במדידת vivo של שכבת פני שטח האנדותל ריאתי המאוסה

Summary

שכבת פני שטח glycocalyx / אנדותל האנדותל היא למד באופן אידיאלי באמצעות מיקרוסקופ intravital. מיקרוסקופיה Intravital טכני מאתגרת באיבר מרגש כגון ריאות. אנחנו מדגימים איך brightfield סימולטני ומיקרוסקופיה ניאון ניתן להשתמש כדי להעריך את עובי שכבת פני שטח האנדותל שבנע בחופשיות, In vivo ריאות עכבר.

Abstract

Glycocalyx אנדותל הוא שכבה של proteoglycans וglycosaminoglycans הנלווה המצפה את חלל כלי הדם. בחי, glycocalyx הוא hydrated מאוד, ויצר שכבת האנדותל משמעותית משטח (ESL) שתורמת לשמירה על תפקוד האנדותל. כglycocalyx האנדותל הוא לעתים קרובות סוטה במבחנה והוא אבד במהלך טכניקות קיבוע רקמות הרגילות, מחקר של ESL דורש שימוש במיקרוסקופ intravital. כדי להתקרב לפיסיולוגיה המורכבת ביותר של microvasculature מכתשיים, הדמית intravital ריאה מבוצעת באופן אידיאלי על ריאות באופן חופשי אל לב. הכנות אלה, עם זאת, בדרך כלל סובלות מחפץ תנועה נרחבת. אנחנו מדגימים איך מיקרוסקופיה intravital סגור חזה של ריאת עכבר שנע בחופשיות, יכולה לשמש למדידת תקינות glycocalyx באמצעות הדרה של ESL dextrans משקל המולקולרי שכותרת-fluorescently הגבוה ממשטח אנדותל. טכניקה זו אינה התאוששות אחרי ניתוח, שדורשתbrightfield בו זמנית והדמית ניאון של ריאת העכבר, מאפשרים תצפית אורך של microvasculature subpleural ללא עדות לגרימת פציעת ריאות בלבול.

Introduction

Glycocalyx אנדותל הוא שכבה תאית של proteoglycans וglycosaminoglycans הנלווה המצפה את כלי דם אינטימה. בחי, glycocalyx הוא hydrated מאוד, ויצר שכבת האנדותל משמעותית משטח (ESL), המסדירה מגוון רחב של פונקציות אנדותל כולל חדירות נוזלי ^1, נויטרופילים אנדותל- הידבקות ^2, וmechanotransduction של ³ מאמץ גזירת נוזל.

מבחינה הסטורית, glycocalyx היה מוערך בשל aberrance בהכנות בתרבית תאים ^{4, 5} והשפלתה במהלך קיבוע רקמה הסטנדרטי ועיבוד ^6. השימוש הגובר ⁷ של מיקרוסקופיה intravital (במיקרוסקופ vivo, IVM) שעלה בקנה אחד עם עניין מדעי מוגבר בחשיבות של ESL לתפקוד כלי דם במהלך מחלה ובריאות. ESL הוא בלתי נראה למיקרוסקופ אור ולא יכול להיות מתויג בקלותvivo, בהתחשב בנטייה של קטיני ניאון glycocalyx מחייבים לגרום להתלכדות RBC ⁸ ותסחיפי ריאות קטלניים (תצפיות שלא פורסמו). גישות עקיפות אחדות לכן פותחו להסיק עובי ESL (ובהרחבה, יושרת glycocalyx) במיטות שאינן נעות וסקולריים כגון microcirculations cremasteric וmesenteric. טכניקות אלו כוללות מדידה של הבדלים במהירות במחזור microparticle כפונקציה של מרחק מקרום אנדותל (velocimetry תמונת microparticle ⁹⁾ כמו גם המדידה של ההדרה של סמנים מגושמים, fluorescently כותרת וכלי דם (למשל dextrans) ממשטח אנדותל (טכניקת dextran הדרת ^{10, 11).} טכניקות אלו, רק הדרת dextran מסוגלת לאמוד עובי ESL ממדידות שנעשו בנקודה אחת בזמן. על ידי מדידת רוחב כלי דם בו זמנית באמצעות מיקרוסקופיה brightfield (רוחב בclusive של ESL "בלתי נראה"), ומיקרוסקופיה ניאון של נותב כלי דם הוצא מESL, עובי ESL ניתן לחשב כמחצית ההפרש בין רוחב כלי דם ^2.

