Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

כאן אנו מציגים פרוטוקול כדי לקבוע באופן אוטומטי את ביצועי גינקולוגיות דרוזופילה -שינוי הטמפרטורות באמצעות לתכנות מבוקרי טמפרטורה ארנה שמייצר שינויי טמפרטורה מהירים ומדויקים בזמן ובמרחב.

Abstract

הטמפרטורה היא גורם סביבתי בכל מקום זה משפיע על איך מינים להפיץ ולהתנהג. מינים שונים של זבובי דרוזופילה פירות יש תגובות ספציפיות לשינוי הטמפרטורות בהתאם הסתגלות סובלנות הפיזיולוגית שלהם. זבובים דרוזופילה בעלי גם חום חישה מערכת הפך בסיסי להבנת הבסיס העצבי של טמפרטורת עיבוד ב- ectotherms. אנו מציגים כאן ארנה מבוקרי טמפרטורה המאפשרת שינויי טמפרטורה מדויקת ומהירה עם שליטה הגיאופוליטיות והמרחביות הטמפורלי כדי לחקור את התגובה של זבובים בודדים את שינוי הטמפרטורה. זבובים בודדים להציב בזירה, נחשפים אתגרים טמפרטורה מתוכנתים מראש, כגון הדרגתי אחיד מגביר טמפרטורה כדי לקבוע נורמות התגובה או טמפרטורות המפוזרים במרחב בו זמנית כדי לקבוע העדפות. אנשים מתבצע באופן אוטומטי, המאפשר כימות של העדפה מהירות או מיקום. בשיטה זו ניתן לכמת במהירות התגובה על מגוון רחב של טמפרטורות כדי לקבוע טמפרטורה ביצועים עקומות דרוזופילה או חרקים אחרים באותו סדר גודל. בנוסף, זה יכול לשמש עבור מחקרים גנטיים לכמת טמפרטורה העדפות ותגובות של מוטציות או פראי-סוג זבובים. שיטה זו יכולה לעזור לחשוף את הבסיס של היווצרות המינים תרמי, הסתגלות, כמו גם המנגנונים העצביים העומדים מאחורי בטמפרטורה.

Introduction

טמפרטורה היא גורם סביבתי מתמיד זה משפיע על איך אורגניזמים לפעול ולהתנהג1. הבדלי גובה ורוחב להוביל הבדלים בסוג באקלים האורגניזם נחשפים, שתוצאתה בחירה אבולוציונית לתגובתם טמפרטורה2,3. האורגניזמים להגיב טמפרטורות שונות דרך עיבודים מורפולוגי, פיזיולוגיים והתנהגותיים זה למקסם ביצועים תחת שלהם מסוים סביבות4. לדוגמה, זבוב הפירות דרוזופילה melanogaster, אוכלוסיות מאזורים שונים יש העדפות טמפרטורה שונות, הגוף גדלים, פעמים התפתחותית, אריכות-חיים, פוריות וביצועים הליכה בטמפרטורות שונות2 ,5,6,7. המגוון שנצפה בין הזבובים ממוצא שונה מוסבר בחלקו על ידי וריאציה גנטית גן פלסטיק הביטוי8,9. באופן דומה, מינים דרוזופילה מאזורים שונים להפיץ באופן שונה בין מעברי צבע טמפרטורה ולהראות הבדלים ההתנגדות החום הקיצוני, בדיקות קר10,11,12.

דרוזופילה הפך גם לאחרונה מודל הבחירה כדי להבין את הבסיס הגנטי והעצבים של טמפרטורה תפיסה13,14,15,16,17. באופן כללי, הזבוב הבוגר תופסים טמפרטורה באמצעות חיישני טמפרטורה היקפיים קרים וחמים, מחושיהם ודרך חיישני טמפרטורה15,16 14,13,המוח , 17 , 18 , 19 , 20. קולטני הפריפריה לטמפרטורות חם אקספרס Gr28b.d16 או Pyrexia21, תוך הפריפריה מאופיינים קולטנים קר Brivido14. במוח, טמפרטורה מעובד על ידי נוירונים לבטא TrpA115. מחקרים התנהגותיים על מוטציות של המסלולים הללו משתפרים הבנתנו כיצד מעובד בטמפרטורה ולתת תובנות מנגנונים משתנים בין אוכלוסיות של דרוזופילה ממחוזות שונים.

