The authors acknowledge all colleagues who made this work possible; Ann Demarr&#233;, Veerle Laurysens, Jan De Jonge and Erik Quartier for technical assistance. Financial support was from the VUB Research Council, the Institute for the Promotion of Innovation by Science and Technology in Flanders (IWT), the Beta Cell Biology Consortium (BCBC), the Fund for Scientific Research Flanders (FWO), Diabetes Onderzoek Nederland (DON) and Interuniversity Attraction Pole (IAP).

Toutes les manipulations de suivre les lignes directrices émises par la Convention européenne pour la protection des animaux vertébrés utilisés à des fins expérimentales ou à d&#39;autres fins scientifiques (STE 123 et et 2010/63 / UE). 1. Préparation de la zone de travail <ol><li> Fournir une aire de préparation dédié, une zone chirurgicale et une zone de récupération. </li><li> Effectuer la procédure chirurgicale entière dans une hotte à flux laminaire afin de minimiser les contaminants environnementaux. </li><li> Assemblez les fournitures (comme indiqué dans Matériels et Méthodes) nécessaires sur la zone de préparation, chirurgicale et la récupération, utilisant une technique aseptique appropriée. </li><li> Veiller à ce que les outils chirurgicaux sont passés à l&#39;autoclave avant la chirurgie. </li><li> Fournir un tampon de chauffage de l&#39;eau de recirculation à une température de 38 ° C pour la stabilisation de la température au cours de la chirurgie. Couvrir le coussin chauffant avec un tampon étanche stérile. </li><li> Fournir un microscope opératoire avec un grossissement d&#39;au moins 6,3x. </li><li> Utilisez un steri d&#39;instrumentslizer, comme un stérilisateur à billes à chaud, pour stériliser les instruments entre les procédures chirurgicales. </li><li> Préparer une zone de récupération composé d&#39;une grande cage, bordée par la literie plat de papier </li></ol> 2. Préparation des animaux destinés à la Chirurgie <ol><li> Pour PDL et une intervention chirurgicale fictive, utiliser huit semaines vieilles souris mâles, logés dans des cages standard et entretenus sur une / 12 h cycle d&#39;obscurité de 12 heures de lumière et nourris ad libitum un régime standard pour rongeurs. Remarque: Ici, nous utilisons des souris BALB / cJrJ mais nous avons également utilisé avec succès d&#39;autres souches et diverses souches transgéniques. </li><li> Utilisation en tant que buprénorphine analgésie préventive (0,05 à 0,1 mg / kg) 30 minutes avant l&#39;intervention chirurgicale. </li><li> Anesthésier les souris par injection intraperitoneale de 100 mg / kg de kétamine et de 5 à 10 mg / kg de xylazine. </li><li> Évaluer anesthésie appropriée en observant la perte progressive du mouvement volontaire et la relaxation musculaire. Testez la perte de réflexes en orteil pincement. </li><li> Appliquer une pommade ophtalmique prevent sécheresse des yeux sous anesthésie. </li></ol> 3. Préparation du site opératoire <ol><li> Désinfecter thorax et l&#39;abdomen avec une solution de chlorhexidine antiseptique. </li><li> Rasez une superficie de 2,5 cm x 1,5 cm de l&#39;abdomen. </li><li> Désinfectez la zone rasée en utilisant la gaze imbibée de solution de chlorhexidine, puis une solution d&#39;alcool et une application final de la solution de chlorhexidine. </li><li> Placer l&#39;animal dans la zone chirurgicale de sorte que le site chirurgical vers le haut est disposé en face du chirurgien. </li><li> Drapé de la souris à l&#39;aide d&#39;un drap chirurgical étanche avec une ouverture qui laisse la région abdominale désinfecté exposé tout en recouvrant le reste du corps pour créer un champ de travail stérile. Surveiller la souris avant la procédure pour la profondeur de l&#39;anesthésie. </li></ol> 4. pancréatique ligature du canal <ol><li> Laparotomie <ol><li> Faire une incision médiane supérieure dans la peau étendant à partir de la pointe du sternum à l&#39;ombilic en utilisant un stérilelame chirurgicale. Séparer la ligne blanche sous-jacente et le péritoine aide de ciseaux stériles afin d&#39;exposer le quadrant supérieure de l&#39;abdomen. </li><li> Éviter le dessèchement des organes internes par aspersion régulière avec du chlorure de sodium stérile à 0,9%. </li><li> En utilisant des pinces stériles ou écouvillon, rentrer le ventre en haut, exposant la rate et le lobe splénique (la région de la queue) du pancréas. </li><li> Rétracter doucement le duodénum et du jéjunum partie supérieure dans le quadrant supérieur droit abdominale pour exposer la tête, du cou et de la région du corps du pancréas couverts par le péritoine viscéral. </li></ol></li><li> Ligature <ol><li> Localiser la position anatomique de la conduite principale du pancréas dans la région du cou du pancréas. </li><li> Inciser le