השימוש באמצעי מיידי של עובי ESL הוא מותאם היטב ללימוד glycocalyx ריאתי. מיקרוסקופיה Intravital של הריאות היא מאתגרת, בהתחשב בחפץ לב וריאות תנועה משמעותי. למרות התקדמות שחל באחרונה לאפשר לקיבוע של ריאות עכבר ^{ב12 vivo, 13,} חששות קיימים לגבי ההשפעה הפיזיולוגית של ריאות קיפאון. חוסר תנועת ריאות קשור בתחמוצת חנקן האנדותל ירד איתות ^14, מסלול איתות המשפיע גם הידבקות נויטרופילים ¹⁵ ופציעה ¹⁶ ריאות. יתר על כן, קיבוע של אזור של ריאה חושפת מקיף alveoli הנייד לכוחות גזירה שפגיעתו (מה שנקרא "atelectrauma"), בהתאם למושגים הפיסיולוגיים הקלסיים שלתלות הדדית מכתשיים ^17.

בשנת 2008, אראטה Tabuchi, וולפגנג Kuebler ועמיתיו פתחו טכניקת ניתוח המאפשרת למיקרוסקופיה intravital של ריאת עכבר שנע ^{בחופשיות-18.} חפץ נשימה הנובע מטכניקה זו ניתן לשלול על ידי שימוש בהדמיה במהירות גבוהה, כולל מדידה סימולטנית של brightfield ומיקרוסקופ פלואורסצנטי. בדו"ח זה, אנו פירוט כיצד הדמית הדרת dextran מיידית יכולה להיות מועסקת על מנת למדוד את עובי ESL בזרימת דם subpleural של שנע בחופשיות-, in vivo ריאות עכבר. טכניקה זו ניתן לשנות בקלות כדי לקבוע glycocalyx פונקציה ספציפית, יכולתו של שלם ESL שלא לכלול במחזור אלמנטים ממשטח אנדותל. אנחנו השתמשנו בטכניקות אלה לאחרונה כדי לקבוע את החשיבות של יושרת ESL ריאתי להתפתחות פציעת ריאות חריפה במחלות דלקתיות מערכתיות כגון אלח דם ^2.