כאן נתאר ארנה מבוקרי טמפרטורה שמייצר שינויי טמפרטורה מדויקת ומהירה. חוקרים יכולים מראש תכנית שינויים אלה, אשר מאפשר מניפולציות טמפרטורה סטנדרטית ו הדיר ללא התערבות אנושית. זבובים הם הקליטו, במעקב עם תוכנות מיוחדות כדי לקבוע את המיקום שלהם ואת המהירות בכל השלבים השונים של ניסוי. המדד העיקרי הוצג פרוטוקול זה הוא מהירות הליכה בטמפרטורות שונות, כי הוא אינדקס רלוונטי מבחינה אקולוגית בביצועים פיזיולוגיים ניתן לזהות הסתגלות תרמיות בודדות5. יחד עם טמפרטורה קולטן מוטציות, טכניקה זו יכולה לסייע לחשוף את המנגנונים של עיבוד תרמי ברמה התאית וביוכימי.

Protocol

1. הכנת אוכל לטוס בינוני

  1. שופכים 1 ליטר של מי ברז לתוך גביע זכוכית 2 ל', להוסיף פס מגנטי מערבבים. לשים את הספל על פלטה מגנטית ב 300 ° C עד רותחים בטמפרטורה.
  2. מערבבים-כדורים לדקה 500 ולהוסיף את הפעולות הבאות: 10 גרם של אגר 30 גר' גלוקוז, 15 גר' סוכרוז, 15 גר' קמח תירס, 10 גרם של נבט חיטה, 10 גרם קמח סויה, 30 גר' מולסה, 35 גרם שמרים יבשים פעילים.
  3. כאשר מערבבים קצף נמרצות, להנמיך את הטמפרטורה פלטה עד 120 ° C תוך כדי ערבוב.
  4. להפעיל את הטמפרטורה פלטה נוספת עד 30 מעלות צלזיוס לאחר 10 דקות ולהמשיך לערבב עד המיקס מתקררת כדי 48 º C. למדוד את הטמפרטורה על-ידי הוספת מד חום ישירות לתוך האוכל בלי לגעת בקירות של הספל.
  5. לפזר 2 גר' p-הידרוקסי-בנזואית חומצה מתיל אסטר לתוך 10 מ"ל אתנול 96%, להוסיף את התערובת יחד עם 5 מ ל חומצה propionic 1 מ'. המשך ערבוב למשך 3 דקות.
  6. כבה את הכיריים ויוצקים 45 מ ל מזון לתוך בקבוקים rearing ו 6.5 מ ל מזון לתוך הבקבוקונים אוסף.

2. הכנת זבובים

  1. מקום 20 גברים ו- 20 נקבה זבובים לבקבוקים rearing המכיל 45 מ של אוכל לטוס בינוני. העברת הזבובים בקבוקים חדשים לאחר 3-4 ימים על-ידי הקשה אותם למטה ולאחר מכן הקשה על אותם לתוך הבקבוקים טריים. למחוק את הזבובים לאחר שלושה שינויים.
    1. מקם את הבקבוקים בתוך החממה תחת 12-h אור/12-h מחזורים כהה עם טמפרטורת חום קבועה של 25 מעלות צלזיוס.
      הערה: דור חדש של זבובים יהיה eclose לאחר עשרה ימים.
  2. עזים ומתנגד לאחרונה eclosed זבובים על רפידות פחמן דו-חמצני לכל היותר 4 דקות ולאסוף אותם 2.5 x 9.5 ס מ לטוס לגידול צלוחיות עם 6.5 מ של מדיום מזון לעוף באמצעות מברשת.
    1. לאסוף זבובים בתולה רק ולהפריד ביניהם על ידי קבוצות של זבובים 20 לכל גידול המבחנה.
    2. מקם את הבקבוקונים בתוך אינקובטורים במשך 5-7 ימים, שינוי הזבובים בקבוקונים חדשים כל 2-3 ימים, בימים לפני הניסויים.