péritoine viscéral et le ligament gastro-colique, accorder l&#39;accès à la rétropéritoine, l&#39;exposition de la région de corps et la queue du pancréas. Afin d&#39;exposer la région du cou, effectuer une manœuvre de Kocher. Soulevez le duodénum et la tête dele pancréas large de la rétropéritoine les élevant à partir de la veine cave inférieure et de l&#39;aorte ci-dessous. </li><li> Placez délicatement la spatule sous la région du cou. Ligaturer le canal pancréatique avec 6-0 fil Prolene sur le côté gauche de la veine porte qui sépare les lobes gastro-duodénaux et de la rate. </li><li> Effectuer une deuxième ligature à proximité immédiate de la première ligation pour assurer que les lobes soient suffisamment séparés. </li><li> Ligaturer très soigneusement afin de ne pas endommager les vaisseaux sanguins sous-jacents, à savoir l&#39;artère pancréaticoduodénale supérieure, l&#39;artère pancréaticoduodénale inférieure et la partie du pancréas de l&#39;artère splénique. </li><li> Placez les organes dans la cavité abdominale. </li><li> Fermer l&#39;incision en utilisant 4-0 polyglycol fil filamenteux dans un modèle de suture continue pour le muscle / couche péritonéale et dans un modèle de suture discontinue pour la peau. </li></ol></li></ol> 5. Chirurgie Sham <ol><li> Effectuez toutes les étapes que dedécrit dans les étapes 1 à 4.1.4. Alors que le pancréas est exposé, ne pas effectuer la ligature du canal pancréatique. </li><li> À la fin de l&#39;étape 4.1.4, placer les organes internes dans la cavité abdominale. </li><li> Fermer l&#39;incision comme décrit dans 4.2.7. </li></ol> 6. Soins post-opérationnelle et surveillance <ol><li> Après l&#39;intervention chirurgicale est terminée, placer la souris dans la zone de récupération. Cela consiste en une cage placée sur un coussin chauffant et bordée plat literie de papier afin de maintenir la température normale du corps. </li><li> Fournir un soutien nutritionnel pour éviter l&#39;hypoglycémie post-opératoire par la nourriture humide placé sur le fond de la cage. A cet effet, utilisez des pastilles de régime standard pour rongeurs trempées dans l&#39;eau jusqu&#39;à ce qu&#39;ils ramollissent. </li><li> Fournir un soutien fluide par la nourriture humide et de fournir de l&#39;eau ad libitum. </li><li> Utilisez buprénorphine analgésie (0,05 à 0,1 mg / kg) deux fois par jour pendant 2 jours post-chirurgie. Pendant toute la durée expérimentale, suivi, observe la souris pour apparition de signes possibles d&#39;infection, y compris la sécrétion de liquide ou de pus de la plaie ou de la détérioration physique caractérisé par une réduction dans le comportement et le niveau d&#39;activité de toilettage, faible appétit et la perte de poids corporel. </li></ol> 7. L&#39;évaluation réussie de PDL et de récolte des PDL Tail et Sham queue du pancréas <ol><li> Euthanasier les souris par dislocation cervicale. </li><li> Re-raser la région abdominale pour éviter report de la fourrure. </li><li> Ouvrez la couche de la peau et des muscles abdominaux et supprimer une grande surface de la peau et des muscles pour obtenir un bon accès au pancréas. </li><li> En utilisant des pinces stériles ou coton-tige, l&#39;estomac est rétracté supérieurement, l&#39;exposition de la rate et le lobe splénique (la région de la queue) du pancréas. </li><li> Tirez doucement sur le duodénum et du jéjunum partie supérieure pour exposer le lobe de gastro-duodénale (région de la tête) du pancréas. Remarque: La partie ligaturé du pancréas PDL a maintenant réduit en taille et en est devenu presquetranslucide de telle sorte que les îlots sont visibles sous forme de petits points blancs. La partie de tête du pancréas est rose opaque et exocrine distincte lobules peut être observée. </li><li> Avec des ciseaux stériles, séparer la partie arrière ligaturé du pancréas de la rate, en coupant le long de la rate. Couper le tissu conjonctif lâche reliant la région de la queue du pancréas à des organes internes. </li><li> Couper la région de la queue PDL juste en face de la ligature, à l&#39;exclusion de la ligature et le tissu immédiatement adjacent à elle à partir du tissu récolté. </li><li> Pour isoler le tissu de queue imposture, suivez les étapes 7.1 à 7.5. L&#39;aide de ciseaux stériles séparent la région de la queue du pancréas simulacre de la rate en coupant le long de la rate. Isoler la zone de queue en coupant dans la région du cou du pancréas et coupe le tissu conjonctif lâche reliant la queue du pancréas aux organes internes Remarque: Les deux la queue et la région de la tête du pancréas fictives sont rose opaque, pour isoler les deux parties séparément,couper le pancréas dans la région du cou. </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