Protocol

1. הכנת אבובי כירורגים, צנתרי כלי דם, חלון קיר חזה

1. שלב מיקרוסקופיה Intravital. אנו מחוייט שלב פרספקס עליו את העכבר מורדם טמון במיקרוסקופ. שלב זה מכיל שני של 15 סנטימטר על ידי פורום 10 סנטימטרי פלסטיק גמיש חיתוך (שעל העכבר נמצא במהלך אינדוקציה של הרדמה, מיקום הנשמה, וצנתור ורידים), כמו גם גוף חימום בגודל דומה-(ממוקם מתחת לקרש החיתוך).
2. הכנת עכבר thoracostomy צינור (איור 1). אורך 10 סנטימטרים של 50 צינורות PE (Intramedic, 0.58 מ"מ הפנימי קוטר, קוטר חיצוני 0.965 מ"מ) הוא לחתוך. קצה אחד מחובר לקצה הקהה של מחט מד מעוגלת 23; מחט זה ישמש כדי להעביר את הצינור דרך קיר בית החזה (בתוך מחוץ →) לפני סגירת חלון בית החזה.
   הסוף הדיסטלי של הצינור (1.5 סנטימטרים באורך, מנוגדים ל23 מד המצורףמחט) שוב ושוב הוא נקב על ידי מחט מד 30, יצירה "יציאות לוואי" כדי להקל על שאיפה יעילה של אוויר intrathoracic.
   אז חלק fenestrated הוא מופרד משאר הצינור על ידי מספר לולאות היקפיות של תפר משי 04:00; לולאות אלה תשמשנה "פקק", בסופו עיגון 1.5 הסנטימטרים fenestrated חלק בתוך חלל החזה.
3. צנתרי ורידי צוואר. שני אורכים 15 סנטימטר של 10 צינורות PE (Intramedic, קוטר 0.28 מ"מ פנימי, קוטר חיצוני 0.61 מ"מ) נחתכים. אזמל משמש לפוע קצות הצינור, ובכך להגדיל את קלויות venipuncture. הצינורות הוא הסמיק באמצעות מזרק 1 מ"ל המכיל 6% פתרון 150 kDa dextran (ב PBS) המצורף בסוף שאינו המשופע של הצינורות.
4. קרום polyvinylidene שקוף (ניו ק.א.ר. גלישה, Kuresha, טוקיו) הכנת חזה קיר חלון (איור 2). נחתכה לצורת אליפסה (6 סנטימטרי ציר מרכזיים, 4 סנטימטר ציר משני). 5 מ"מ מעגלי # 1 coverslip (Bellco) מודבקת בקרום באמצעות דבק α-cyanoacrylate (Pattex flüssig, הנקל, דיסלדורף).
5. . צינור לזירוז pneumothorax ("צינור מכה") 10 סנטימטר אורך של צינור (קוטר פנימי 3 מ"מ, קוטר חיצוני 5 מ"מ) מחובר למזרק 5 מ"ל; הקצה השני ישמש להציג את האוויר לתוך כלוב חזה החיה לפני engraftment חלון קיר החזה.
6. מזרק לטבילה במימיו של אובייקטיבי. מחט מד 23 מצורף מזרק המכיל 30 מיליליטר מים מזוקקים. קצה המחט שקהה (באמצעות קובץ מתכת) על מנת למנוע ניזק למטרה.

2. הרדמה מאוסה

1. עכבר הוא מורדם בתערובת של קטמין (10 מ"ג / מ"ל) וxylazine (2 מ"ג / מ"ל), intraperitoneally ניתן במינון של 8 μl למשקל גוף עכבר גרם. סדציה מתרחשת תוך 3 - 6 דקות ולא צריך לעכב נשימה ספונטנית.
2. שימוש במכונת גילוח, גילוחגרון, חזה, בטן, והצד ימני של העכבר.
3. באמצעות קלטת, לאבטח את העכבר לקרש חיתוך פלסטיק דק. הראש של העכבר צריך להצביע לכיוון המפעיל (איור 3). מתח עדין שסופק על ידי לולאה של פטירת תפר מתחת לשיניים העליונות משמש כדי לשמור על ראש שלוחה. קרש החיתוך מונח על כרית חימום, שמירת euthermia עכבר במהלך הנשמה ומיקום קטטר ורידים.
4. אזורים רטובים מגולחים עם אתנול 100%.
5. לאשר הרדמה נאותה עם קמצוץ זנב / כפה. המשך אם תגובה מינימאלית; לספק בולוס נוסף של קטמין / xylazine אם לא כראוי מורדם.