3. מסגרת של אורות

  1. ליצור מסגרת עץ של 10 ס מ אורך, רוחב 4 ס"מ, 4 ס מ גובה 0.5 ס מ עבה.
  2. על כל אחד הקצוות קצר, ליצור גבול של 4 ס מ אורך 4 ס מ גובה, רוחב 1.5 ס מ לכיוון הבתוך שטח של מסגרת העץ. השאר הפנים הפנימי של הגבול פתוח.
  3. תרגיל שני חורים של 0.5 ס מ קוטר בנקודת החיתוך של אחד הקצוות ארוך של מסגרת העץ ועל כל הגבולות בקצוות קצר.
  4. מקום 10 ס מ של רצועה LED לבנה חמה בתוך כל אחד הגבולות על הקצוות קצר. לקלף האחורי של רצועת LED להדביק אותו מיד במקום.
    הערה: עבור ניסויים ב שעליה תאורה צריכים להיות מסולקים, רצועת LED לבן חם הרבה מכדי LED אינפרא-אדום רצועות.
  5. להתחבר קצה אחד של רצועת LED באחד הגבולות את אספקת החשמל מיתוג, סופו אחרים לרצועת LED על הגבול ההפוך.
  6. הפעל את אספקת החשמל מיתוג כדי לוודא כי שתי רצועות LED להפעיל.
  7. לכסות את הצד הפתוח של כל גבול עם פיסת נייר לבן.
  8. דבק עוד פיסת נייר על כל אחד מהשלבים פנימי של קצוות ארוכים.

4. טמפרטורה מבוקרת ארנה

  1. הפעל את הזירה מבוקרי טמפרטורה (איור 1A וג 1). ודא המאוורר מתחיל לרוץ הטבעת אלומיניום מתחיל מתחמם.
  2. להשתמש בכבל USB להתחבר הזירה טמפרטורה מבוקרת מחשב בקרת להריץ את הסקריפט TemperaturePhases עם הרצפים טמפרטורה.
  3. פתח את התסריט TemperaturePhases שליטה במחשב וודא כי הרצף טמפרטורה מוגדרת כראוי (Video 1).
    1. בדוק כי משך הזמן של כל שלב נסיוני מוגדר כ- 60 s על-ידי אימות "הגומה. StimulusDur"שווה ל- 60 s.
    2. בדוק כי 1) המספר השווה רצוי מספר שלבים, 2) איטרטיבי ON/OFF ההקמה של מעיד על אדום דיודות מפיצות אור (נוריות), 3) 2 ° C בטמפרטורה לכל שלב, 4) 16 ° C כמו הטמפרטורה המוצא שכולכם צודקים תחת "התחל את ניסיוני מדור "אבן.
      הערה: לאפשר את הזבובים להסתגלות לזירה לטוס במשך 7 דקות ב 16 ° C כדי למנוע גידול מלאכותיים של מהירות במהלך שלבי הניסוי הראשון (איור 2).
    3. להריץ את הסקריפט TemperaturePhases . התוכנה לאתחל במשך 5 שניות כפי שנקבע "בזירה. המתן", אז תפסיק.
    4. הקש על מקש הרווח של לוח המקשים כדי להתחיל הפעלת את שלבי הניסוי פעם זבוב פוצץ אל תוך הזירה לעוף (שלב 5.3).
      הערה: TemperaturePhases הוא script הנוכחי שליטה התיבה; עם זאת, ניתן ליצור סקריפטים מותאמים אישית אחרים לשימוש בהתקן זה להתאים לדרישות של ניסויים שונים.
  4. חבר את המצלמה על הזירה הקלטה למחשב באמצעות כבל ה-USB של המצלמה.
  5. פתח את התוכנית הקלטת וידאו (ראה טבלה של חומרים) הקלטה במחשב על-ידי בחירה "קובץ | סרט ההקלטה החדשה". המסך מציג את התמונה מן המצלמה תיפתח.
    1. ודא כי תמונת המצלמה לוכדת כל הקצוות של הזירה, מעיד על נוריות אדומות.
    2. . תתחיל להקליט על ידי לחיצה על הכפתור האדום באמצע הקצה התחתון של המסך מציג את תמונת המצלמה ברגע המסגרת של אורות הוגדרה סביב הזירה (שלב 5.4)
      הערה: שינויים קטנים בתחום התאורה יכולים להשפיע הדיוק של המעקב. מומלץ לשמור את ההארה של הזירה מבוקרי טמפרטורה קבועה על ידי תיקון המיקום של המנגנון.