In the present study, we describe in detail the methodology behind PDL, a mouse injury model to study beta cell neogenesis and proliferation and transdifferentiation of pancreatic non-beta cells. Ambiguity in data on PDL among labs stimulates the need for a standardized protocol for PDL surgery.
Critical steps in the PDL protocol include the selection of healthy, young mice for surgery. Preferably male mice should be used since unpublished data from our lab suggest that estrogen receptor signa...

La prévalence croissante du diabète, qui touche plus de 300 millions de personnes 1,2 à l&#39;échelle mondiale a stimulé la recherche de nouvelles sources de cellules bêta productrices d&#39;insuline, à la fois in vitro et in vivo, pour reconstituer la masse des cellules bêta déficient. 3 Identification clé des mécanismes et des facteurs qui régulent la prolifération des cellules bêta et bêta néogenèse cellulaire, à savoir, la différenciation des cellules bêta à partir d&#39;une cellule ou de cellules progénitrices non-bêta, peuvent fournir de nouvelles cibles pour le développement de thérapies régénératrices dans le diabète. Dans le pancréas des rongeurs en développement, l&#39;ensemble des types de cellules du système endocrinien différencient à partir d&#39;une population transitoire de cellules endocrines progénitrices exprimant le facteur de transcription Neurogenin3 (Ngn3) 4,5. Dans le pancréas de rongeur adulte, dans les conditions physiologiques normales, la masse des cellules bêta est maintenu à un nombre optimal pour répondre aux besoins métaboliques. Les variations de taille des cellules bêta,l&#39;apoptose et la réplication constituent les principaux mécanismes d&#39;expansion des cellules bêta et turn-over. 8.6 Bien que le potentiel des cellules bêta à proliférer dans des conditions physiologiques normales est homogène dans toute la population, 9 leur vitesse de prolifération est faible et re-réplication est restreinte par une période dynamique de repos ou la période réfractaire 6,7, influencé par l&#39;âge et le métabolisme du glucose. 10 Comme les cellules endocrines précurseurs ont jusqu&#39;à présent pas été identifiés dans le pancréas adulte normal, néogenèse On pense que pas contribuer à la croissance des cellules bêta adulte normal. 8 Par conséquent, l&#39;identification d&#39;une cellule progénitrice facultative endocrine du pancréas adulte qui est extensible et capable de produire de nouvelles cellules bêta pourrait fournir une nouvelle, éventuellement source illimitée de cellules bêta. Partiel ligature du canal (PDL) est un modèle de lésion des animaux qui a été décrit pour induire neogenesi des cellules bêtas dans le pancréas adulte. 11,12 Dans ce modèle, le canal pancréatique principal drainant la queue du pancréas est ligaturée chirurgicalement. L&#39;obstruction résultant de drainage exocrine induit le remodelage tissulaire importante, accompagnée d&#39;inflammation et acineuses atrophie distale par rapport à la ligature. 12-14 Dans ce contexte inflammatoire, ré-expression du marqueur endocrine progénitrices Ngn3 est induite et le volume des cellules bêta augmente double . Ce doublement de la bêta résultats du volume de la cellule à partir de la génération de nouvelles cellules bêta à partir d&#39;un Ngn3 exprimant de type embryonnaire cellule endocrinien progénitrices et de la prolifération des cellules bêta pré-existantes et nouvellement formés qui sont sujettes à re-duplication sans &quot;période de repos&quot;. 