3. טרכאוסטומיה

1. חתך 1 סנטימטר נעשה על הגרון. רקמת חיבור בסיסית מנותחת, ובלוטות הרוק מופרדות ושקפו רוחביים. מייד השריר הקדמי לקנה הנשימה sternohyoid הוא לכרות את הגידול.
2. לולאה של תפר 04:00 הוא התקדם תחת הדואר קנה נשימה (איור 4). אז לולאה היא לחתוך, יצירת שני גדילים נפרדים של תפר שבבסיס קנה הנשימה. תפר הזנב ישמש כדי לאבטח את צינור ההנשמה; תפר הגולגולת ישמש כדי לספק מתח בקנה הנשימה במהלך שמת הנשמה.
3. השימוש בשתי אצבעות, התפר העליון נקלט ומתח עדין חל על קנה הנשימה. חתך אופקי נעשה בקנה הנשימה העליונה ובין תפרים נמוכים יותר. חתך זה צריך לעבור כשני שלישים מההיקף קנה הנשימה. צינור הנשמת אוגן (הרווארד Apparatus, קוטר חיצוני 1.22 מ"מ) מוכנס לתוך קנה נשימת דיסטלי ומאובטח למקומו באמצעות תפרים קנו נשימת הזנב.
4. ההנשמה מחוברת למכונת נשמת חיה קטנה נפח מבוקרת (אינספירה, הרווארד Apparatus), והעכבר מאוורר עם חמצן השראה 40% וכרכי 9 מ"ל / קילו גאות (הגדרות מותאמות כדי לשמור על חמצון / אוורור מתאים במעבדה שלנו). חיובילחץ tive סוף הנשיפה (PEEP) לא התחיל בשלב זה. מן ראוי לציין כי הגדרות הנשמה צריכות להיות מותאמות לתנאים ייחודיים במעבדות בודדות. אורכים שונים של צינורות מיותרים (חוצץ בין ה-Y מחבר צינורות ההנשמה וההנשמה) ניתן להשתמש כדי להתאים את השטח מת, כדי להבטיח אוורור מכתשיים יציב לכל נפח גאות בחר.

4. צנתור ורידים

1. הצומת של עורק הצוואר הפנימי וחיצוני יכולה להיות מזוהית על ידי מעקב ענפי ורידים הדיסטליים proximally. הצוואר החיצוני נמצא מתחת לבלוטות הרוק משתקפת; זה יכול להיות נעוצי proximally למצוא צומת הצוואר חיצוני-הפנימית.
2. השתמש נתיחה בוטה עדינה להפריד צומת הצוואר מרקמות חיבור.
3. שימוש בתפרים 04:00, לקשור את ורידי הצוואר והפנימיים וריד הצוואר החיצוניים דיסטלי (גולגולת) עד לצומת הצוואר.
4. לעשות חתך קטן לקארינהלצומת הצוואר; דימום צריך להיות מינימאלי.
5. שני צנתרים יכולים להיות מתקדמים בהדרגה דרך החתך בתא המטען והצוואר. לאחר שאיפה עדינה, כדי להבטיח תמורת דם, צנתרים מובטחים בתוך הווריד באמצעות תפרים 04:00.
6. צנתרי ורידי קלטת לקרש חיתוך כדי למנוע נגד ליפה לא מכוון.