5. הטמפרטורה ניסויים התנהגותיים

  1. להכין את הזירה לעוף (איור 1C).
    1. במקום חוט לבן דבק מוליך על האריחים נחושת, הבטחת שכל הקצוות מכוסים.
    2. מניחים את הטבעת אלומיניום המחוממת סביב האריחים נחושת. הקצה של הטבעת מתאים באופן מושלם סביב האריחים נחושת אז מניחים אותה תמיד באותו מיקום.
    3. לנקות את מכסה זכוכית עם טישו נקייה ומניחים אותו על הטבעת אלומיניום, השארת רווח שדרכו זבוב יכול להיות מפוצץ ב.
      הערה: לפני הניסויים, מעיל מכסה זכוכית עם הסוכן siliconizing כדי ליצור משטח חלקלק. החל הסוכן siliconizing במשך 24 שעות ביממה, לשטוף אותו עם מים לפני השימוש.
  2. להריץ את הסקריפט TemperaturePhases (שלב 4.3.3) ופתח את התוכנית הקלטת וידאו (שלב 4.5).
  3. לפוצץ את הזבוב מ בקבוקון rearing (שלב 2.2.2) אל תוך הזירה לעוף (למשל., 1 זכר לטוס באיור3).
    1. לקחת בקבוקון של זבובים מן החממה, לחץ עליה פעמיים כדי לכפות עליהם ללכת למטה, השמנה של זבוב אחד עם העצמות הפה, לסגור את הצנצנת ואת סינרול החממה.
    2. מקם את הזבוב בזירה דרך הפרצה שננטש בין מכסה זכוכית טבעת אלומיניום (שלב 5.1.3).
    3. לסגור את הפער בין מכסה זכוכית אלומיניום טבעת על ידי דוחף את מכסה הזכוכית עד שהוא מגיע לקצה של הטבעת אלומיניום ברגע הזבוב הוא הציג לזירה לעוף.
  4. להציב את המסגרת של אורות סביב הזירה כדי להבטיח תאורה סימטרי.
    1. סמן את המיקום (למשל., שימוש בסמן קבוע) של המסגרת של אורות סביב לטוס הזירה (איור 1C) כדי להבטיח כי המסגרת ממוקמת תמיד באותו מיקום.
  5. להתחיל להקליט עם התוכנית הקלטת וידאו (שלב 4.5.2), הקש על מקש הרווח במקלדת של המחשב הבקרה כדי להתחיל הפעלת את שלבי הניסוי (שלב 4.3.4).
  6. ניסיוני אחרי כל השלבים נעשים, שמירת הוידאו בתבנית .mp4 או .avi ולהסיר הזבוב מן הזירה לטוס עם העצמות הפה.
    הערה: בסוף שלבי הניסוי יכול להיקבע על ידי שתי נוריות אדומות מעיד על להיות כבויים או ההפסקה script TemperaturePhases .
    1. לעצור את הקלטת על ידי לחיצה על הלחצן ' עצור ' באמצע הקצה התחתון של המסך בתוכנית הקלטת הוידאו. הקש "קובץ | "שמור בשם כדי לשמור את הווידאו.