11,15 Néogenèse des cellules bêta et la réplication dans les modèles de préjudice, tels que pancréatectomie 6,7,16-19 et l&#39;ablation sélective des cellules bêta 20 ont été largement décrits. Toutefois, le résultat de régénération dans thesmodèles de e est influencée par l&#39;ampleur des dommages infligés et est associé à une version bêta initiale masse cellulaire diminué 21. PDL est un modèle chirurgical dans lequel la masse initiale des cellules bêta ne soit pas affectée et la néogenèse des cellules bêta et à la prolifération sont solidement activé. En effet, dans le pancréas de souris qui ont subi PDL, les cellules exprimant Ngn3 sont identifiés à proximité de l&#39;épithélium du conduit. Ces cellules peuvent être isolées à partir du pancréas de souris transgéniques ligaturés Ngn3-GFP en utilisant tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) et sont capables de se différencier vers les cellules bêta fonctionnelles suivant la prise de greffe et en culture ex vivo du pancréas de Ngn3 E12.5 - / - . souris 11 De même, dans Ngn3 CreERT;. souris R26 YFP dans lequel les cellules qui ont activé le gène Ngn3 sont étiquetés de façon permanente après l&#39;injection tamoxifène, les cellules bêta Ngn3 dérivées de cellules étiquette positif est détecté après PDL 15 outre, les cellules bêta nouvellement formées diluer pré -existing cellules bêta et localiser préférentiellement dans les petits îlots dans lequel les cellules bêta présentent un potentiel de prolifération élevé. 15 Ngn3 est important pour l&#39;expansion des cellules bêta après PDL depuis diminution de l&#39;expression Ngn3 en utilisant l&#39;ARN court en épingle à cheveux spécifique d&#39;une cible diminue de manière significative la masse des cellules bêta et à la prolifération des cellules bêta après PDL. 11 En particulier, la fraction des cellules bêta dérivés de cellules Ngn3 et la masse des cellules bêta après PDL dépend essentiellement du niveau de Ngn3 induction 15. Ceci est en accord avec l&#39;observation que de haut niveau d&#39;expression Ngn3 est une étape cruciale pour l&#39;engagement endocrinien à partir de progéniteurs pancréatiques multipotentes pendant le développement pancréatique 22 En outre, l&#39;ablation sélective de Ngn3 cellules exprimant par l&#39;administration diphtérie-toxine Ngn3 CreERT;. Souris R26 IDTR résultats de la teneur en insuline et une diminution réduit la prolifération des cellules bêta, en particulier dans les petits îlots. 15 <pclass = &quot;jove_content&quot;&gt; Bien que l&#39;induction de l&#39;expression Ngn3 dans les cellules des canaux après PDL a été confirmée par de nombreux 11,15,16,23,24, expression Ngn3 dans les îlots de cellules 24,25 et des écarts dans l&#39;issue du PDL a mis nos premières observations de l&#39;augmentation de la masse des cellules bêta 26,27, l&#39;allure de Ngn3 endocriniens progéniteurs exprimant de conduits dérivés 24,26,28,29, et l&#39;augmentation de la prolifération des cellules bêta 27 après PDL. 30 Ces résultats contradictoires pourraient, au moins partiellement, être attribués à une combinaison de facteurs, y compris les variations dans les points de temps post-chirurgicales de l&#39;analyse, le poids, le sexe et l&#39;âge des souris, les conditions physiologiques et environnementales post-opératoires et, plus important encore, différences dans la technique chirurgicale. 30 Dans nos mains, la prolifération des cellules bêta, le contenu de l&#39;insuline, le volume des cellules bêta et le nombre de petits îlots sont constamment augmenté après PDL. AussiNgn3 ARNm augmente constamment, mais il ya de grandes différences dans l&#39;expression de l&#39;ARNm Ngn3 entre PDL queue pancréas, pour lequel nous avons aucune explication directe. Nous émettons l&#39;hypothèse que le niveau d&#39;ARNm Ngn3 pourrait corréler avec le degré de néogenèse des cellules bêta à partir de cellules non-bêta 15, mais il faut d&#39;autres justifications. Bien qu&#39;il ne supprime pas toutes les variations expérimentales, une méthode standardisée pour effectuer la chirurgie PDL permet une meilleure uniformité dans les résultats et ouvre de nouvelles voies dans l&#39;étude de la prolifération des cellules bêta et néogénèse.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Supplies for preparation area&#160;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hibiscrub&#160;</td>