5. כירורגיה Intravital עכבר ריאות מיקרוסקופית (מותאם Tabuchi et al. ¹⁸⁾

1. קרש החיתוך (המכיל עכבר המאופק, הרדים כמו גם צנתרי ורידים מוקלטים) הוא עבר לשלב מיקרוסקופיה intravital, שבו בצעה את התערבויות כירורגיות הנותרות. בדיקה רקטלית טמפרטורה ממוקמת; ממשקים זה עם מערכת חימום אדפטיבית (ממוקם מתחת לקרש החיתוך), ומאפשרת תחזוקה של euthermia עכבר.
2. צנתר ורידי צוואר אחד מחובר למשאבת מזרק שמספקת קטמין (10 מ"ג / מ"ל)-xylazine (2 מ"ג / מ"ל)תערובת ב 200 μl לשעה. הרדמה נאותה הוא אשר שוב באמצעות זנב / קמצוץ כפה.
3. חתך קו אמצעו הוארך מהצוואר ועד תהליך xyphoid, אז שימשיך רוחבי לצד ימין (איור 5).
4. שימוש electrocautery, שרירי חזו הוסר, חשיפת כלוב בית החזה. טיפול נלקח כדי להבטיח hemostasis מלאה.
5. לחצות את hindleg ימין של העכבר על הצד והקלטת השמאליים. פיתול בטן כתוצאה מסתובב מעט חזה, שיפור קל של הניתוח.
6. הנח את הבמה בזווית של 45 מעלות (איור 6); מיצוב זה מאפשר הריאות לנפול מקיר החזה פעם pneumothorax מושרה.
7. צלע ^st 1 (צלעות הנחותות ביותר) נתפסת עם מלקחיים וגדלה; מלקחיים מעוקלים נדחפו בבוטות מתחת לצלע. זה מפריד הצדר הקודקודית מקיר החזה. הצדר צריך להישאר unpunctured.
8. שימוש בצינור והמכהמזרק, האוויר הציג בכוח נגד הצדר הקודקודית. זה מוביל לקרע של פני השטח וpneumothorax פלאורלי מבלי לפגוע ריאות הבסיסיות. הריאות הבסיסיות תיפולנה מקיר החזה, ומאפשרות החדרת מלקחי electrocautery מבלי לפגוע ריאות. ירידה בנפח גאות הנשמה בדרך כלל לא נדרשה במהלך שלב זה.
9. שימוש במלקחי electrocautery, לנתח חזה קיר השרירים וחצה את ^ה 5 ו 6 צלעות ^ה / הצדר הקודקודית, מה שהופך ~ חור עגול 8 מ"מ לתוך בית החזה. זה חיוני כי hemostasis השלמה להישמר, כנוכחות של דימום תטשטש מיקרוסקופית (איור 7).
10. שימוש נהג מחט, הכנס את הצינור לתוך חור thoracostomy קיר החזה. המחט צריכה לנקב את דופן בית החזה ולצאת מהחלל הנחות ורוחב לחלון בית החזה (איור 7) החזי. תשמרו על עצמך כדי להימנע מניקוב הסרעפת.אז צינור הוא משך בעדינות מתוך קיר בית החזה עד שההתנגדות מתרחשת מהתפר "הפקק" הממוקם בקצה של חלק fenestrated של הצינור.
11. הנח את השלב שטוח.
12. הוסף 3 סנטימטר PEEP H ₂ O להנשמה לעזור ולסייע הריאות reexpansion.
13. דבק (Pattex ג'ל, הנקל) ממוקם circumferentially סביב חלון החזה. הקרום מחובר, עם תלוש כיסוי הזכוכית הפונה לחוץ את חלל בית החזה. בזהירות (וcircumferentially) משוער קרום לדבק באמצעות מוליך כותנה.
14. בעת ביצוע תרגיל גיוס ריאות (3 כרכי גאות שבמהלך יציאת הנשמת PEEP חסומה), שאיבת -3 מ"מ כספי תחול על צינור החזה. ריאות צריכות עקביות משוערת קרום תוך שנעו בחופשיות במהלך אוורור גאות (איור 8).
15. הרגל הקדמית הימנית של העכבר עברה לצד שמאל, וכתוצאה מכך עמדת משכוב רוחבית שמאלית של העכבר.טריזים ספוגים ניתן להשתמש כדי למקם את העכבר כראוי ולכן חלון החזה מיושר עם מטרת הטבילה במים המיקרוסקופי.
16. מים מזוקקים מושמים על תלוש הכיסוי לפני מיקרוסקופי, המאפשרים הדמיה של הריאות באמצעות אובייקטיבי טבילה במים. מים צריכים להיות מתחדשים לסירוגין לאורך הדמיה.