6. וידאו מעקב וניתוח נתונים

  1. השתמש FlySteps (סרטון 2) תוכנת מעקב כדי לבצע מעקב אחר קטעי וידאו.
    1. פתח את "configuration_file.ini" בתוך התיקיה "FlyTracker".
    2. הגדר את המיקום של קטעי וידאו ב- "video_folder" ואת שמותיהם של קטעי וידאו ב- "video_files".
    3. לציין גבולות הזירה לטוס ב- "arena_settings" על בסיס (x, y) קואורדינטות של נקודות מרובות בקצה הזירה.
    4. ציין את המיקום של נוריות אדומות מעיד ב- "led_settings" על בסיס (x, y) קואורדינטות פיקסלים של המיקום של המרכז של הנוריות.
    5. בדוק את מיקומו של גבולות הזירה לעוף על-ידי הגדרת "באגים" 'נכונה' ב- "arena_settings", לחיצה על "שמור", להריץ את הסקריפט בתוך הטרמינל. לכידת מסך של הוידאו יופיע עם ריבוע כחול הנוצרת על-ידי הקואורדינטות שהוזנו ב- "arena_settings".
      הערה: כיכר זו מקיפה את האזור לבצע אחריהם מעקב.
    6. לשנות "באגים" ב- "arena_settings" ל- "false", לחץ על "שמור", ולהפעיל את המסך בטרמינל עוד פעם.
      הערה: אפשרות זו תפעיל את תהליך מעקב.
      הערה: זבובים יכולים ללכת אל מחוץ לאזור מעקב על גבי הטבעת אלומיניום מחוממת. זה קורה במהלך השניות הראשונות של ניסוי, אחרי אשר זבובים. תפסיק לגעת את הטבעת מחוממת ולהישאר בתוך האזור מעקב.
      הערה: ניתן לעקוב קטעי וידאו עם אחרים תוכנת מעקב לפי ההעדפות של הנסיין.
  2. שימוש (x, y) המיקום של כל זבוב שסופקו על-ידי תוכנת מעקב כדי לחשב את מידת הריבית עבור הביצועים בטמפרטורה. קבצי script מותאמים אישית (למשל., FlyStepsAnalysis ב Supplementary) יכול לשמש.
  3. להשוות את עקומות הביצועים בטמפרטורה של קבוצות שונות לעוף באמצעות מדידות חוזרות ונשנות (RM) השונות (ANOVA) ופוסט-הוק השוואות מרובות באמצעות תוכנה סטטיסטית (ראה טבלה של חומרים).

תוצאות

הזירה מבוקרי טמפרטורה (איור 1 א') מורכב שלוש אבנים נחושת שהטמפרטורה שלהם יכול להיות נשלט בנפרד במעגל לתכנות. כל אריח נחושת בעל חיישן טמפרטורה שנותן משוב המעגל לתכנות. המעגל הפעלת ספק כוח כדי להגדיל את הטמפרטורה של כל אריח. אלמנטים פסיביים תרמואלקטרי לשמש ה?...

Discussion

כאן הובאו אוטומטיים מבוקרי טמפרטורה זירה (איור 1) שמייצר שינויי טמפרטורה מדויקת בזמן ובמרחב. שיטה זו מאפשרת חשיפה של הפרט דרוזופילה מחיישנים מגביר הדרגתית של הטמפרטורה (איור 2 , איור 3) אלא גם לאתגרים טמפרטורה דינמי שבו כל אריח של הזירה ז?...

Disclosures

המחברים מצהירים כי יש להם אינטרסים כלכליים אין מתחרים.

Acknowledgements

עבודה זו נתמך בחלקה על ידי מלגה Behavioural, תוכנית קוגניטיבי מדעי המוח של אוניברסיטת של חרונינגן, במלגה ללימודי תואר שני, y Consejo נאסיונאל דה Ciencia Tecnología (CONACyT) במקסיקו, כמובן מאליו אנדריה סוטו-פאדילה, במענק מטעם קרן טמפלטון ג'ון לחקר הזמן הוענק Hedderik ואן ריין, ז'אן כריסטוף Billeter. אנחנו גם אסיר תודה פיטר חריט Bosma בשל השתתפותו בפיתוח הגשש FlySteps .