			<td>Regent Medical</td>
			<td>5601IE5F11</td>
			<td>Chlorhexidin diglucon</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamin</td>
			<td>Ceva</td>
			<td>BE-V202526</td>
			<td>anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rompun(2%) (Xylazin)</td>
			<td>Bayer</td>
			<td>BE-V041815</td>
			<td>anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Duratears</td>
			<td>Alcon</td>
			<td>34335-8</td>
			<td>ointment for eyes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Razor</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Supplies for surgical area&#160;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leica Operating microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>10446320</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hot bead sterilizer</td>
			<td>Fine Science Tools (FST)</td>
			<td>18000-45</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>autoclaved surgical instruments</td>
			<td>Fine Science Tools (FST)</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recirclulating water heating pad</td>
			<td>Gaymar Industries, Inc.</td>
			<td>TP702</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adhesive OP-towel</td>
			<td>BARRIER</td>
			<td>706500-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OP-tape</td>
			<td>BARRIER</td>
			<td>381035-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stella 3/5 Compresse de gaze (Sterile)</td>
			<td>Lohmann&#38;Rauscher International</td>
			<td>35968</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mini Plasco 0,9% NaCl solution</td>
			<td>B.BRAUN</td>
			<td>3521680</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-0 prolene suture</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>8706H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-0 polyglycol suture</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>SL-607</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Supplies for recovery area</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paper bedding (paper towel)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vetergesic</td>
			<td>ecuPhar</td>
			<td>BE-V342955</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Materials for analysis</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Taqman Ngn3 primer</td>
			<td>Integrated DNA technologies</td>
			<td>Mm.PT.56a.33574796.gs</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Taqman CycloA primer</td>
			<td>Integrated DNA technologies</td>
			<td>Mm.PT.39a.2.gs</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-Rabbit Cleaved Caspase 3 antibody (D175)</td>
			<td>Cell Signaling</td>
			<td>5A1E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-mouse/rat Ki67 antibody</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>14-5698-82</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>monoclonal anti-actin alpha-Smooth muscle-Cy3 (mouse)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>085K4889</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anti-rat Cytokeratin 19&#160;</td>
			<td>DSHB</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>monoclonal Mouse anti-BrdU</td>
			<td>Dako</td>
			<td>M0744</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hoechst</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>33342</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

