="Figure 2" /> Figure 2. La morphologie des cellules isolées à la confluence. (A) VEC présentent une morphologie typique endothéliales qui sont généralement pavées et contacter la croissance inhibée. (B) la morphologie du CIV est similaire à myofibroblastes qui sont généralement en forme de fuseau et le contact de croissance n&#39;est pas inhibée. <img src="/files/ftp_upload/2158/2158fig3.jpg" alt="Figure 3" /> Figure 3. Les caractéristiques fonction des cellules isolées 6. (A) VEC sont associés à des niveaux élevés d&#39;absorption de LDL acétylées (rouge). (B) CIV sont associés à de faibles niveaux d&#39;absorption LDL acétylées. <img src="/files/ftp_upload/2158/2158fig4.jpg" alt="Figure 4" /> Figure 4. Marqueurs cellulaires de cellules isolées 6. (A) phénotype CVE contribué à une coloration positive pour le facteur Willebrand (vert), bleu (noyaux). (B) phénotype VIC contribué à coloration négative facteur von Willebrand. <img src="/files/ftp_upload/2158/2158fig5.jpg" alt="Figure 5" /> Figure 5. Marqueurs cellulaires des cellules isolées. (A) phénotype CVE contribué à coloration négative pour alpha SMA (vert), bleu (noyaux). (B) phénotype VIC contribué à coloration positive pour SMA alpha. <table border="1"><tbody><tr><td> Dissociation agent </td><td> La dissociation Technique </td><td> Cell Collection </td><td> Quantité de cellules </td><td> Cellulaire Pureté </td><td> Contamination </td></tr><tr><td> EDTA (3 mM) sans CaCl 2 </td><td> 5, 20, 60 min. CaCl 2 avant le plus </td><td> 20, 60, 120 min. avant la collecte </td><td> - </td><td> + / - </td><td> + + + </td></tr><tr><td> EDTA (6mm) sans CaCl 2 </td><td> 5, 20, 60 min. CaCl 2 avant le plus </td><td> 20, 60, 120 min. avant la collecte </td><td> + / - </td><td> + </td><td> + + + </td></tr><tr><td> Trypsine-EDTA (0,5 g / L) </td><td> 5, 10, 15 min. avant la désactivation </td><td> Moyen prélevé immédiatement </td><td> + </td><td> + </td><td> + + </td></tr><tr><td> Collagénase II (300 U / ml) </td><td> 5, 10, 15 min. avant la désactivation </td><td> Moyen prélevé immédiatement </td><td> -, +, + + </td><td> -, + +, + </td><td> + </td></tr><tr><td> Collagénase II (600 U / ml) </td><td> 5, 10, 15 min. avant la désactivation </td><td> Moyen prélevé immédiatement </td><td> +, + +, + + + </td><td> + +, + +, - </td><td> - </td></tr></tbody></table> Tableau 1. Résultats préliminaires d&#39;une valvulopathie endothéliales protocoles d&#39;isolement cellulaire.