ניתן למצוא קבצי script TemperaturePhases, FlySteps, ו FlyStepAnalysis כמידע משלים, הקישור הבא זמני וזמין לציבור:
https://dataverse.nl/privateurl.xhtml?token=c70159ad-4d92-443d-8946-974140d2cb78

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Arduino DueArduinoA000062Software RUG
Electronics BoardRuijsink Dynamic EngineeringFF-Main-02-2014
Power supply BoostXP-Power 48. V 65 WECS65US48Set to 53 Volt
Power supply Tile HeatingXP-Power 15. V 80 WVFT80US15
Power supply CoolingXP-Power 15. V 130 WECS130U515
Peltier elementsMarlow IndustriesRC12-42 Elements, controlled DC feed
Heat sinkFisher TechnikLA 9/150-230VDecoupled for vibration
Temperature sensorsMeasurement SpecialtiesMCD_10K3MCD1Micro Thermistor Probe
Copper block/tilesRuijsink Dynamic EngineeringFF-CB-01-2014
Auminum ringRuijsink Dynamic EngineeringFF-RoF-02-2015
Tesa 4104 white tape 25 x 66 mmRS Components111-2300 White conductive tape
Red LEDsLucky Ligtll-583vc2c-v1-4daWavelength between 625 nm, 20 mAmp and 6 V
Warm white LED stripLedstripkoningHQ-3528-SMD60 LEDs per meter
Switch Power SupplyGenericT-36-12
Logitech c920Logitech Europe S.APN960-001055
QuickTime PlayerApple ComputerRecording program
Tracking analysis softwareRPackages: pacman
Tracking analysis softwareMATLAB
Thermal ImagingFLIR T400sc
Graphs and Statisticts SoftwareGraph Pad Prism
SigmacoteSigma-AldrichSL2-100MLSiliconising agent
Fly rearing bottlesFlystuff32-1306oz Drosophila stock bottle
FlypadFlystuff59-114
Fly rearing vialsDominique Dutscher789008Drosophila tubes narrow 25x95 mm
IncubatorSanyoMIR-154
Magnetic hot plateHeidolph505-20000-00MR Hei-Standard
AgarCaldic Ingredients B.V.010001.26.0
GlucoseGezond&wel1019155Dextrose/Druivensuiker
SucroseVan GilseGranulated sugar
CornmealFlystuff62-100
Wheat germGezond&wel1017683
Soy flourFlystuff62-115
MolassesFlystuff62-117
Active dry yeastRed Star
TegoseptFlystuff20-258100%

