La myopathie auriculaire peut entraîner une fibrillation auriculaire, qui est l’arythmie la plus courante chez l’homme. Le modèle de péricardite stérile est un modèle animal fiable et de grande taille qui ressemble à la pathogenèse de la myopathie auriculaire. Ce modèle fournit une induction rapide de la myopathie auriculaire en quelques semaines.
En outre, des études d’électrophysiologie répétées peuvent facilement être effectuées dans une période de suivi sans avoir besoin de cathétérismes répétés. En raison de la similitude de l’anatomie et de la physiologie par rapport aux humains, le modèle minipig présenté ici peut être utilisé pour étudier la physiopathologie de la myopathie auriculaire et de la fibrillation auriculaire, mais peut également être utilisé dans la découverte préclinique de médicaments. Commencez par préparer le système conducteur de pression.
Ajouter 5 000 unités internationales d’héparine à un sac IV contenant 500 millilitres de solution saline à 0,9 %. Placez l’animal en position couchée, puis étendez la jambe et localisez l’artère fémorale à l’aide d’ultrasons avec la sonde vasculaire dans le cadre carotidien. Désinfecter la zone inguinale avec de la chlorhexidine.
Perforez l’artère fémorale à l’aide d’un guidage échographique et insérez une gaine de 3 Français à l’aide de la technique Seldinger. Fixez la gaine avec la suture et connectez-la au transducteur pour rincer. Surveillez la pression artérielle en temps réel.
Faites une incision de cinq centimètres dans le sillon à la bordure médiale du muscle sternocléidomastoïdien. Ensuite, disséquez carrément jusqu’à ce que la veine jugulaire interne soit atteinte. Retirez le tissu fibreux autour de la veine et placez une suture carrée Prolene 6 par 0 autour du site de cathétérisme souhaité pour obtenir le contrôle des vaisseaux.
Canulez la veine jugulaire interne avec un CVC à triple lumière de 3 Français en utilisant la technique de Seldinger. Ensuite, serrez la suture Prolene 6-0 autour du cathéter. Fixez la poignée du cathéter sur le muscle sternocléidomastoïdien.
Tunneliser les trois luminaires du cathéter séparément et fixer fermement les extrémités à la peau. Mettez sur l’orifice d’injection sans aiguille, puis fermez le site d’incision en deux couches. Faites une incision médiane manubrium du sternum à trois centimètres en dessous du processus xiphoïde jusqu’à ce que le sternum devienne apparent.
Disséquez carrément caudalement du processus xiphoïde. Placez un doigt ou des ciseaux à dissection émoussés sur le côté viscéral du sternum et retirez le tissu conjonctif en suivant la surface sternale viscérale autant que possible. Utilisez la scie à sternum pour fendre le sternum.
Utilisez ensuite l’épandeur de sternum pour élargir l’accès à la cavité thoracique, en évitant d’endommager la plèvre. Ouvrez soigneusement le péricarde et utilisez des sutures de suspension pour le garder hors du champ chirurgical. Après avoir testé le mécanisme d’extension et de rétraction de la vis de fixation du plomb, placez la pointe du plomb sur une pince incurvée et courbez le stylet de 60 degrés, si nécessaire.
Mettez une compresse sur le ventricule gauche et tirez-la doucement de côté pour avoir une vue sur l’oreillette gauche. Lors de la visualisation de l’oreillette gauche, placez fermement la pointe de plomb sur sa paroi aussi près que possible des veines pulmonaires et aussi loin que possible du ventricule. Vissez-le en étendant l’hélice dans le tissu auriculaire, de préférence avec une légère inclinaison.
Travaillez rapidement et relâchez immédiatement la pression sur le ventricule gauche. Mesurez le seuil de détection et de stimulation et l’impédance du plomb à l’aide d’un stimulateur électrique programmable ou d’un stimulateur cardiaque. S’assurer qu’il n’y a pas de surpersure ventriculaire lors de la stimulation à haute tension.
Placez une sonde de stimulateur cardiaque sur l’oreillette droite complètement analogue à la mise en place de la sonde auriculaire gauche. S’assurer que les deux fils quittent le thorax à la ligne médiane. Le plomb auriculaire gauche doit être creusé dans la graisse sous-cutanée abdominale du processus xiphoïde vers le flanc gauche et le plomb auriculaire droit vers le flanc droit.