<ol>
	<li>Thompson, R. P., Fitzharris, T. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphogenesis+of+the+truncus+arteriosus+of+the+chick+embryo+heart:+the+formation+and+migration+of+mesenchymal+tissue.">Morphogenesis of the truncus arteriosus of the chick embryo heart: the formation and migration of mesenchymal tissue.</a> Am J Anat. 154, 545-556 (1979).</li><li>Johnson, C. M., Fass, D. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Porcine+cardiac+valvular+endothelial+cells+in+culture:+A+relative+deficiency+of+fibronectin+synthesis+in+vitro.">Porcine cardiac valvular endothelial cells in culture: A relative deficiency of fibronectin synthesis in vitro.</a> Lab Invest. 49 (5), 589-598 (1983).</li><li>Manduteanu, I., Popov, D., Radu, A., Simionescu, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calf+cardiac+valvular+endothelial+cells+in+culture:+production+of+glycosaminoglycans,+prostacyclin+and+fibronectin.">Calf cardiac valvular endothelial cells in culture: production of glycosaminoglycans, prostacyclin and fibronectin.</a> J Mol Cell Cardiol. 20 (2), 103-118 (1988).</li><li>Cheunyg, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Techniques+for+isolating+and+purifying+porcine+aortic+valve+endothelial+cells.">Techniques for isolating and purifying porcine aortic valve endothelial cells.</a> JHVD. 17 (6), 674-681 (2008).</li><li>Paranya, G., Vineberg, S., Dvorin, E., Kaushal, S., Roth, S. J., Rabkin, E., Schoen, F. J., Bischoff, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aortic+valve+endothelial+cells+undergo+transforming+growth+factor-beta-mediated+and+non-transforming+growth+factor-beta-mediated+transdifferentiation+in+vitro.">Aortic valve endothelial cells undergo transforming growth factor-beta-mediated and non-transforming growth factor-beta-mediated transdifferentiation in vitro.</a> Am J Pathol. 159 (4), 1335-1343 (2001).</li><li>Butcher, J. T., Penrod, A., Garcia, A. J. M., Nerem, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unique+morphology+and+focal+adhesion+development+of+valvular+endothelial+cells+in+static+and+fluid+flow+environments.">Unique morphology and focal adhesion development of valvular endothelial cells in static and fluid flow environments.</a> Arterioscler Thromb Vasc Bio. 24 (1), 1429-1434 (2004).</li><li>Simmons, C. A., Grant, G. R., Manduchi, E., Davies, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatial+heterogeneity+of+endothelial+phenotypes+correlates+with+side-specific+vulnerability+to+calcification+in+normal+porcine+aortic+valves.">Spatial heterogeneity of endothelial phenotypes correlates with side-specific vulnerability to calcification in normal porcine aortic valves.</a> Circ Res. 96, 792-799 (2005).</li><li>Butcher, J. T., Tressel, S., Johnson, T., Turner, D., Sorescu, G., Jo, H., Nerem, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcriptional+Profiles+of+Valvular+and+Vascular+Endothelial+Cells+Reveal+Phenotypic+Differences:+Influence+of+Shear+Stress.">Transcriptional Profiles of Valvular and Vascular Endothelial Cells Reveal Phenotypic Differences: Influence of Shear Stress.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 26, 69-69 (2006).</li><li>Parachuri, S., Yang, J. H., Aikawa, E., Melero-Martin, J. M., Khan, Z. A., Loukogeorgakis, S., Schoen, F. J., Bischoff, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+Pulmonary+Valve+Progenitor+Cells+Exhibit+Endothelial/Mesenchymal+Plasticity+in+Response+to+Vascular+Endothelial+Growth+Factor-A+and+Transforming+Growth+Factor-&#946;2.">Human Pulmonary Valve Progenitor Cells Exhibit Endothelial/Mesenchymal Plasticity in Response to Vascular Endothelial Growth Factor-A and Transforming Growth Factor-&#946;2.</a> Circ Res. 99 (8), 861-869 (2006).</li><li>Shi, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evidence+for+circulating+bone+marrow-derived+endothelial+cells.">Evidence for circulating bone marrow-derived endothelial cells.</a> Blood. 92, 362-367 (1998).</li><li>Rehman, J., Li, J., Orschell, C. M., March, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peripheral+blood+endothelial+progenitor+cells+are+derived+from+monocyte/macrophages+and+secrete+angiogenic+growth+factors.">Peripheral blood endothelial progenitor cells are derived from monocyte/macrophages and secrete angiogenic growth factors.</a> Circulation. 107, 1164-1169 (2003).</li></ol>

Une bonne compréhension de la biologie valvulaires a été altérée par des difficultés techniques d&#39;isolement et de culture des populations pures de cellules endothéliales valvulaires. Techniques d&#39;isolement typiques impliquent la digestion enzymatique de la matrice sous-jacente basale ou chimique de dissociation des liaisons adhésives endothéliales 2,3. Expériences d&#39;isolement préliminaires ont été évalués qualitativement par la variation des agents de dissociation et de périodes d&...