6. מדידה של עובי שכבת האנדותל ריאתי Surface

1. מייד לאחר סגירת בית חזה, 500 FITC מתויג-150 kDa dextran μl (פתרון 6% ב PBS) המנוהל דרך צנתר הוורידים שני (הלא הרדמה) הצוואר. בולוס זה משמש כהחייאת נפח, כמו גם כלי הדם נותב לESL מדידה. Dextran בולוס אינה משפיעה הידבקות נויטרופילים או היווצרות בצקת ריאות ^2.
2. מטרת הטבילה במים מרוכזת על תחתונית הכיסוי. בחירת המטרה היא חיונית, כדי להמחיש הבדלים קטנים בעובי ESL, numeri גבוהcal צמצם יש צורך (> 0.8), תוך שמירה על 2 - 3 מ"מ מרחק עבודה (המאפשר חדיר דרך חלון הריאות ומשטח פלאורלי). אנו משתמשים בניקון CFI 75 LWD 16x (NA 0.8) וCFI 75 (NA 1.1) מטרות 25x LWD למטרה זו.
3. כדי למדוד במדויק את עובי ESL באיבר מרגש, זה הכרחי כי brightfield ורוחב כלי דם ניאון מבוצעים בו זמנית. ניתן לעשות זאת באמצעות תמונת ספליטר (צג כפול, Photometrics) המאפשר ללכידתו זמני של ניגוד הפרעות משתקף אור הפרש (DIC, brightfield) ותמונות FITC (איור 9).
4. במהלך פוגת 5 שניות שאיפה, הדמיה רצופה הופיעה והקליטה. מאוחר יותר, תמונות אלה תוכלנה להיבחן לזהות מסגרות במיקוד.
5. שימוש במיקוד המסגרת, microvessels subpleural (<20 קוטר מיקרומטר) מזוהית; לפחות 3 microvessels נמצאים בדרך כלל במסגרת אחת. לאחר השלים הניסוי, דסק"שורוחב FITC-dextran כלי דם נמדד (על ידי משקיף עיוור) על ידי החישוב ממוצע של שלושה אורכי מיירט ניצב לmicrovessel. בהנחה שעובי ESL שווה בשני הקצוות של הכלי, גודל ESL יכול להיות מוגדר על ידי מחצית ההפרש בין דסק"ש ורוחב FITC-dextran כלי דם, כפי שתואר בסעיף תוצאות הנציג.
6. בדרך כלל, מיקרוסקופיה intravital יכולה להתבצע ל> 90 דקות ללא כל עדות לפגיעת ריאות או ירידה בלחץ דם ^2. ניסויים ראשוניים יש לבצע כדי לאשר את יציבות עכבר (לחץ דם, החמצון, האוורור, פגיעת ריאות) במהלך התקופה של התבוננות. תרופות ניסיוניות עשויות להיות הציגה דרך הצנתר שני (הלא הרדמה) צוואר בכל שלב במהלך ההליך.

7. מדידה אלטרנטיבית של יושרת שכבת האנדותל ריאתי Surface

פונקציות שכבת האנדותל המשטח השלמות (בחלקם) שלא לכלול circulatאלמנטי ing ^מ2 המשטח אנדותל. יושרת ESL לכן ניתן למדוד את היכולת של אלמנט במחזור (למשל microsphere ניאון) לגישה ולאינטראקציה עם מולקולות דבקות בתא שטח (כגון Icam-1).

1. אנטי Icam-1 שכותרת הניאון microspheres מוכן לפני הניתוח. 0.97 מיקרומטר streptavidin המצופה microspheres ניאון מודגרת עם biotinylated אנטי Icam-1 (YN1/1.7.4 שיבוט, 1:50, eBioscience) שליטת נוגדן או אלוטיפ למשך 30 דקות בטמפרטורת חדר. Microspheres נשטף שלוש פעמים והושעה ב PBS ב1 x 10 ⁹ microspheres למ"ל.
2. במהלך מיקרוסקופיה intravital, השעית microsphere (100 μl) מוזרקת לתוך צנתר ורידי הצוואר. לאחר 15 דקות של זרימה, תמונות ניאון הם כבשו מעל 5 דקות. Microspheres הנייח ל> 5 דקות נחשבים חסיד ולכמת באמצעות תוכנת עיבוד תמונה.