Faites une poche de stimulateur cardiaque dans la graisse sous-cutanée sur les flancs gauche et droit du cochon. Connectez un stimulateur cardiaque capable d’effectuer une stimulation en rafale de 50 Hertz avec le plomb auriculaire gauche et un stimulateur cardiaque d’un autre fabricant avec le fil d’oreillette droit, puis placez-les dans les poches. Exposez à nouveau les oreillettes en écartant doucement les ventricules, puis couvrez les ventricules avec de la gaze.
Vaporisez du talc stérile sur la surface épicardique des deux oreillettes à l’aide du distributeur. Laissez une couche de gaze stérile sur la surface épicardique des oreillettes. Vérifiez une dernière fois la position des sondes du stimulateur cardiaque avant de commencer la fermeture.
Fermez le péricarde à l’aide du monocryl 3-0 et le sternum à l’aide du fil d’acier inoxydable, puis fermez le sous-cutané et la peau à l’aide de Vicryl zero et de monocryl 3-0, respectivement. Une fois la plaie sternale guérie, pesez à nouveau le cochon pour le suivi, puis placez l’animal dans une écharpe de retenue et amenez-le au bloc opératoire. Fixez l’ECG et la surveillance de la saturation et placez les têtes du programmeur sur leurs stimulateurs cardiaques correspondants.
Interrogez le stimulateur cardiaque. Vérifiez les paramètres du stimulateur cardiaque pour l’apparition d’une FA spontanée. Un avertissement ventriculaire est normal lors de l’utilisation d’un stimulateur cardiaque à double chambre. Déterminez l’impédance, les seuils de détection et de stimulation.
Déterminer la période réfractaire effective auriculaire approximative de la durée de cycle la plus courte à laquelle une capture de rapport de un pour un est maintenue pendant la stimulation de l’éclatement. Déterminer le temps de conduction entre les sondes auriculaires gauche et droite en mesurant le temps entre l’initiation du pic de stimulation et la dépolarisation auriculaire sur le plomb auriculaire droit. Exécutez trois protocoles comme décrit dans le manuscrit textuel.
En notant la durée de la FA et l’inductibilité de la FA pour chaque protocole, permettez ensuite à l’animal de se réveiller ou de poursuivre d’autres procédures. Une augmentation progressive du seuil de tension et de l’impédance du plomb auriculaire gauche a été observée au fil du temps, indiquant une fibrose accrue. Les protocoles de stimulation préjudiciable et de stimulation en rafale de 50 Hertz ont eu plus de succès que le protocole AERP plus 30 millisecondes.
L’inductibilité de la FA a commencé à augmenter deux semaines après la chirurgie jusqu’à environ 25% Le protocole AERP plus 30 millisecondes était le moins efficace, montrant une inductibilité AF d’environ 10%. La stimulation préjudiciable et la stimulation en rafale de 50 Hertz ont augmenté l’inductibilité AF à environ 40% Cet électrogramme auriculaire du stimulateur cardiaque auriculaire gauche montre l’induction d’un épisode de FA après cinq secondes de stimulation en rafale de 50 Hertz. Alors que dans celui-ci, il n’y a pas d’induction AF.
La coloration trichrome du tissu auriculaire gauche par Masson a montré des niveaux plus élevés de fibrose interstitielle ou paravasculaire chez les animaux de péricardite stérile par rapport aux simulacres. La quantification en aveugle du pourcentage de la surface du tissu fibrotique bleu par rapport à la zone myocardique totale a montré que la péricardite stérile induit plus de fibrose paravasculaire et interstitielle dans le tissu auriculaire que la chirurgie simulée. Le plus important est d’obtenir un bon positionnement des fils du stimulateur cardiaque avec un seuil de tension adéquat et sans capture ventriculaire.
Il est très difficile de corriger les problèmes avec les sondes de stimulateur cardiaque après la chirurgie initiale car la fibrose étendue observée dans ce modèle interdit le remplacement des sondes. Ce protocole se concentre sur les études chirurgicales et électrophysiologiques, mais le modèle peut également être utilisé pour l’histologie et l’imagerie cardiaque, y compris la tomodensitométrie et l’IRM. En outre, par rapport aux rongeurs, la plus grande quantité de tissu auriculaire permet des études transcriptomiques et protéomiques détaillées.