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		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Dulbecco&#x2019;s Modified Eagle Medium</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Mediatech</td>
<td>50-103-PB</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Fetal Bovine Serum</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Gibco</td>
<td>26140</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Penicillin Streptomycin</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Gibco</td>
<td>15140-122</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>0.25% Trypsin-EDTA</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Gibco</td>
<td>25200</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Heparin Sodium Salt</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma-Aldrich</td>
<td>H4784-1G</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Collagenase Type 2</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Worthington Biochemical</td>
<td>LS004176</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>DPBS</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Gibco</td>
<td>21300-058</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Rat Tail Collagen</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BD Biosciences</td>
<td>354236</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Critical Swabs</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>VWR</td>
<td>89031-270</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Sodium Bicarbonate</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sigma-Aldrich</td>
<td>55761</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>T25 Flasks</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BD Biosciences</td>
<td>353018</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>T75 Flasks</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BD Biosciences</td>
<td>353136</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>24 Well Plate</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Falcon</td>
<td>353047</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>60x15 mm Dishes</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>VWR</td>
<td>25384-092</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>60x15 Glass Dishes</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>VWR</td>
<td>89000-310</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Paraffin Embedding Wax</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Electron Microscopy Sciences</td>
<td>19304-01</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Precision Glide Needles</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>BD Biosciences </td>
<td>305165</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>500 mL Nalgene Filters</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>VWR</td>
<td>73520-985</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>1L Nalgene Filters</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>VWR</td>
<td>73520-986</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Tissue Forceps</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fine Science Tools</td>
<td>11023-15</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>FSC Tweezers #5</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fine Science Tools</td>
<td>11295-00</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

isolation of valvular endothelial cells

Les valves cardiaques sont seul responsable du maintien du flux sanguin unidirectionnel à travers le système cardio-vasculaire. Ces minces, des tissus fibreux sont soumis à des contraintes mécaniques importantes car elles s&#39;ouvrent et se ferment plusieurs milliards de fois sur une durée de vie. L&#39;endurance incroyable de ces tissus est due à la valvulopathie résidents endothéliales (VEC) et les cellules interstitielles (CIV) qui ne cessent de réparation et de remodelage en réponse à des signaux locaux mécaniques et biologiques. Ce n&#39;est que récemment que nous avons commencé à comprendre les comportements uniques de ces cellules, dont l&#39;expérimentation in vitro a joué un rôle clé. Particulièrement difficile est l&#39;isolement et la culture du CVE. Une attention particulière doit être utilisé à partir du moment où le tissu est retiré de l&#39;hôte par plaquage finale. Nous présentons ici des protocoles pour l&#39;isolement direct, l&#39;isolement secondaires spécifiques, la culture, et la vérification des populations pures de CVE. Nous utilisons la digestion enzymatique suivie d&#39;une technique de raclage tige doux pour déloger les cellules de surface seulement. Ces cellules sont ensuite recueillies dans un tube et centrifugée dans une pastille. Le culot est ensuite remis en suspension et plaquées dans des flacons de culture pré-enduites de collagène I matrice. Phénotype VEC est confirmée par le contact a inhibé la croissance et l&#39;expression des marqueurs endothéliaux spécifiques tels que PECAM1 (CD31), facteur von Willebrand (VWF), et l&#39;expression négative de l&#39;actine musculaire lisse alpha (α-SMA). Les caractéristiques fonctionnelles de VEC sont associés à des niveaux élevés de LDL acétylées. Contrairement cellules endothéliales vasculaires, CVE ont la capacité unique de se transformer en mésenchyme, qui se produit normalement lors de la formation embryonnaire, la vanne 1. Cela peut également survenir lors de façon significative après confluentes prolongée de culture in vitro, ainsi le soin doit être fait pour le passage ou à proximité de confluence. Après isolement CVE, des populations pures de CIV peuvent ensuite être facilement acquis.

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Isolation of Valvular Endothelial Cells

Nous fournissons une méthode pour isoler et cultiver des populations pures de cellules endothéliales valvulaires cardiaques (VEC). VEC peuvent être isolées de chaque côté de la pointe ou un dépliant et immédiatement après, sous-jacente des cellules interstitielles (CIV) isolement est simple.

L&#39;isolement des cellules endothéliales valvulaires

Heart valves are solely responsible for maintaining unidirectional blood flow through the cardiovascular system.  These thin, fibrous tissues are ...

Research

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Biology

20.2K vues.  Cornell University. Nous fournissons une méthode pour isoler et cultiver des populations pures de cellules endothéliales valvulaires cardiaques (VEC). VEC peuvent être isolées de chaque côté de la pointe ou un dépliant et immédiatement après, sous-jacente des cellules interstitielles (CIV) isolement est simple.