surgical injury to the mouse pancreas through ligation of the pancreatic duct as a model for endocrine and exocrine reprogramming and proliferation

L&#39;expansion des cellules bêta du pancréas in vivo ou ex vivo, ou la production de cellules bêta par différenciation d&#39;une cellule souche embryonnaire ou adulte, peut fournir de nouvelles sources expansibles de cellules bêta pour atténuer la rareté des donneurs dans la transplantation d&#39;îlots humains en tant que traitement pour le diabète. Bien que les progrès récents ont été accomplis en vue de cet objectif, les mécanismes qui régulent l&#39;expansion des cellules bêta et la différenciation d&#39;une cellule souches / progénitrices restent à être caractérisé. Ici, nous décrivons un protocole pour un modèle de lésion dans le pancréas de souris adulte qui peut fonctionner comme un outil pour étudier les mécanismes de remodelage tissulaire et une prolifération des cellules bêta et la différenciation. Ligature partielle conduit (PDL) est une lésion induite expérimentalement du pancréas de rongeur impliquant la ligature chirurgicale du canal pancréatique principal qui entraîne une obstruction de drainage de produits exocrines hors de la région de la queue du pancréas. Les dommages infligés induit une atrophie acineuse, infilt des cellules immunitairesration et sévère remodelage tissulaire. Nous avons précédemment rapporté l&#39;activation de Neurogenin (NGN) 3 cellules progénitrices exprimant analogue endogènes et une augmentation de la prolifération des cellules bêta après PDL. Par conséquent, PDL fournit une base pour étudier les signaux impliqués dans la dynamique des cellules bêta et les propriétés d&#39;un progéniteur endocrinien dans le pancréas adulte. Depuis, il reste encore largement incertaine, quels sont les facteurs et les voies contribuent à la néogenèse des cellules bêta et la prolifération dans PDL, un protocole standardisé pour PDL permettre une comparaison entre laboratoires.

PDL induit une atrophie acineuse et l&#39;inflammation, mais ne modifie pas le poids corporel et la glycémie Dans l&#39;ancienne souris mâles BALB / c de 8 semaines, le conduit de drainage les enzymes exocrines de la queue du pancréas est ligaturé tandis que la tête de l&#39;organe, situé à côté de l&#39;estomac et du duodénum, ​​reste inchangée. Âge, sexe et souris mâles BALB / c de poids appariés subissent une intervention chirurgicale fictive récapitula...

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Surgical Injury to the Mouse Pancreas through Ligation of the Pancreatic Duct as a Model for Endocrine and Exocrine Reprogramming and Proliferation

This protocol describes an injury model involving the surgical ligation of the pancreatic duct in the adult mouse pancreas, resulting in severe injury that establishes an environment that allows beta cell neogenesis and proliferation. This model can be used as a tool to study mechanisms involved in beta cell formation.

Blessure chirurgicale au pancréas de souris par ligature du canal pancréatique tant que modèle de endocrines et exocrines Reprogrammation et prolifération

Expansion of pancreatic beta cells in vivo or ex vivo, or generation of beta cells by differentiation from an embryonic or adult stem cell, can provide ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

16.0K vues.  Vrije Universiteit Brussel. This protocol describes an injury model involving the surgical ligation of the pancreatic duct in the adult mouse pancreas, resulting in severe injury that establishes an environment that allows beta cell neogenesis and proliferation. This model can be used as a tool to study mechanisms involved in beta cell formation. 

Vidéo: Surgical Injury to the Mouse Pancreas through Ligation of the Pancreatic Duct as a Model for Endocrine and Exocrine Reprogramming and Proliferation