8. מת

<כיתת p => "jove_content" לאחר השלמת ההליך, עכברים מורדמים מורדמים ידי exsanguination דרך לנקב לב ישיר. המתת חסד היא דרך אשרה pneumothoraces הבילטראליים, לאחר שריאותיהם מסתיימות ונצמדים קפוא לניתוח מאוחר יותר.

תוצאות

הגישה הניסויית מתואר בשלבים 1-6 תאפשר לכידה של מסגרות מרובות של דסק"ש סימולטני (brightfield) ותמונות ניאון. כדי לקבוע את עובי ESL, תמונות נרשמו נבדקות על ידי משקיף עיוור לאחר השלמת פרוטוקול הניסוי. שימוש במיקוד המסגרת, microvessels subpleural (<20 קוטר מיקרומטר) מזוהית; לפחות 3 microvessels נ...

Discussion

ביחד עם התרחבות השימוש במיקרוסקופ בvivo, יש הערכה גוברת הוא לגודל משמעותי של ESL, כמו גם התרומות הרבות שלו לתפקוד כלי דם. נתונים אלה המתעוררים, לעומת זאת, נובעים בעיקר ממחקרים של מערכת כלי הדם המערכתית. ואכן, שימוש במיקרוסקופ בvivo הריאות מאתגר מבחינה טכנית, ניתן ח...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
			שם מגיב
FITC-dextran (150 KDA)	סיגמא	FD150S
TRITC-dextran (150 KDA)	סיגמא	T1287
Streptavidin מצופה הניאון microspheres	מעבדות פוני	CP01F/10428	הדרקון הירוק פלואורסצנטי (בדומה לFITC)
קטמין	מור רפואי
Xylazine	מור רפואי
אנטי Icam-1 נוגדן biotinylated	eBioscience	שיבוט YN1/1.7.4	1:50 דילול
אלוטיפ נוגדן biotinylated	eBioscience	IgG2b eB149/10H5	1:50 דילול
			ציוד
הנשמה מכאנית	הרווארד Apparatus	אינספירה
קטטר טרכאוסטומיה	הרווארד Apparatus	730028
מנגנון electrocautery	DRE רפואי	Valleylab SSE-2L
דו קוטבי מלקחי כווייה	אולסן רפואי	10-1200I	9.9cm מקפרסון
הטמפרטורה control מערכה	מכשירי Precision העולם	ATC1000
משאבת מזרק	הרווארד Apparatus	11 עלית משאבה
מיקרוסקופ (widefield)	ניקון	LV-150
מיקרוסקופ (confocal)	ניקון	A1R
התמונה ספליטר	Photometrics	Dv2
מצלמת CCD	Photometrics	CoolSNAP HQ2
תוכנת עיבוד תמונה	ניקון	אלמנטי ש"ח
קרום polyvinylidene	ק.א.ר. Wrap
תלוש כיסוי חוזר	Bellco	5CIR-1-BEL	5 מ"מ, עובי # 1
דבק (לכסות להחליק לממברנה)	Pattex	Flussig (נוזלי)	להדבקת תלוש כיסוי לממברנה
דבק (לכסות להחליק לעכבר)	Pattex	קריש	לחיבור קרום לעכבר
צינורות כירורגים	Intramedic	PE50, PE10
תפר	דיג		משי 04:00
מכונת גילוח חשמלית	אוסטר	78997
מלקחיים כירורגיים מעוקלים	Roboz
מלקחיים כירורגיים ישרים	Roboz
מספרי כירורגים	Roboz
microscissors כירורגים	Roboz
נהג מחט כירורגים	Roboz
קלטת כירורגים	דיג
ספוגי מטבח (חתוך לפרוסות)	שונה