References

  1. Abram, P. K., Boivin, G., Moiroux, J., Brodeur, J. Behavioural effects of temperature on ectothermic animals unifying thermal physiology and behavioural plasticity. bioRxiv. , (2016).
  2. Rajpurohit, S., Schmidt, P. S. Measuring thermal behavior in smaller insects: A case study in Drosophila melanogaster demonstrates effects of sex, geographic origin, and rearing temperature on adult behavior. Fly. 10 (4), 149-161 (2016).
  3. Jezovit, J. A., Levine, J. D., Schneider, J. Phylogeny environment and sexual communication across the Drosophila genus. The Journal of Experimental Biology. 220 (1), 42-52 (2017).
  4. Sinclair, B. J., Williams, C. M., Terblanche, J. S. Variation in Thermal Performance among Insect Populations. Physiological and Biochemical Zoology. 85 (6), 594-606 (2012).
  5. Gibert, P., Huey, R., Gilchrist, G. Locomotor performance of Drosophila melanogaster: Interactions among developmental and adult temperautures, age, and geography. Evolution. 55 (1), 205-209 (2001).
  6. Trotta, V., et al. Thermal plasticity in Drosophila melanogaster: A comparison of geographic populations. BMC Evolutionary Biology. 6, 1-13 (2006).
  7. Klepsatel, P., Gálikova, M., De Maio, N., Huber, C. D., Christian, S., Flatt, T. Variation in thermal performance and reaction norms among populations of Drosophila melanogaster. Evolution. 67 (12), 3573-3587 (2013).
  8. Latimer, C. A. L., Wilson, R. S., Chenoweth, S. F. Quantitative genetic variation for thermal performance curves within and among natural populations of Drosophila serrata. Journal of Evolutionary Biology. 24, 965-975 (2011).
  9. Chen, J., Nolte, V., Schlotterer, C. Temperature-related reaction norms of gene expression: Regulatory architecture and functional implications. Molecular Biology and Evolution. , (2015).
  10. Kellermann, V., Overgaard, J., Hoffmann, A. A., Flojgaard, C., Svenning, J. -. C., Loeschcke, V. Upper thermal limits of Drosophila are linked to species distributions and strongly constrained phylogenetically. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109 (40), 16228-16233 (2012).
  11. Andersen, J. L., Manenti, T., Sørensen, J. G., Macmillan, H. A., Loeschcke, V., Overgaard, J. How to assess Drosophila cold tolerance: Chill coma temperature and lower lethal temperature are the best predictors of cold distribution limits. Functional Ecology. 29 (1), 55-65 (2015).
  12. Krstevska, B., Hoffmann, A. A. The effects of acclimation and rearing conditions on the response of tropical and temperate populations of Drosophila melanogaster and D. simulans to a temperature gradient (Diptera: Drosophilidae). Journal of Insect Behavior. 7 (3), 279-288 (1994).
  13. Frank, D. D., Jouandet, G. C., Kearney, P. J., Macpherson, L. J., Gallio, M. Temperature representation in the Drosophila brain. Nature. 519 (7543), 358-361 (2015).
  14. Gallio, M., Ofstad, T. A., Macpherson, L. J., Wang, J. W., Zuker, C. S. The coding of temperature in the Drosophila brain. Cell. 144 (4), 614-624 (2011).
  15. Hamada, F. N., et al. An internal thermal sensor controlling temperature preference in Drosophila. Nature. 454 (7201), 217-220 (2008).
  16. Ni, L., et al. A gustatory receptor paralogue controls rapid warmth avoidance in Drosophila. Nature. 500 (7464), 580-584 (2013).
  17. Liu, W. W., Mazor, O., Wilson, R. I. Thermosensory processing in the Drosophila brain. Nature. 519 (7543), 353-357 (2015).
  18. Neely, G. G., et al. TrpA1 Regulates Thermal Nociception in Drosophila. Public Library of Science ONE. 6 (8), e24343 (2011).
  19. Zhong, L., et al. Thermosensory and non-thermosensory isoforms of Drosophila melanogaster TRPA1 reveal heat sensor domains of a thermoTRP channel. Cell Reports. 1 (1), 43-55 (2012).
  20. Barbagallo, B., Garrity, P. A. Temperature sensation in Drosophila. Current Opinion in Neurobiology. 34, 8-13 (2015).
  21. Tang, X., Platt, M. D., Lagnese, C. M., Leslie, J. R., Hamada, F. N. Temperature integration at the AC thermosensory neurons in Drosophila. Journal of Neuroscience. 33 (3), 894-901 (2013).
  22. Petavy, G., David, J. R., Gibert, P., Moreteau, B. Viability and rate of development at different temperatures in Drosophila: A comparison of constant and alternating thermal regimes. Journal of Thermal Biology. 26 (1), 29-39 (2001).
  23. Diegelmann, S., Zars, M., Zars, T. Genetic dissociation of acquisition and memory strength in the heat-box spatial learning paradigm in Drosophila. Learning & Memory. 13 (1), 72-83 (2006).
  24. Zars, M., Zars, T. High and low temperatures have unequal reinforcing properties in Drosophila spatial learning. Journal of Comparative Physiology A: Neuroethology, Sensory, Neural, and Behavioral Physiology. 192 (7), 727-735 (2006).
  25. Zars, T., Wolf, R., Davis, R., Heisenberg, M. Tissue-specific expression of a type I adenylyl cyclase rescues the rutabaga mutant memory defect: in search of the engram. Learning & Memory. 7 (1), 18-31 (2000).
  26. Jones, M. A., Grotewiel, M. Drosophila as a model for age-related impairment in locomotor and other behaviors. Experimental Brain Research. 46 (5), 320-325 (2011).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

140

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved